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    60Co γ射線照射對人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞線粒體結(jié)構(gòu)和功能的影響

    2022-11-28 06:31:12閆凱欣趙亞偉王溢豪胡舜英
    關(guān)鍵詞:檢測

    閆凱欣,趙亞偉,王溢豪,易 靜,段 晗,陶 寧,王 華,,胡舜英

    (1.解放軍總醫(yī)院心血管病醫(yī)學(xué)部,北京 100853;2.軍事科學(xué)院軍事醫(yī)學(xué)研究院輻射醫(yī)學(xué)研究所,北京 100850;3.安徽醫(yī)科大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,安徽 合肥 230032)

    放射性心臟?。╮adiation-induced heart disease,RIHD)是臨近心臟的胸部腫瘤放療時,射線損傷心臟所產(chǎn)生的遲發(fā)性心臟并發(fā)癥[1]。近年來,對于與縱膈放療相關(guān)的心血管并發(fā)癥的研究發(fā)現(xiàn),相比無放療史的患者,有縱隔放療史的患者的冠心病發(fā)生率更高,對RIHD長期發(fā)展的影響更大[2]。臨床研究顯示,縱隔淋巴瘤、乳腺癌、肺癌和食管癌患者在接受局部放療后多年誘發(fā)心臟毒性的風(fēng)險明顯增加,且產(chǎn)生的心臟毒性均與RIHD的發(fā)生有關(guān)[3-4]。但是,放射治療是癌癥治療一種重要的手段,通過放療可提高許多癌癥患者的生存率,為改善腫瘤患者的長期預(yù)后,需高度重視放療所帶來的RIHD并發(fā)癥,深入研究RIHD發(fā)病機(jī)制具有重要臨床意義[5]。

    相比于心臟組織中其他類型的細(xì)胞,血管內(nèi)皮細(xì)胞對于輻射更為敏感[6]。目前認(rèn)為,RIHD的發(fā)病機(jī)制主要在于射線對于血管內(nèi)皮細(xì)胞的損傷,從而導(dǎo)致冠脈受損[7]。研究發(fā)現(xiàn),大鼠接受20 Gy射線心臟局部照射,在照射后120 d,照射組大鼠心肌微循環(huán)灌注較未照射組顯著下降[7]。但血管內(nèi)皮細(xì)胞的放射損傷機(jī)制仍未完全闡明[8]。放射生物學(xué)的經(jīng)典理論認(rèn)為,射線導(dǎo)致DNA損傷是機(jī)體放射損傷的主要機(jī)制[9],而有研究顯示,射線導(dǎo)致細(xì)胞中線粒體代謝障礙在放射損傷的發(fā)病機(jī)制中可能亦起著重要作用[3]。

    當(dāng)細(xì)胞受到放射、化療藥物和缺氧等外部刺激時,線粒體作為一種調(diào)節(jié)生物能量和生物合成途徑中的重要細(xì)胞器,可快速調(diào)節(jié)自身功能以滿足細(xì)胞的代謝需求[12]。線粒體功能狀態(tài)與線粒體膜電位、線粒體膜通道孔、活性氧(reactive oxygen species,ROS)生成和線粒體分裂等變化密切相關(guān)[13],健康的線粒體網(wǎng)絡(luò)對于心血管功能至關(guān)重要[14]。本研究通過60Co γ射線照射人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(human umbilical vein endothelial cells,HUVEC),觀察線粒體功能和線粒體結(jié)構(gòu),尤其是線粒體分裂及相關(guān)蛋白的變化,探討60Co γ射線照射對HUVEC線粒體結(jié)構(gòu)和功能的影響。

