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    睪丸間質細胞傳代、凍存、復蘇初步研究

    2022-12-13 04:54:46呂雙陽山東省海陽市二十里店鎮(zhèn)畜牧獸醫(yī)站
    中國畜牧業(yè) 2022年22期
    關鍵詞:方法

    文│呂雙陽(山東省海陽市二十里店鎮(zhèn)畜牧獸醫(yī)站)

    隨著對細胞的不斷傳代,優(yōu)勢細胞逐漸生長,傳代培養(yǎng)的細胞梭形占比逐漸加大,而生長速度慢或是生長活力低的細胞會被逐漸淘汰。細胞凍存復蘇后的狀態(tài)與凍存保護劑種類、凍存時間、凍存方式、細胞復蘇方法等有關,也與各種生物學試驗結果有關。為了更好地建立細胞庫,實現(xiàn)其相應價值,筆者對此進行了試驗探索,下面則是具體的試驗過程和相關結論。

    一、材料與方法

    1.主要試劑。RPMI-1640培養(yǎng)基(GIBCO)、胎牛血清(HyClone)、Ⅱ型膠原酶(Sigma)、胰酶、臺盼藍、二甲苯。

    2.試驗動物。健康3周齡的榮昌公豬。為了增強試驗效果的普遍適用性,本次選擇過程采取隨機選擇的方式,盡量降低人為干擾。

    3.試驗方法與檢測方法。試驗方法及檢測方法都會對最終的結果產生一定的影響,因而為了選擇更佳的榮昌仔豬睪丸間質細胞傳代及凍存復蘇培養(yǎng)方法,筆者嘗試進行如下方法。

    (1)仔豬睪丸間質細胞的傳代及凍存與復蘇。睪丸間質細胞的傳代培養(yǎng):為了試驗的精準性,在睪丸間質細胞傳代培養(yǎng)過程中有很多注意事項,下面對此進行具體剖析。進入試驗階段的原代細胞需要經過一定的篩選和過濾,這不僅是為了試驗的精準性,同時也是為了更好地普及和推廣相應方法?;驹瓌t為:細胞單層大概要長到95%左右最好,然后舍棄其中的營養(yǎng)液。先用新鮮培養(yǎng)液清洗、棄去,然后加入1~2毫升的0.25%胰酶,靜置5~10分鐘,棄去胰酶后加入培養(yǎng)液,用吸管吸取培養(yǎng)液,并反復吹打培養(yǎng)瓶瓶壁細胞,形成細胞懸液。將細胞懸液吸入10毫升離心管中,1000轉/分鐘離心5分鐘,棄去上清液,加入適量新鮮培養(yǎng)液,移入新的培養(yǎng)瓶中,37℃,5% CO2,飽和濕度下培養(yǎng)。24小時后換液,以后每天換液一次。

    睪丸間質細胞的凍存與復蘇。細胞凍存:選用傳代第一次的細胞,細胞消化同傳代培養(yǎng)的方法,將細胞懸液收集至離心管中,1000轉/分鐘離心5分鐘,棄去上清液,細胞沉淀中加入凍存培養(yǎng)液(含10%的DMSO),移入凍存管中,計數(shù),細胞濃度為5×106/毫升左右。

    采用兩種方法對細胞進行凍存。

    慢凍方法:將培養(yǎng)的細胞分為4組,然后分批次、分溫度、分時間進行冷凍,具體溫度和時間如下:首先將凍存管放到4℃的冰箱中,靜置40分鐘,然后放到-20℃的冰箱中0.5~1小時,之后將其放到-80℃的冰箱中,這種冰箱屬于超低溫冰箱,此時需要將凍存管進行過夜放置,最后將其放到液氮罐中保留。這種方法環(huán)節(jié)較多且操作嚴格,需要格外細致。

    快凍方法:第一步與慢凍方法一致,也是劃為4組,將凍存管(管口要朝上)放到紗布袋內,放入-80℃超低溫冰箱中過夜,第二天就可以觀察其變化,然后直接放入液氮罐中保存。雖然快凍方法中突出的是速度、時間問題,但其中所要注意的事項也不容忽視,尤其是紗布清潔度、溫度控制及第二天的觀察精細度等也都要格外注意。

    細胞復蘇:既然是復蘇就需要有一個解凍過程,具體操作步驟如下:首先從液氮罐中提取細胞,整個過程中也應注意清潔度、緩慢度,確保提取出來的細胞生命體征及特點不受外界因素干擾。然后放到適宜的溫度中進行融化,溫度約為38℃,融化時間控制在1分鐘左右即可,然后用培養(yǎng)液稀釋,低速離心10分鐘,棄去上清,加新鮮培養(yǎng)液培養(yǎng)剛復蘇的細胞。將細胞懸液與0.4%臺盼藍染液以9∶1比例混勻,并取少量混合液滲入計數(shù)板和蓋玻片的間隙中,血球計數(shù)板計數(shù),細胞復蘇率的計算公式如下:

