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    德拉馬尼血藥濃度測(cè)定方法的建立及應(yīng)用Δ

    2022-12-29 12:49:50丁巧燕張歡馬麗華李思思張宇周銘武漢市肺科醫(yī)院藥學(xué)部武漢430030
    中國(guó)藥房 2022年24期
    關(guān)鍵詞:血藥濃度質(zhì)譜血漿

    丁巧燕,張歡,馬麗華,李思思,張宇,周銘(武漢市肺科醫(yī)院藥學(xué)部,武漢 430030)

    結(jié)核?。╰uberculosis,TB)是由單一病原體引發(fā)的傳染病,是全球患者十大死亡原因之一,嚴(yán)重危害人類健康[1]。據(jù)世界衛(wèi)生組織(WHO)統(tǒng)計(jì),2020年全球新發(fā)TB患者達(dá)990萬(wàn)例,發(fā)病率為127/10萬(wàn),其中耐多藥結(jié)核病(multidrug resistant tuberculosis,MDR-TB)和耐利福平TB患者共計(jì)13.22萬(wàn)例,但只有1/3的患者接受了適當(dāng)?shù)闹委?;我?guó)新發(fā)TB患者占全球新發(fā)患者總數(shù)的8.5%,位居世界第二[2]。

    MDR-TB是由至少對(duì)異煙肼和利福平這兩種一線用于TB藥物耐藥的結(jié)核分枝桿菌引起的[3]。盡管臨床使用各種組合的強(qiáng)效藥物來(lái)進(jìn)行治療,但結(jié)核分枝桿菌已經(jīng)持續(xù)表現(xiàn)出抵抗抗結(jié)核藥的能力,耐藥TB菌株在全世界范圍內(nèi)以驚人的速度出現(xiàn),每年約有50萬(wàn)例感染患者[4]。由于MDR-TB的治療成功率較低,臨床迫切需要新型的抗結(jié)核藥[5]。在此背景下,德拉馬尼(delamanid,DLM)于2014年獲得歐洲藥品管理局(European Medicines Agency,EMA)批準(zhǔn),并于同年被WHO推薦用于MDR-TB成年患者的治療[5]。

    治療藥物監(jiān)測(cè)(therapeutic drug monitoring,TDM)是用于指導(dǎo)個(gè)體化診療的手段之一,其旨在通過(guò)血藥濃度來(lái)調(diào)整藥物劑量以提高治療效果、降低不良反應(yīng)發(fā)生風(fēng)險(xiǎn),同時(shí)最大限度地減少毒性[6]。DLM是一種雙環(huán)硝基咪唑類化合物,為新型抗結(jié)核藥,可通過(guò)在細(xì)胞內(nèi)生成一氧化氮來(lái)發(fā)揮抗結(jié)核分枝桿菌的作用[7]。研究指出,DLM的療效具有濃度依賴性,血藥濃度過(guò)低可能導(dǎo)致療效不佳,血藥濃度過(guò)高則可能引發(fā)不良反應(yīng)[8]。因此,本文從臨床實(shí)際需求出發(fā),建立了快速、準(zhǔn)確的高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(LC-MS/MS)法,并將其用于檢測(cè)TB患者體內(nèi)DLM的血藥濃度,以期為臨床用藥提供指導(dǎo)。

    1 材料

    1.1 主要儀器

    本研究所用主要儀器包括4500MD型LC-MS/MS系統(tǒng)(美國(guó)AB Sciex公司),5810R型臺(tái)式高速大容量離心機(jī)、5424R型微量臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)(德國(guó)Eppendorf公司),Milli-Q Reference型超純水系統(tǒng)(美國(guó)Millipore公司),XSR105DU型十萬(wàn)分之一分析天平[梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司]等。

    1.2 主要藥品與試劑

    DLM片(國(guó)藥準(zhǔn)字J20180086,規(guī)格50 mg)購(gòu)自日本 Otsuka Pharmaceutical Co.,Ltd.;DLM 對(duì)照品(批號(hào)C08A11L110842,純度99%)購(gòu)自上海源葉生物科技有限公司;甲醇、甲酸、二甲基亞砜(DMSO)均為色譜純,其余試劑均為分析純,水為超純水。