    1 材料與方法

    1.1 細(xì)胞、試劑和儀器

    HUVEC,美國菌種保藏中心。DMEM培養(yǎng)基、ROS檢測試劑盒,美國Thermo公司;胎牛血清,美國Gemini公司;RIPA裂解液和線粒體膜電位(mitochondrial membrane potential,MMP)(ΔΨm)檢測試劑盒,碧云天公司;細(xì)胞線粒體膜通道孔(mitochondrial permeability transition pore,mPTP)檢測試劑盒,上海杰美基因公司;APC-Annexin V/PI凋亡檢測試劑盒,美國Biogens公司;一抗:β肌動蛋白單抗,美國Proteintech公司;兔抗大鼠磷酸化動力相關(guān)蛋白1(power-related protein1,DRP1)和磷酸化線粒體分裂因子(mitochodrial division factor,MFF)單抗,基因集團(tuán)基因生物技術(shù)國際貿(mào)易(上海)有限公司;辣根過氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)標(biāo)記的山羊抗兔IgG抗體(二抗),北京中杉金橋公司;ECL發(fā)光液,北京莊盟公司。Power-Pac164-5050電泳儀,美國Bio-Rad公司;BD FACSCalibur流式細(xì)胞儀,美國BD公司;X-Light V3轉(zhuǎn)盤共聚焦,意大利CrestOptics公司;7500Fast實時熒光定量PCR系統(tǒng),美國ABI公司;Tanon5200全自動化學(xué)發(fā)光成像儀,上海天能公司;VarioskanFlash光譜掃描多功能讀數(shù)儀,美國Thermo公司;60Co γ射線輻照裝置由軍事醫(yī)學(xué)研究院輻射醫(yī)學(xué)研究所提供,單次照射劑量率為64.46 cGy·min-1。

    1.2 HUVEC培養(yǎng)和傳代

    以含有10%胎牛血清與1%HEPES液的低糖DMEM為HUVEC的培養(yǎng)基,置37℃,5%CO2的恒溫細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng),隔2 d換液,待細(xì)胞生長至80%~90%融合度時傳代,傳代比例為1∶3。

    1.3 HUVEC分組處理

    將生長狀態(tài)良好的HUVEC細(xì)胞以3×106L-1的密度接種于6孔板內(nèi)(每孔2 mL)置37℃,5%CO2的恒溫細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h使細(xì)胞均勻貼壁后,分別進(jìn)行5,10和20 Gy60Co γ射線照射,同時設(shè)未照射細(xì)胞為細(xì)胞對照組,①照射后24和48 h進(jìn)行相關(guān)檢測或②照射后48 h進(jìn)行相關(guān)檢測。

    1.4 細(xì)胞形態(tài)觀察

    利用顯微鏡觀察1.3分組①處理的細(xì)胞,觀察細(xì)胞形態(tài)、數(shù)量并拍照記錄。

    1.5 流式細(xì)胞術(shù)檢測HUVEC凋亡率

    收集1.3分組①處理的細(xì)胞用不含EDTA的胰酶消化貼壁的HUVEC細(xì)胞,300×g離心5 min,收集細(xì)胞后用磷酸鹽緩沖液漂洗2次。加5 μL APCAnnexinⅤ混勻,室溫避光孵育15 min;再加入PI細(xì)胞核染料5 μL混勻,室溫避光孵育10 min。洗滌后加入PBS 400 μL重懸細(xì)胞,用流式細(xì)胞儀檢測并分析細(xì)胞凋亡率〔早期凋亡細(xì)胞(APC+PI-)和晚期凋亡或壞死細(xì)胞(APC+PI+)〕。

    1.6 化學(xué)熒光染色法檢測HUVEC中ROS水平

    取1.3分組①處理的細(xì)胞,棄細(xì)胞培養(yǎng)上清,更換2 mL不含血清的DMEM培養(yǎng)基,每孔加入2 μL H2DCFDA 探針 10 mmol·L-1,使探針終濃度為 10 μmol·L-1,孵育 30 min。孵育結(jié)束后用 PBS漂洗3次,在激光共聚焦顯微鏡下隨機(jī)選取細(xì)胞分布均勻部位,觀察貼壁細(xì)胞,進(jìn)行定性分析。綠色熒光強(qiáng)度表示ROS水平。