    復蘇率/%=(活細胞數(shù)/細胞總數(shù))×100

    總之,復蘇過程相對復雜,涉及的環(huán)節(jié)比較多,在試驗過程中要格外注意。

    (2)仔豬睪丸間質細胞的鑒定。臺盼藍染色的活力測定:臺盼藍染色的活力測定需要一定的配比控制,具體將細胞懸液與0.4%臺盼藍染液按9∶1的比例混勻。取少量混合液滲入到計數(shù)板和蓋玻片的間隙中,在顯微鏡下計數(shù),主要觀察藍色的死細胞數(shù)量變化以及無色透明的活細胞數(shù)量變化,活細胞就代表細胞的活力,活細胞越多會導致活細胞率逐漸提升,具體計算公式如下:

    活細胞率/%=[活細胞總數(shù)/(活細胞總數(shù)+死細胞總數(shù))]×100

    3β-HSD細胞純度鑒定:在倒置顯微鏡下觀察經3β-HSD染色的細胞懸液,細胞質中會出現(xiàn)一些藍色顆粒狀細胞,這就是常說的睪丸間質細胞。此時用陽性來代表純度,純度鑒定由此展開,具體計算公式如下。

    陽性細胞率/%=(3β-HSD陽性細胞數(shù)÷總細胞數(shù))×100

    二、試驗結果

    1.仔豬睪丸間質細胞傳代及凍存與復蘇。

    (1)睪丸間質細胞傳代生長狀況。傳代細胞經過1天左右的變化就可以觀測到睪丸間質細胞貼壁的動態(tài),基本是次日開始出現(xiàn)觸角,此時隨著代數(shù)的不斷增多,細胞梭形也會開始產生變化,如占比逐漸提升。如圖1、圖2。

    (2)睪丸間質細胞凍存與復蘇結果。本試驗中應用的凍存劑是10%二甲亞砜,其具有分子量小、溶解能力強、滲透能力強等特點,也是應用最廣的凍存保護劑。試驗采用兩種不同的冷凍方法后發(fā)現(xiàn),采用慢凍方法冷凍后細胞復蘇率較高。冷凍速度對細胞內部的影響十分明顯,尤其是生理變化值得探究。經過試驗可以得出如下結論,冷凍速度直接會影響細胞水分及體積,具體表現(xiàn)特征為如果冷凍速度偏慢,細胞脫水問題比較明顯,導致細胞體積縮小,一旦達到一定程度,細胞活性將會受到影響,這種影響屬于溶質性損害。如果冷凍速度偏快,細胞內部的冰晶也會受到一定影響,直接影響融化速度。兩種凍存方法比較發(fā)現(xiàn),慢凍方法的細胞復蘇率大于快凍方法的細胞復蘇率,復蘇率見表1。

    由表1可知,凍存方法不同,細胞復蘇率也呈現(xiàn)一定變化,雖然本次試驗分為4組,但通過橫向對比可以看出,不論哪組都可以很好地證明慢凍方法的細胞復蘇效果更好。這也很好地詮釋了凍存、復蘇之間的關系。

    表1 兩種凍存方法的復蘇率 %

    三、討論

    在細胞體外培養(yǎng)中,為了試驗實際操作,需要長期保存細胞的生物活性,細胞凍存與復蘇是經常使用的試驗操作。細胞凍存復蘇后的狀態(tài)與凍存保護劑的種類、凍存時間、凍存方式、細胞復蘇方法等有關,也與各種生物學試驗結果有關。

    試驗采用兩種不同的冷凍方法,即慢凍方法和快凍方法,結果發(fā)現(xiàn),慢凍方法冷凍后細胞復蘇率較高。也有研究發(fā)現(xiàn),兩種方法之間的過渡方法凍存復蘇后,細胞復蘇率高于其他兩種凍存方法,這可能與試驗材料、試驗方法有關。

    因此,在細胞復蘇過程中對溫度控制和觀察力度都要格外注意,因為溫度變化會影響解凍速度,觀察的敏銳性可以很好地進行調整。因此,需要思考如何在不影響細胞質量的前提下進行緩慢解凍,既可以保證細胞復蘇的進程,同時又可以很好地控制細胞損傷度,雖然存在一定難度,但只要協(xié)調就可以很好地為細胞庫建立和細胞活性保持提供更強的后盾。

    ◎圖1 傳代1天的睪丸間質細胞(100×)

    ◎圖2 傳代3天的睪丸間質細胞(100×)

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