    1.3 空白血漿

    空白血漿采集于武漢市肺科醫(yī)院進(jìn)行體檢的健康者。

    2 方法與結(jié)果

    2.1 色譜條件

    以 Phenomenex SynergiTMFusion-RP(50 mm×32 mm,4 μm)為色譜柱,以甲醇(A)-0.1%甲酸溶液(B)為流動(dòng)相進(jìn)行梯度洗脫(0~0.5 min,40%A;0.5~0.6 min,40%A→90%A;0.6~2.9 min,90%A;2.9~3.0 min,90%A→40%A;3.0~4.0 min,40%A);柱溫為40 ℃;流速為0.3 mL/min;進(jìn)樣量為1 μL。

    2.2 質(zhì)譜條件

    離子源為電噴霧離子源(electrospray ionization,ESI),以多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(multi-reaction monitoring,MRM)模式進(jìn)行正離子掃描;離子化電壓為5 500 V;霧化氣溫度為600 ℃;氣簾氣壓力為25 psi;碰撞氣壓力為6 psi;噴霧氣壓力為45 psi;輔助加熱氣壓力為55 psi;用于定量分析的DLM離子對(duì)為m/z535.0→352.0,碰撞能量為38.1 eV;去簇電壓為124.6 V;用于定性分析的DLM離子對(duì)為m/z535.0→356.9,碰撞能量為26.3 eV,去簇電壓為114.0 V。

    2.3 對(duì)照品溶液和質(zhì)控樣品的制備

    精密稱取DLM對(duì)照品10 mg,溶于DMSO中,配制成質(zhì)量濃度為1 mg/mL的儲(chǔ)備液,置于-20 ℃冰箱中保存。取適量?jī)?chǔ)備液,用DMSO稀釋,得質(zhì)量濃度分別為1、5、10、20、40、80、160 μg/mL的系列標(biāo)準(zhǔn)溶液和1、2、20、120 μg/mL的質(zhì)控溶液。精密量取空白血漿95 μL,分別加入上述系列標(biāo)準(zhǔn)溶液各5 μL,制成質(zhì)量濃度分別為0.05、0.25、0.5、1、2、4、8 μg/mL的系列標(biāo)準(zhǔn)曲線血漿樣品;同法制備質(zhì)量濃度分別為0.05、0.1、1、6 μg/mL的質(zhì)控血漿樣品,備用。

    2.4 血漿樣品的處理

    精密吸取待測(cè)血漿樣品40 μL,置于1.5 mL離心管中,精密加入甲醇360 μL,振蕩混勻1 min后,于4 ℃下以12 000 r/min離心10 min,取上清液進(jìn)行LC-MS/MS分析。

    2.5 方法學(xué)考察

    按照2020年版《中國(guó)藥典》(四部)通則的相關(guān)要求進(jìn)行方法學(xué)考察[9]。

    2.5.1 專屬性考察 取6份不同來(lái)源的空白血漿、空白血漿+DLM對(duì)照品(0.5 μg/mL)和服用DLM患者的血漿樣品,分別按“2.4”項(xiàng)下方法處理后,再按“2.1”“2.2”項(xiàng)下色譜與質(zhì)譜條件進(jìn)樣分析,記錄色譜圖。結(jié)果顯示,在上述條件下,DLM的保留時(shí)間約為1.9 min,血漿中的內(nèi)源性物質(zhì)不影響DLM的測(cè)定,表明該方法專屬性良好,詳見(jiàn)圖1(空白血漿樣品圖略)。

    圖1 DLM專屬性考察的色譜圖

    2.5.2 線性關(guān)系和定量下限的考察 取“2.3”項(xiàng)下系列標(biāo)準(zhǔn)曲線血漿樣品,按照“2.4”項(xiàng)下方法處理后,再按照“2.1”“2.2”項(xiàng)下色譜與質(zhì)譜條件進(jìn)樣分析,記錄峰面積。以DLM峰面積為縱坐標(biāo)(y)、DLM質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(x),用最小加權(quán)法(加權(quán)系數(shù)為1/x2)進(jìn)行線性回歸,得DLM的回歸方程為y=1.745 45×106x+20 346.322 71(r=0.999 5)。結(jié)果表明,DLM檢測(cè)質(zhì)量濃度的線性范圍為0.05~8 μg/mL,定量下限為0.05 μg/mL。