    1.7 流式細(xì)胞術(shù)和化學(xué)熒光染色法檢測HUVEC線粒體膜電位

    1.7.1 流式細(xì)胞術(shù)

    將試劑盒中的 CCCP(10 mmol·L-1)按照 1∶1000的比例加入到細(xì)胞培養(yǎng)液中,稀釋至10 μmol·L-1,處理細(xì)胞 20 min 作為陽性對照。JC-1單體的最大激發(fā)波長為514 nm,最大發(fā)射波長為529 nm;JC-1聚合物的最大激發(fā)波長為585 nm,最大發(fā)射波長為590 nm。

    取1.3分組①處理的細(xì)胞,胰酶消化細(xì)胞,離心棄上清,用PBS漂洗1次,加培養(yǎng)基500 μL重懸細(xì)胞;再加染色工作液500 μL,混勻置培養(yǎng)箱避光孵育20 min;4℃,300×g離心5 min,棄上清,用預(yù)冷1×緩沖液漂洗2次;1×緩沖液500 μL重懸細(xì)胞,流式細(xì)胞儀檢測HUVEC細(xì)胞中紅色熒光細(xì)胞百分比,定量MMP。

    1.7.2 化學(xué)熒光染色法

    取1.3分組①處理的細(xì)胞,按線粒體膜電位化學(xué)熒光染色法檢測試劑盒操作說明操作。吸棄細(xì)胞培養(yǎng)上清,加新鮮細(xì)胞培養(yǎng)液1 mL和JC-1染色工作液0.5 mL,充分混勻,孵育20 min;孵育結(jié)束后吸棄上清,用預(yù)冷1×JC-1緩沖液洗滌2次,加細(xì)胞培養(yǎng)液1 mL,在激光共聚焦顯微鏡下隨機(jī)選取細(xì)胞分布均勻部位,觀察貼壁細(xì)胞,進(jìn)行定性分析。以紅色熒光與綠色熒光比值定量MMP(ΔΨm)。

    1.8 化學(xué)熒光染色法檢測HUVEC細(xì)胞線粒體膜通道孔開放狀態(tài)

    取1.3分組①處理的細(xì)胞,按mPTP檢測試劑盒操作說明操作。小心吸棄細(xì)胞培養(yǎng)上清,加37℃預(yù)熱的清理液0.5 mL清洗1次,再加染色工作液0.5 mL,充分混勻,置培養(yǎng)箱37℃避光孵育20 min,孵育結(jié)束后吸棄染色工作液,用預(yù)熱的清理液清洗2次,在激光共聚焦顯微鏡下隨機(jī)選取細(xì)胞分布均勻部位,觀察貼壁細(xì)胞,進(jìn)行mPTP開放定性分析。綠色熒光減弱表明mPTP活性增強(qiáng)、開放增加。

    1.9 透射電鏡觀察HUVEC細(xì)胞線粒體結(jié)構(gòu)

    取1.3分組②處理的細(xì)胞,軟毛刷輕輕刮下細(xì)胞,用2.5%戊二醛2%多聚甲醛混合固定液4℃固定過夜后,吸棄廢液,用磷酸鹽緩沖液(PBS)(0.1 mol·L-1,pH 7.4)洗3次;1%四氧化鋨(OsO4)常溫下固定1 h;回收 OSO4廢液;再次用 PBS(0.1 mol·L-1,pH 7.4)洗滌3次,每次10 min;梯度乙醇脫水后,分別用3∶1,1∶1的丙酮和環(huán)氧樹脂進(jìn)行樣本浸透。置烘箱60℃聚合24 h。用ImageJ軟件計算線粒體個數(shù),并測量周長和面積。

