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    黃芩苷通過PI3K/Akt/mTOR通路參與子癇前期大鼠免疫狀態(tài)及炎癥反應(yīng)的調(diào)控及機(jī)制

    2023-01-07 06:19:24王雪飛
    解剖學(xué)雜志 2022年5期
    關(guān)鍵詞:水平模型

    喬 蕾 李 曼 王雪飛 劉 萍

    (德州市婦幼保健院,德州 253000)

    子癇前期是妊娠性特異性疾病,臨床主要表現(xiàn)是蛋白尿和血壓升高,對(duì)圍產(chǎn)兒和孕產(chǎn)婦的生命安全具有嚴(yán)重的威脅[1,2]。正常的妊娠會(huì)伴有輕度的全身炎癥反應(yīng),而子癇前期通常伴有嚴(yán)重的炎癥反應(yīng),且子癇前期孕婦免疫耐受及機(jī)體免疫平衡嚴(yán)重失調(diào),導(dǎo)致炎癥因子大量產(chǎn)生,加快子癇前期疾病的發(fā)生及發(fā)展進(jìn)程[3-4]。黃芩苷可抑制核因子κB(NF-κB)蛋白表達(dá),減輕炎癥反應(yīng)[5]。磷酸肌醇三激酶(PI3K)/蛋白激酶B(Akt/PKB)/哺乳動(dòng)物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)是重要的自噬通路,在機(jī)體炎癥反應(yīng)中具有重要作用,研究顯示PI3K/Akt 信號(hào)通路的激活可能與 NF-κB 信號(hào)通路的抑制存在直接或間接的關(guān)系[6-7],推測(cè)黃芩苷有可能通過激活PI3K/Akt/mTOR信號(hào)通路進(jìn)而抑制炎癥反應(yīng)。本文探討黃芩苷通過PI3K/Akt/mTOR通路對(duì)子癇前期大鼠免疫狀態(tài)及炎癥反應(yīng)的調(diào)控及機(jī)制。

    1 材料和材料

    1.1 動(dòng)物與材料

    取SPF級(jí)SD大鼠60只,3~4月齡,雌性36只,體質(zhì)量(180±20)g,雄性24只,體質(zhì)量(280±20)g,動(dòng)物許可證號(hào)(SYXK(京)2019-0054)。黃芩苷注射液(美國(guó) Sigma-Aldrich公司);L-精氨酸甲酯(南京奧多福生物技術(shù)有限公司)。

    1.2 模型的建立、分組與給藥方案

    將雌雄大鼠同籠飼養(yǎng),每天進(jìn)行陰道涂片,當(dāng)涂片上有陰道上皮細(xì)胞和精子時(shí)記為妊娠第1天。將36只雌性大鼠隨機(jī)分為對(duì)照組、模型組和處理組,每組12只。處理組和模型組大鼠妊娠13~21 d時(shí)給予L-精氨酸甲酯,皮下注射,給藥劑量為100 mg/kg,對(duì)照組大鼠皮下注射等量的生理鹽水,連續(xù)給藥至妊娠21 d;處理組大鼠于妊娠17~21 d 時(shí)給予黃芩苷注射液,腹腔注射,給藥劑量為 100 mg·kg-1·d-1),同時(shí)對(duì)照組和模型組大鼠均給予等量的生理鹽水,3組均持續(xù)給藥至妊娠21 d。

    1.3 取大鼠腹主動(dòng)脈血和胎盤

    妊娠21 d時(shí),采用電腦尾袖式血壓計(jì)測(cè)定各組大鼠的血壓,然后麻醉大鼠,取大鼠腹主動(dòng)脈血,離心后取上清液備用;然后取出大鼠完整胎盤,備用。

    1.4 測(cè)定血清尿素氮水平

    采用全自動(dòng)生化分析儀測(cè)定各組大鼠血清中尿素氮(BUN)水平。

    1.5 炎癥因子水平的測(cè)定

    采用酶聯(lián)免疫吸附法,測(cè)定大鼠血清中胎盤組織中炎癥因子白細(xì)胞介素(IL)-6、IL-1β和腫瘤壞死因子-α(TNF-α)水平,試劑盒購(gòu)于羅氏生物檢測(cè)應(yīng)用公司。