    2.5.3 準(zhǔn)確度與精密度試驗(yàn) 取“2.3”項(xiàng)下定量下限質(zhì)量濃度(0.05 μg/mL)和低、中、高質(zhì)量濃度(0.1、1、6 μg/mL)的質(zhì)控血漿樣品,按照“2.4”項(xiàng)下方法處理后,再按照“2.1”“2.2”項(xiàng)下色譜與質(zhì)譜條件連續(xù)進(jìn)樣5次,考察日內(nèi)精密度;連續(xù)測(cè)定3 d,考察日間精密度;以實(shí)測(cè)質(zhì)量濃度與理論質(zhì)量濃度進(jìn)行比較,考察準(zhǔn)確度。結(jié)果顯示,該方法日內(nèi)和日間精密度的RSD均小于10%,準(zhǔn)確度為92.7%~104.9%,詳見(jiàn)表1。

    表1 精密度與準(zhǔn)確度試驗(yàn)結(jié)果

    2.5.4 基質(zhì)效應(yīng)與萃取回收率試驗(yàn) 分別用3種方法制備低、中、高質(zhì)量濃度(0.1、1、6 μg/mL)的待測(cè)樣品——第1組:取DLM對(duì)照品適量,用50%甲醇稀釋,制成低、中、高質(zhì)量濃度的DLM溶液,按照“2.1”“2.2”項(xiàng)下色譜與質(zhì)譜條件進(jìn)樣分析,得峰面積A;第2組:取空白血漿,加9倍體積的甲醇以沉淀蛋白,離心后取上清液(具體操作同“2.4”項(xiàng)),以此上清液作為基質(zhì),制備低、中、高質(zhì)量濃度的DLM樣品溶液,按照“2.1”“2.2”項(xiàng)下色譜與質(zhì)譜條件進(jìn)樣分析,得峰面積B;第3組:取DLM對(duì)照品適量,用空白血漿稀釋,制成低、中、高質(zhì)量濃度的DLM血漿樣品,按照“2.4”項(xiàng)下方法處理后,再按照“2.1”“2.2”項(xiàng)下色譜與質(zhì)譜條件進(jìn)樣分析,得峰面積C。按下式分別計(jì)算基質(zhì)效應(yīng)和萃取回收率:基質(zhì)效應(yīng)=B/A×100%,萃取回收率=C/B×100%。各質(zhì)量濃度樣品平行操作5份。結(jié)果顯示,各樣品的平均基質(zhì)效應(yīng)為94.3%~107.5%,平均萃取回收率為93.2%~98.1%,詳見(jiàn)表2。

    表2 基質(zhì)效應(yīng)與萃取回收率試驗(yàn)結(jié)果(±s,n=5)

    表2 基質(zhì)效應(yīng)與萃取回收率試驗(yàn)結(jié)果(±s,n=5)

    理論質(zhì)量濃度/(μg/mL)0.1 1 6基質(zhì)效應(yīng)/%107.5±3.0 98.6±1.0 94.3±2.7萃取回收率/%98.1±2.8 93.2±1.6 96.7±1.4

    2.5.5 穩(wěn)定性試驗(yàn) 按照“2.3”項(xiàng)下方法制備低、中、高質(zhì)量濃度(0.1、1、6 μg/mL)的質(zhì)控血漿樣品,分別于室溫下放置2 h、4 ℃放置6 h、-20 ℃下放置7 d、-80 ℃放置15 d、反復(fù)凍融(-80 ℃~室溫)2或3次后,按照“2.4”項(xiàng)下方法處理后,再按照“2.1”“2.2”項(xiàng)下色譜與質(zhì)譜條件進(jìn)樣分析,考察各樣品在上述條件下的穩(wěn)定性(各質(zhì)量濃度樣品平行操作5份,結(jié)果以實(shí)測(cè)質(zhì)量濃度的RSD表示)。結(jié)果顯示,除反復(fù)凍融3次外,各樣品在其余條件下放置的穩(wěn)定性均較好(RSD均小于10%),詳見(jiàn)表3。

    表3 血漿樣品的穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果(n=5,%)

    同時(shí),按照“2.3”項(xiàng)下方法配制質(zhì)量濃度為1 mg/mL的DLM儲(chǔ)備液和質(zhì)量濃度分別為10、80 μg/mL的DLM標(biāo)準(zhǔn)溶液,考察上述溶液于室溫下放置6 h、4 ℃放置15 d的穩(wěn)定性(各質(zhì)量濃度樣品平行操作5份,結(jié)果以實(shí)測(cè)質(zhì)量濃度的RSD表示)。結(jié)果顯示,各樣品在上述條件下放置的穩(wěn)定性均較好(RSD均小于10%),詳見(jiàn)表4。