    1.10 Western印跡法檢測HUVEC中p-Drp1和p-Mff蛋白表達(dá)水平

    取1.3分組②處理的細(xì)胞,用RIPA裂解液裂解,10 000×g,4℃離心10 min,吸取上清液。BCA法測定蛋白質(zhì)濃度,調(diào)整各組蛋白質(zhì)濃度,以4∶1體積比加入5×上樣緩沖液混勻,100℃煮10 min。將提取的蛋白質(zhì)進(jìn)行聚丙烯酰胺凝膠電泳,上樣量為20 μg,分離后轉(zhuǎn)至PVDF膜,5%脫脂奶粉室溫封閉2 h。加入一抗(抗p-Drp1和p-Mff抗體,稀釋比均為1∶2000),4℃孵育過夜。TBS-T清洗4次,每次5 min。隨后加HRP標(biāo)記山羊抗兔IgG抗體(二抗)(1∶5000),室溫孵育1 h,TBS-T洗膜4次,每次5 min。以β肌動蛋白作為內(nèi)參對照。發(fā)光、顯影、掃描后分析蛋白條帶積分吸光度(integrated absorbance,IA),用目標(biāo)蛋白與內(nèi)參蛋白IA比值表示目標(biāo)蛋白相對表達(dá)水平。

    1.11 統(tǒng)計學(xué)分析

    實驗結(jié)果數(shù)據(jù)用±s表示,應(yīng)用GraphPad-Prism7進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,組間比較采用單因素方差分析和正態(tài)分布t檢驗分析。P<0.05為差異具有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 60Co γ射線照射對HUVEC細(xì)胞形態(tài)的影響

    形態(tài)觀察結(jié)果顯示,HUVEC細(xì)胞經(jīng)60Co γ射線照射后24和48 h,細(xì)胞對照組(0 Gy)生長狀態(tài)均良好,細(xì)胞數(shù)量多,細(xì)胞延展性較好,貼壁牢固,折光性好;而5,10和20 Gy照射組,隨照射劑量增加,HUVEC細(xì)胞數(shù)量逐漸減少,且細(xì)胞均有不同程度變小、皺縮,貼壁不牢固(圖1)。

    Fig.1 Effect of60Co γ-ray irradiation on human umbilical vein endothelial cells(HUVECs)morphology at 24 and 48 h post-irradiation under microscope.

    2.2 60Co γ射線照射對HUVEC細(xì)胞凋亡的影響

    流式結(jié)果顯示,60Co γ射線照射后24和48 h,與細(xì)胞對照組相比,5,10和20 Gy組HUVEC細(xì)胞凋亡率均增加(P<0.01)(圖2)。

    Fig.2 Effect of60Co γ-ray irradiation on apoptosis of HUVECs evaluated by flow cytometry.A2 and B2 were the quantitative results of A1(24 h)and B1(48 h),respectively.±s,n=3.**P<0.01,compared with 0 Gy(cell control)group.

    2.3 60Co γ射線照射對HUVEC中ROS水平的影響

    熒光染色結(jié)果顯示,60Co γ射線照射后24和48 h,與細(xì)胞對照組相比,5,10和20 Gy組HUVEC綠色熒光強(qiáng)度明顯增加(P<0.05,P<0.01),表明60Co γ射線照射導(dǎo)致ROS產(chǎn)生增加(圖3)。

    Fig.3 Effect of60Co γ-ray irradiation on reactive oxygen species(ROS)production in HUVECs by laser confocal fluorescence imaging.A2 and B2 were the semi-quantitative results of A1(24 h)and B1(48 h),respectively.FI:fluorence intensity.±s,n=3.*P<0.05,**P<0.01,compared with cell control group.

    2.4 60Co γ射線照射對HUVEC線粒體膜電位的影響

    流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示,60Co γ射線照射后24和48 h,與細(xì)胞對照組相比,5,10和20 Gy組HUVEC紅色熒光細(xì)胞比例顯著降低(P<0.01)(圖4),表明線粒體膜電位下降。

    Fig.4 Effect of60Co γ-ray irradiation on mitochondrial membrane potential(MMP)in HUVECs by flow cytometry.A2 and B2 were the quantitative results of A1(24 h)and B1(48 h),respectively.±s,n=3.**P<0.01,compared with cell control group.