    1.6 用BCA法測(cè)定大鼠胎盤組織勻漿中蛋白含量

    將大鼠胎盤組織研磨,加蛋白酶抑制劑的裂解液進(jìn)行裂解,于3 500 r/min、4℃離心15 min。取上清液,采用BCA法測(cè)定大鼠胎盤組織勻漿中蛋白含量,采用SDS-PAGE凝膠電泳,轉(zhuǎn)膜,將目的條帶分離出,胎牛血清封閉2 h,加入相應(yīng)一抗孵育一夜,PBST洗滌3次,加入熒光二抗孵育2 h,PBST洗滌,化學(xué)發(fā)光法顯影,測(cè)定灰度值變化。然后用相應(yīng)試劑盒測(cè)定勻漿中Akt、mTOR蛋白含量和尿蛋白水平和炎癥介質(zhì)NF-κB和IκB-α蛋白表達(dá)水平,β-actin為內(nèi)參,免疫熒光成像系統(tǒng)顯示灰度值,用Image J圖像軟件計(jì)算灰度值。

    1.7 采用RT-qPCR法測(cè)定大鼠胎盤組織中α7nAChR RNA表達(dá)水平

    將胎盤組織研磨,根據(jù)RNeasy mini試劑盒操作說明提取總RNA,采用分光光度計(jì)法測(cè)定組織中RNA濃度,取部分總RNA,加入RNA模 板,反 轉(zhuǎn) 錄 為cDNA,RT-qPCR實(shí) 驗(yàn) 采用QuantiFast SYBR Green PCR Kit。β-actin為 內(nèi)參,α7nAChR引 物 序 列 (5'-3'):CTCACAGCAT- GCAATCCAAGTACACTA(F),CAGGACCGAAGGCTAAAAGAGCA(R);β-actin引 物 序 列 (5'-3'):CCGGAGCTTCACCAATTGACACA(F),CAGACGCAGGAGCAGTTAATCA(R)。反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性5 min,95℃變形10 s,60℃退火/延伸30 s,進(jìn)行40循環(huán),數(shù)據(jù)分析采用公式2-ΔΔCt計(jì)算α7nAChR RNA相對(duì)表達(dá)水平。

    1.8 采用流式細(xì)胞儀測(cè)定大鼠全血中T淋巴細(xì)胞的比例

    大鼠眼眶取血1.5 mL至潤(rùn)有肝素鈉的管中,加入等體積Hanks液稀釋,加入3 mL淋巴細(xì)胞分離液,2 000 r/min離心20 min,將交界處的單個(gè)核細(xì)胞吸取出來(lái),加入3 mL Hanks液,混勻,1 500 r/min離心5 min,棄上清,加入1640培養(yǎng)基重懸,根據(jù)細(xì)胞數(shù)量調(diào)整細(xì)胞濃度,加入到24孔板中,5×105細(xì)胞/孔,然后加入1640培養(yǎng)基至1 mL,加20 μL FITC標(biāo)記的各因子抗體,避光室溫孵育30 min,加1%BAS-PBS液進(jìn)行洗滌,稀釋至300 μL后移入到試管中,采用BD-FACS Calibur流式細(xì)胞儀(美國(guó)BD公司)進(jìn)行分析。

    1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

    采用SPSS 22統(tǒng)計(jì)軟件,計(jì)量資料以±s表示,組間比較采用t檢驗(yàn),P<0.05表示差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 各組大鼠血壓、尿蛋白和BUN水平

    模型組大鼠舒張壓、收縮壓、BUN和尿蛋白水平顯著高于對(duì)照組(P<0.05),處理組舒張壓、收縮壓、BUN和尿蛋白水平與模型組相比均顯著降低(P<0.05)(表1)。

    2.2 各組大鼠炎癥因子水平

    模型組大鼠血清中和胎盤中IL-6、IL-1β和TNF-α水平顯著高于對(duì)照組(P<0.05),處理組IL-6、IL-1β和TNF-α水平與模型組相比均顯著降低(P<0.05)(表2)。

    2.3 各組大鼠Akt和mTOR蛋白表達(dá)水平

    模型組大鼠Akt和mTOR蛋白表達(dá)水平顯著低于對(duì)照組(P<0.05),處理組Akt和mTOR蛋白表達(dá)水平與模型組相比均顯著升高(P<0.05)(圖1,表4)。