    表4 儲(chǔ)備液和標(biāo)準(zhǔn)溶液的穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果(n=5,%)

    2.5.6 殘留效應(yīng) 取“2.3”項(xiàng)下質(zhì)量濃度為8 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)曲線血漿樣品,按照“2.4”項(xiàng)下方法處理后,再按照“2.1”“2.2”項(xiàng)下色譜與質(zhì)譜條件進(jìn)樣分析,隨后同法測(cè)定空白血漿樣品以考察殘留效應(yīng)。結(jié)果顯示,在DLM相同的保留時(shí)間處,空白血漿樣品對(duì)應(yīng)色譜峰峰面積與定量下限質(zhì)量濃度血漿樣品色譜峰峰面積的比值小于5%,表明殘留效應(yīng)對(duì)DLM的定量分析無(wú)明顯影響。

    2.5.7 稀釋可靠性 取“2.3”項(xiàng)下質(zhì)量濃度為8 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)曲線血漿樣品,用空白血漿稀釋10倍后,按照“2.4”項(xiàng)下方法處理后,再按照“2.1”“2.2”項(xiàng)下色譜與質(zhì)譜條件進(jìn)樣分析以考察稀釋可靠性(樣品平行操作5份)。結(jié)果顯示,稀釋后樣品的精密度RSD小于10%,準(zhǔn)確度為98.9%,表明血漿樣品用空白血漿稀釋10倍對(duì)DLM的定量分析無(wú)明顯影響。

    2.6 方法應(yīng)用

    2.6.1 患者的納入與排除標(biāo)準(zhǔn) 納入標(biāo)準(zhǔn)包括:(1)年齡18~65歲;(2)臨床確診為MDR-TB患者;(3)規(guī)律服用DLM片1周以上,中途未中斷或未更改劑量;(4)同意參加試驗(yàn)并已簽署知情同意書。排除標(biāo)準(zhǔn)包括:(1)不耐受藥物不良反應(yīng)者;(2)1周內(nèi)服用對(duì)DLM藥物濃度有影響的藥物者,如利福平等強(qiáng)細(xì)胞色素P450(cytochrome P450,CYP)3A4誘導(dǎo)劑[8];(3)妊娠期或哺乳期婦女。本研究方案經(jīng)武漢市肺科醫(yī)院醫(yī)學(xué)倫理委員會(huì)審查批準(zhǔn),批件號(hào)為武肺倫理(2021)20號(hào)。

    2.6.2 用藥情況 本研究共納入我院2021年4-10月收治的MTB-TB患者6例。其中,男性2例、女性4例;平均年齡為(28.8±11.7)歲;所有患者均口服DLM片,每次100 mg,每天2次,連續(xù)服用1周以上。

    2.6.3 檢測(cè)方法及結(jié)果 使用乙二胺四乙酸抗凝管采集患者末次服藥后4 h的靜脈血,于4 ℃下以3 000 r/min離心10 min,取上層血漿于離心管中,置于-80 ℃冰箱中保存,備用。取患者血漿樣品,按照“2.4”項(xiàng)下方法處理后,再按照“2.1”“2.2”項(xiàng)下色譜與質(zhì)譜條件進(jìn)樣分析,記錄峰面積并使用隨行標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算DLM的血藥濃度。結(jié)果顯示,6例患者體內(nèi)DLM的血藥濃度為0.61~2.76 μg/mL,平均(1.67±0.74)μg/mL。

    3 討論

    DLM是一種霉菌酸生物合成抑制劑,對(duì)復(fù)制和休眠的結(jié)核分枝桿菌以及細(xì)胞內(nèi)外的結(jié)核桿菌均具有抑制活性[10—11]。有研究指出,DLM聯(lián)合其他活性藥物用于難治性耐藥TB,可實(shí)現(xiàn)較高的培養(yǎng)陰性率,且具有良好的安全性[12]。然而,在DLM上市后不久,臨床出現(xiàn)了耐DLM結(jié)核桿菌感染患者,因此對(duì)該藥的耐藥性進(jìn)行系統(tǒng)監(jiān)測(cè)很有必要[13]。為了最大限度地延緩和減少耐DLM結(jié)核桿菌的出現(xiàn),選擇綜合治療方案并于治療期間進(jìn)行TDM十分重要,通過(guò)監(jiān)測(cè)DLM血藥濃度,可及時(shí)調(diào)整給藥劑量,有助于實(shí)現(xiàn)個(gè)體化給藥、降低耐藥率、提高臨床療效。