    熒光共聚焦顯微鏡觀察結(jié)果顯示,60Co γ射線照射后24和48 h,與細(xì)胞對照組相比,5,10和20 Gy組HUVEC紅色熒光與綠色熒光比值顯著降低(P<0.01)(圖5)。

    Fig.5 Effect of60Co γ-ray irradiation on MMP in HUVECs by laser confocal fluorescence imaging.A2 and B2 were the semi-quantitative results of A1(24 h)and B1(48 h),respectively.±s,n=3.**P<0.01,compared with cell control group.

    2.5 60Co γ射線照射對HUVEC線粒體膜通道孔開放的影響

    結(jié)果顯示,60Co γ射線照射后24和48 h,與細(xì)胞對照組相比,5,10和20 Gy組HUVEC綠色熒光強(qiáng)度顯著減弱(P<0.05,P<0.01)(圖6),提示60Co γ射線照射導(dǎo)致HUVEC的mPTP開放程度提高。

    Fig.6 Effect of60Co γ-ray irradiation on mitochondrial permeability transition pore(mPTP)opening in HUVECs by laser confocal fluorescence imaging.A2 and B2 were the semi-quantitative results of A1(24 h)and B1(48 h),respectively.±s,n=3.*P<0.05,**P<0.01,compared with cell control group.

    2.6 60Co γ射線照射對HUVEC線粒體結(jié)構(gòu)的影響

    電鏡觀察線粒體結(jié)構(gòu)結(jié)果顯示,細(xì)胞對照組線粒體結(jié)構(gòu)完整,線粒體脊保存完好。5,10和20 Gy照射組線粒體內(nèi)部有不同程度的腫脹,線粒體內(nèi)部結(jié)構(gòu)破壞嚴(yán)重,特異性結(jié)構(gòu)脊不清晰(圖7A)。與細(xì)胞對照組相比,5,10和20 Gy組單個線粒體面積顯著增加(P<0.05,P<0.01)(圖7B1);10和20 Gy組單個線粒體周長增加(P<0.01)(圖7B2);5,10和20 Gy組線粒體密度顯著下降(P<0.05,P<0.01)(圖7B3);5,10和20 Gy組異常線粒體比例顯著增加(P<0.01)(圖7B4)。

    Fig.7 Effect of60Co γ-ray irradiation on mitochondrial morphology in HUVECs under transmission electron microscope.Arrows show the mitochondrial structure.B1,B2,B3 and B4 were the semi-quantitative results of A.±s,n=3.*P<0.05,**P<0.01,compared with cell control group.

    2.7 60Co γ射線照射對HUVEC中p-Drp1和p-Mff蛋白表達(dá)水平的影響

    Western印跡實驗結(jié)果(圖8)顯示,與細(xì)胞對照組相比,5,10和20 Gy照射48 h組,p-Drp1和p-Mff蛋白表達(dá)水平均顯著增加(P<0.05,P<0.01)。

    Fig.8 Effect of60Co γ-ray irradiation on levels of phosphorylated dynamin-related protein 1(p-Drp1)and p-mitochondrial fission factor(p-Mff)in HUVECs by Western blotting.HUVECs were radiated for 48 h.A2 and B2 were the semi-quantitative results of A1(p-Drp1)and B1(p-Mff),respectively.±s,n=3. *P<0.05,**P<0.01,compared with cell control group.