    表1 各組大鼠血壓、BUN和尿蛋白水平(n=12,±s)

    表1 各組大鼠血壓、BUN和尿蛋白水平(n=12,±s)

    *P<0.05 vs對(duì)照組;#P<0.05 vs模型組

    組別 舒張壓(mmHg) 收縮壓(mmHg) BUN(mmol/L) 尿蛋白(mg/mL)對(duì)照組 71.45±9.53 106.58±11.24 4.21±0.48 3.25±0.39模型組 155.57±12.58* 203.58±12.44* 13.02±0.74* 9.70±1.04*處理組 71.63±12.02# 107.48±11.48# 4.67±0.45# 3.54±0.35#

    表2 各組大鼠血清中IL-6、IL-1β和TNF-α水平(n=12,±s,pg/mL)

    表2 各組大鼠血清中IL-6、IL-1β和TNF-α水平(n=12,±s,pg/mL)

    *P<0.05 vs對(duì)照組;#P<0.05 vs模型組

    組別 IL-6 IL-1β TNF-α對(duì)照組 43.58±7.44 164.34±23.45 101.29±12.42模型組 99.38±12.59* 275.83±32.00* 198.48±11.55*處理組 59.48±9.56# 189.57±29.57# 135.67±12.52#

    表3 各組大鼠胎盤組織中IL-6、IL-1β和TNF-α水平(n=12,±s,pg/mL)

    表3 各組大鼠胎盤組織中IL-6、IL-1β和TNF-α水平(n=12,±s,pg/mL)

    *P<0.05 vs對(duì)照組;#P<0.05 vs模型組

    組別 IL-6 IL-1β TNF-α對(duì)照組 6.03±0.98 21.05±4.25 5.03±0.92模型組 20.19±2.48* 39.55±5.01* 15.34±2.44*處理組 10.48±1.97# 25.49±3.29# 7.35±2.22#

    圖 1 各組大鼠Akt和mTOR蛋白表達(dá)水平

    表4 各組大鼠Akt和mTOR蛋白表達(dá)水平(n=12,±s)

    表4 各組大鼠Akt和mTOR蛋白表達(dá)水平(n=12,±s)

    *P<0.05 vs對(duì)照組比較;#P<0.05 vs模型組

    組別 Akt mTOR對(duì)照組 1.20±0.22 1.12±0.21模型組 0.47±0.08* 0.46±0.09*處理組 0.85±0.09# 0.89±0.10#

    2.4 各組大鼠炎性介質(zhì)NF-κB和IκB-α蛋白表達(dá)水平

    模型組大鼠NF-κB和IκB-α蛋白表達(dá)水平顯著高于 對(duì)照組(P<0.05),處理組NF-κB和IκB-α蛋白表達(dá)水平與模型組相比均顯著降低(P<0.05)(圖2,表5)。

    圖 2 各組大鼠炎性介質(zhì)NF-κB和IκB-α蛋白表達(dá)水平

    表5 各組大鼠炎性介質(zhì)NF-κB和IκB-α蛋白表達(dá)水平 (n=12,±s)

    表5 各組大鼠炎性介質(zhì)NF-κB和IκB-α蛋白表達(dá)水平 (n=12,±s)

    *P<0.05 vs對(duì)照組;#P<0.05 vs模型組

    組別 NF-κB IκB-α對(duì)照組 0.32±0.07 0.28±0.08模型組 1.25±0.21* 0.98±0.12*處理組 0.63±0.11# 0.34±0.07#

    2.5 各組大鼠胎盤組織中α7nAChR RNA表達(dá)水平

    模型組與對(duì)照組胎盤組織中α7nAChR RNA表達(dá)水平相當(dāng)(P>0.05);研究組大鼠胎盤組織中α7nAChR RNA表達(dá)水平(6.65±0.91)顯著高于模型組(2.02±0.61)和對(duì)照組(1.53±0.67)(P<0.05)。