    TDM常用的分析技術(shù)主要有光譜法、色譜法和免疫學(xué)檢測(cè)技術(shù)等,從藥物專屬性上推薦采用LC-MS/MS和高效液相色譜(HPLC)技術(shù)[14]。由于DLM在患者體內(nèi)的血藥濃度較低,HPLC技術(shù)已不能滿足臨床監(jiān)測(cè)需求,而LC-MS/MS技術(shù)專屬性強(qiáng)、靈敏度高,可降低內(nèi)源性物質(zhì)和其他藥物的干擾,加之檢測(cè)速度較快,故適用于DLM血藥濃度的大樣本監(jiān)測(cè)?;诖?,本研究建立了檢測(cè)DLM血藥濃度的LC-MS/MS法并將其應(yīng)用于臨床。

    在流動(dòng)相的選擇中,為了弱化色譜峰拖尾并提高檢測(cè)的準(zhǔn)確性,本課題組分別考察了流動(dòng)相中加入甲酸或(和)甲酸銨后的出峰情況,結(jié)果顯示,在水相中加入甲酸,所得色譜峰的峰形較好;隨后,本課題組依次以0.1%、0.2%甲酸溶液為水相,考察了兩者的分離效果,最終選擇了0.1%甲酸溶液作為水相,并確定了“2.1”項(xiàng)下色譜條件。

    本課題組前期在掃描母離子時(shí)發(fā)現(xiàn),DLM易形成[M+H]+峰,且在MRM正離子模式下的靈敏度較高;隨后,本課題組對(duì)離子化電壓、霧化氣溫度、氣簾氣壓力、碰撞氣壓力、碰撞能量、去簇電壓等質(zhì)譜參數(shù)進(jìn)行優(yōu)化,以進(jìn)一步提高靈敏度并降低基線信噪比,最終得到了“2.2”項(xiàng)下質(zhì)譜條件。

    研究指出,以甲醇沉淀蛋白所得樣品的基質(zhì)效應(yīng)明顯[15]。為此,本課題組首先在滿足DLM血藥濃度定量分析的前提下適當(dāng)增加甲醇的體積,以減少基質(zhì)效應(yīng)的影響,最終確定按血漿-甲醇(1∶9,V/V)進(jìn)行蛋白沉淀。隨后,本課題組采用梯度洗脫方式,通過(guò)調(diào)整流速、優(yōu)化水相和有機(jī)相的比例,盡可能地減少內(nèi)源性物質(zhì)的干擾。

    本課題組前期分別采用內(nèi)標(biāo)法(以DLM同位素為內(nèi)標(biāo))和外標(biāo)法進(jìn)行DLM的定量分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn),2種方法并無(wú)明顯差別。結(jié)合相關(guān)文獻(xiàn)[16—17]推薦,為縮短臨床大樣本監(jiān)測(cè)時(shí)間并降低檢測(cè)成本,本研究最終選擇了外標(biāo)法,以隨行標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算MDR-TB患者體內(nèi)DLM的血藥濃度。

    對(duì)比Meng等[18]所建的方法,本研究所建方法需要的樣本量較少,僅需40 μL的血漿即可完成檢測(cè);同時(shí),以甲醇沉淀蛋白進(jìn)行血漿樣品前處理,操作較為簡(jiǎn)便;在流動(dòng)相組成方面,本法使用了成本較低且組成簡(jiǎn)單的甲醇-甲酸溶液;此外,DLM的出峰時(shí)間為1.9 min,檢測(cè)時(shí)間不超過(guò)4 min,適用于臨床大樣本的快速檢測(cè)。

    綜上所述,本研究成功建立了檢測(cè)人血漿中DLM濃度的LC-MS/MS法,可用于檢測(cè)MDR-TB患者體內(nèi)DLM的血藥濃度。由于目前暫無(wú)明確的DLM有效治療濃度范圍,且本研究的樣本量較小,故后期本課題組將擴(kuò)大樣本量進(jìn)行檢測(cè),同時(shí)收集該藥有效性和安全性的相關(guān)數(shù)據(jù),完善臨床藥動(dòng)學(xué)研究。

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