    3 討論

    利用放射療法治療腫瘤是一種常見的治療手段,但在放射治療時,心臟被歸屬為放射不敏感器官,因而心臟的放射損傷并未得到應(yīng)有的重視,而且放射治療導(dǎo)致的心臟并發(fā)癥多發(fā)生在患者進(jìn)行放療很多年以后,已經(jīng)不在隨訪范圍內(nèi)[15]。而且,射線幾乎可以對心臟的所有結(jié)構(gòu)造成損傷,包括心臟瓣膜病、心包疾病、冠脈疾病、心肌病、傳導(dǎo)系統(tǒng)疾病等[16],因此放射性心臟損傷的發(fā)生率有低估的可能。目前研究認(rèn)為,內(nèi)皮細(xì)胞是射線損傷的靶細(xì)胞,血管內(nèi)皮細(xì)胞受損,會導(dǎo)致心臟循環(huán)障礙繼發(fā)心肌細(xì)胞的變性及心肌纖維化[3]。本研究發(fā)現(xiàn),60Co γ射線照射可對HUVEC造成損傷,加重線粒體分裂,導(dǎo)致顯著的線粒體功能障礙,可能是放射性心臟損傷的重要機(jī)制之一。

    本研究結(jié)果顯示,HUVEC受到60Co γ射線照射后,細(xì)胞形態(tài)發(fā)生變化,細(xì)胞皺縮,貼壁不牢,細(xì)胞凋亡顯著增多,同時活性氧生成增多,細(xì)胞功能受損;此外,線粒體膜電位下降、線粒體膜通道孔開放增加,顯示放射誘導(dǎo)顯著的線粒體功能障礙。線粒體是制造能量的細(xì)胞器,當(dāng)線粒體功能受損后,細(xì)胞中能量生成減少,會進(jìn)一步導(dǎo)致細(xì)胞功能障礙;而細(xì)胞功能受損,又會影響線粒體的正常功能。輻射對細(xì)胞損傷的早期作用,有可能是通過線粒體功能紊亂進(jìn)行調(diào)節(jié)的。

    本研究電鏡結(jié)果顯示,照射后HUVEC線粒體內(nèi)部有不同程度的腫脹,內(nèi)部結(jié)構(gòu)破壞嚴(yán)重,特異性結(jié)構(gòu)脊不清晰;線粒體密度明顯下降,單個線粒體面積、單個線粒體周長和異常線粒體數(shù)量明顯增加,顯示線粒體結(jié)構(gòu)嚴(yán)重受損。線粒體分裂在維持線粒體穩(wěn)態(tài),調(diào)節(jié)線粒體功能中發(fā)揮重要作用[17]。線粒體分裂是線粒體動態(tài)變化的重要特征之一[18],目前發(fā)現(xiàn)的介導(dǎo)線粒體分裂的主要蛋白分子包括位于細(xì)胞基質(zhì)中的Drp1[19]。線粒體的表面受體,可以招募Drp1,從而使線粒體發(fā)生分裂[19],目前已知的受體包括 Mff,F(xiàn)is1,MiD49 和 MiD51[20]。本研究結(jié)果顯示,受照后HUVEC中線粒體相關(guān)分裂蛋白p-Drp1和p-Mff表達(dá)水平升高,表明60Co γ射線照射可以促進(jìn)線粒體分裂相關(guān)蛋白的表達(dá),加重了線粒體分裂。

    本研究結(jié)果顯示,60Co γ射線照射促進(jìn)HUVEC凋亡,ROS生成增多,MMP下降、mPTP開放增加,誘發(fā)了線粒體功能障礙;電鏡檢測發(fā)現(xiàn),60Co γ射線照射顯著加重HUVEC線粒體結(jié)構(gòu)損傷,線粒體分裂相關(guān)蛋白表達(dá)增多,促進(jìn)線粒體分裂。提示放射誘導(dǎo)的線粒體結(jié)構(gòu)和功能障礙可能是血管內(nèi)皮細(xì)胞放射損傷的重要機(jī)制,放射誘導(dǎo)的線粒體分裂可能在其中起著重要作用。但本研究仍有很多不足之處,需要進(jìn)一步通過體內(nèi)實驗得以驗證;輻射誘導(dǎo)的線粒體分裂相關(guān)蛋白變化是如何調(diào)控線粒體分裂以及線粒體功能功能,具體機(jī)制仍需進(jìn)一步探討。

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