    2.6 各組大鼠血中免疫功能參數(shù)水平

    結(jié)果顯示(表6),模型組大鼠CD3+、CD4+、CD4+/CD8+水 平 均 顯 著 高 于 對(duì) 照 組(P<0.05),CD8+水平顯著低于對(duì)照組(P<0.05);處理組大鼠與模型組相比,CD3+、CD4+、CD4+/CD8+水平均顯著降低(P<0.05),CD8+水平顯著升高(P<0.05)。

    3 討論

    子癇前期主要癥狀是水腫、蛋白尿和高血壓[8,9]。黃芩苷屬于天然植物藥,對(duì)子癇前期大鼠胎盤中的滋養(yǎng)層細(xì)胞的凋亡具有抑制作用,且可調(diào)節(jié)X-連鎖凋亡,進(jìn)而對(duì)蛋白的表達(dá)起到抑制作用,并降低caspase-9的表達(dá),改善線粒體超微結(jié)構(gòu),達(dá)到治療子癇前期的作用[10]。本研究結(jié)果顯示,子癇前期模型大鼠舒張壓、收縮壓、BUN和尿蛋白水平均明顯高于對(duì)照組,而處理組舒張壓、收縮壓、BUN和尿蛋白水平與模型組相比均顯著降低,提示黃芩苷可以降低子癇前期大鼠舒張壓、收縮壓、BUN和尿蛋白水平。

    表6 各組大鼠CD3+、CD4+、CD8+、CD4+/CD8+水平(n=12,±s)

    表6 各組大鼠CD3+、CD4+、CD8+、CD4+/CD8+水平(n=12,±s)

    *P<0.05,與對(duì)照組比較;#P<0.05,與模型組比較。

    組別 CD3+ CD4+ CD8+ CD4+/CD8+對(duì)照組 56.38±2.43 31.19±1.87 22.25±1.74 1.45±0.06模型組 67.03±2.64* 49.33±1.64* 18.45±1.54* 2.65±1.00*處理組 60.44±2.53# 39.42±2.01# 21.38±1.64# 1.87±0.32#

    子癇前期大鼠伴有嚴(yán)重的全身炎癥反應(yīng),包括內(nèi)皮細(xì)胞和白細(xì)胞的激活,且有大量中性粒細(xì)胞活化,介導(dǎo)機(jī)體炎癥反應(yīng)。過度的炎癥反應(yīng)會(huì)損傷胚胎組織滋養(yǎng)細(xì)胞,并降低其浸潤(rùn)能力,進(jìn)而過度凋亡,且會(huì)損傷血管內(nèi)皮,誘導(dǎo)促炎因子、細(xì)胞因子和細(xì)胞黏附因子等大量分泌,造成嚴(yán)重的炎癥反應(yīng),使子癇前期大鼠胎盤缺氧缺血造成的損傷進(jìn)一步加重,造成胎盤組織血流灌注嚴(yán)重不足,使細(xì)胞損傷及凋亡加速,導(dǎo)致各臟器血流灌注均降低,加速子癇前期疾病的發(fā)生發(fā)展進(jìn)程,出現(xiàn)蛋白尿、高血壓等 癥 狀[11-12]。IL-6、IL-1β和TNF-α在 子 癇 前 期 的炎癥反應(yīng)中起到重要作用,可用于反映子癇前期嚴(yán)重程度[13-14]。以往研究結(jié)果顯示,子癇前期大鼠給予MgSO4治療可以降低炎癥因子IL-1β和TNF-α水平,給予抗炎細(xì)胞因子IL-10可以改善尿蛋白排泄和血壓,給予免疫抑制劑治療可以減輕炎癥反應(yīng)、改善癥狀。這些研究結(jié)果顯示抑制子癇前期大鼠炎癥反應(yīng)可以有效改善臨床癥狀[15]。NF-κB是細(xì)胞中廣泛存在的一種蛋白因子,其家族中p65亞單位具有重要的促炎作用,可激活多種炎癥因子,IL-1和TNF-α是NF-κB的 靶 基 因 和 激 動(dòng) 劑,NF-κB激 活后會(huì)促進(jìn)IκB-α表達(dá),IκB-α又會(huì)轉(zhuǎn)移至細(xì)胞質(zhì)形成負(fù)反饋調(diào)節(jié)[16]。巨噬細(xì)胞上的α7nAChR可與胎盤內(nèi)源性釋放的乙酰膽堿結(jié)合抑制細(xì)胞因子產(chǎn)生,α7nAChR對(duì)NF-κB途徑具有一定的控制作用[17]。

    PI3K是磷脂酰肌醇激酶,同時(shí)具有絲/蘇氨酸激酶和磷脂酰肌醇激酶活性,在細(xì)胞內(nèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)中具有重要作用。正常條件下,PI3K在細(xì)胞內(nèi)表達(dá)量較少,而當(dāng)細(xì)胞受損時(shí),細(xì)胞因子、生長(zhǎng)因子和激素等細(xì)胞外信號(hào)分子被激活,促使PI3K表達(dá)上調(diào)。Akt是PI3K下游信號(hào)分子,在PI3K/Akt/mTOR通路中處于核心地位,PI3K激活后會(huì)產(chǎn)生第二信使PIP3,進(jìn)而使Akt完全活化,活化后的Akt會(huì)轉(zhuǎn)移至細(xì)胞核或細(xì)胞質(zhì)內(nèi),對(duì)其下游靶分子進(jìn)行調(diào)控。mTOR屬于磷脂酰肌醇激酶相關(guān)的激酶家族,多條信號(hào)通路匯聚于此,激活后的Akt進(jìn)一步激活mTOR,然后繼續(xù)調(diào)控其下游靶蛋白,發(fā)揮生物學(xué)效應(yīng)。PI3K/Akt/mTOR通路在細(xì)胞凋亡、增殖及血管生成等過程具有重要的作用,有研究顯示通過降低Akt水平和mTOR水平即抑制PI3K/Akt/mTOR通路可以抑制滋養(yǎng)細(xì)胞的侵襲能力,降低血管生成能力[18]。而黃芩苷對(duì)該信號(hào)通路具有促進(jìn)作用,進(jìn)而改善胎盤滋養(yǎng)層細(xì)胞侵襲能力和血管生成能力[19-20]。本研究結(jié)果顯示,處理組IL-6、IL-1β、TNF-α水 平 和NF-κB、IκB-α蛋 白 表 達(dá) 水平與模型組相比均顯著降低,處理組大鼠胎盤組織中α7nAChR RNA表達(dá)水平顯著高于模型組和對(duì)照組,處理組Akt和mTOR蛋白表達(dá)水平與模型組相比均顯著升高。另有研究顯示,PI3K/Akt 信號(hào)通路的激活可能與 NF-κB 信號(hào)通路的抑制存在直接或間接的關(guān)系[7],提示黃芩苷可以上調(diào)Akt和mTOR表達(dá)水平,促進(jìn)PI3K/Akt/mTOR信號(hào)通路,降低血管內(nèi)皮損傷,改善血管內(nèi)皮功能,從而降低炎性反應(yīng)。

    子癇前期大鼠伴有免疫功能失調(diào),機(jī)體正常條件下CD4+/CD8+處于穩(wěn)態(tài)平衡,免疫失調(diào)時(shí),該平衡會(huì)被打破[21]。NF-κB的活化與機(jī)體免疫有密切關(guān)系,其在T細(xì)胞的活化和樹突狀細(xì)胞的抗原呈遞方面具有重要的參與作用。樹突狀細(xì)胞大量表達(dá)IκB-α后會(huì)對(duì)NF-κB的活性起到抑制作用,引發(fā)免疫耐受[22-23]。mTOR信號(hào)途徑在維持T細(xì)胞的生長(zhǎng)及其活化、分化及代謝等生理過程發(fā)揮作用,活化的T細(xì)胞可刺激信號(hào)CD28,進(jìn)而活化PI3K/Akt/mTOR信號(hào)通路,而黃芩苷可促進(jìn)該信號(hào)通路,進(jìn)而提高機(jī)體免疫功能[24,25]。本研究結(jié)果顯示,處理組大鼠與模型組相比,CD3+、CD4+、CD4+/CD8+水平均顯著降低,CD8+水平顯著升高,提示黃芩苷可通過促進(jìn)PI3K/Akt/mTOR信號(hào)通路提高子癇前期大鼠機(jī)體免疫功能。

    綜上,黃芩苷可以通過促進(jìn)PI3K/Akt/mTOR信號(hào)通路抑制機(jī)體炎癥反應(yīng),改善機(jī)體免疫功能。

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