林洋,郁蕉竹,許文雅,張宏宏,王韻,劉瀛
沈陽食品藥品檢驗(yàn)所(沈陽 110136)
阿維菌素類藥物(avermectins,AVMs)是由鏈霉素產(chǎn)生的一組十六元環(huán)內(nèi)酯雙糖類化合物,是經(jīng)過微生物發(fā)酵、提取的新型抗生素類殺蟲殺螨劑,對(duì)螨類和昆蟲具有胃毒和觸殺作用,是現(xiàn)代農(nóng)業(yè)廣泛應(yīng)用的一種抗寄生蟲農(nóng)藥[1-3]。關(guān)于阿維菌素的檢測(cè)方法國(guó)內(nèi)外已有大量報(bào)道,張紅艷等[4]建立甲醇提取測(cè)定黃瓜中阿維菌素殘留量。王曉菁等[5]建立酸性乙腈溶液提取來分析枸杞中阿維菌素殘留量。此外阿維菌素檢測(cè)方法還有液質(zhì)聯(lián)用法[6-11]、高效液相色譜熒光法[12-14],但液相質(zhì)譜法運(yùn)營(yíng)成本相對(duì)較高,而熒光法前處理又較為復(fù)雜繁瑣,穩(wěn)定性差。檢測(cè)阿維菌素殘留量大多使用GB 23200.19—2016《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn) 水果和蔬菜中阿維菌素殘留量的測(cè)定 液相色譜法》,采用C18色譜柱進(jìn)行色譜分離,但此方法對(duì)于基質(zhì)復(fù)雜的蔬菜樣品的測(cè)定雜質(zhì)干擾問題較為嚴(yán)重,主峰與雜質(zhì)峰分離效果不理想[15]。在液相色譜檢測(cè)阿維菌素殘留量中采用C30色譜柱進(jìn)行色譜分離的方法鮮有報(bào)道,試驗(yàn)選用乙腈作為提取溶劑替代國(guó)標(biāo)中的丙酮提取,選用C30色譜柱進(jìn)行色譜分離,通過優(yōu)化色譜條件,減少蔬菜基質(zhì)中雜質(zhì)峰的背景干擾,從而提高方法的準(zhǔn)確性和重復(fù)性,優(yōu)化阿維菌素的高效液相色譜檢測(cè)方法,為同行業(yè)蔬菜中阿維菌素殘留量的測(cè)定提供參考依據(jù)。
乙腈(色譜純,賽默飛世爾科技有限公司);甲醇(色譜純,賽默飛世爾科技有限公司);氯化鈉(分析純,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)制藥有限公司);阿維菌素標(biāo)準(zhǔn)品(100 mg/L,安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司);C18固相萃取柱(60 mg,3 mL,安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司);Athena C30色譜柱(4.6 mm×250 mm,5 μm,安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司);試驗(yàn)用水均為一級(jí)水;菠菜、大白菜、蘿卜、馬鈴薯、豇豆、小白菜(市購)。
Waters e2695高效液相色譜儀(配2998二極管陣列檢測(cè)器,美國(guó)Waters公司);超聲波清洗儀(KQ-250DB,昆山市超聲儀器有限公司);德國(guó)IKA渦旋混合器;高速冷凍離心機(jī)(H1750R,湖南湘儀離心機(jī)儀器有限公司);萊伯泰科多通道平行濃縮儀(M64);常熟雙杰電子天平(JJ600);Milli-Qreference純水機(jī)(Millipoer SAS公司);移液器(20~200 μL,705878及100~1 000 μL,705880,普蘭德公司)。
1.3.1 樣品前處理
蔬菜樣品采用四分法取樣,經(jīng)粉碎機(jī)絞碎后均勻混合,準(zhǔn)確稱取10.00 g均勻試樣于具塞塑料離心管中,加入10 mL乙腈,渦旋振蕩,超聲提取30 min,加入3~4 g氯化鈉,振蕩搖勻,按10 000 r/min離心5 min,取上清液于離心管中,用10 mL乙腈重復(fù)提取1次,合并提取液。在40 ℃水浴下氮吹近干。加入1 mL甲醇復(fù)溶,渦旋溶解,加入3 mL水渦旋混勻待凈化。將固相萃取柱依次用5 mL甲醇活化、5 mL水平衡,將上述溶液完全轉(zhuǎn)入C18固相萃取柱,用5 mL水淋洗小柱,棄去全部淋洗液,最后用5 mL甲醇洗脫并抽干,收集洗脫液,用氮?dú)獯抵两?。?zhǔn)確加入0.5 mL甲醇溶解殘?jiān)?,?.22 μm有機(jī)濾膜過濾,濾液供液相色譜測(cè)定,外標(biāo)法定量。
1.3.2 色譜條件
色譜柱C30柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動(dòng)相為甲醇-水(85∶15,V/V);流速1.0 mL/min;檢測(cè)波長(zhǎng)245 nm;進(jìn)樣量20 μL;柱溫35 ℃;檢測(cè)器采用二極管陣列檢測(cè)器。
1.3.3 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制
分別準(zhǔn)確移取0.050,0.075,0.100,0.200和0.500 mL質(zhì)量濃度為100 mg/L的阿維菌素標(biāo)準(zhǔn)溶液于10 mL容量瓶中,加甲醇定容到刻度,輕搖混勻,標(biāo)準(zhǔn)系列工作溶液中阿維菌素的質(zhì)量濃度分別為0.50,0.75,1.00,2.00和5.00 mg/L。
2.1.1 提取溶劑的選擇
已報(bào)道的阿維菌素提取溶劑有丙酮[16]、甲醇[17]、乙酸乙酯[18]和乙腈[19-20]溶液等,提取方式包括超聲、渦旋、振蕩或均質(zhì)等,試驗(yàn)分別采用丙酮、乙腈、甲醇作為提取劑對(duì)樣品進(jìn)行超聲提取,發(fā)現(xiàn)甲醇和丙酮作為提取劑時(shí)基質(zhì)干擾較多,且樣品中水分對(duì)下一步凈化效果也有影響,因此試驗(yàn)方法采用乙腈提取,并加入氯化鈉進(jìn)行鹽析來分離水相有機(jī)相,促進(jìn)目標(biāo)分析物與有機(jī)相融合,該方法有較高提取率同時(shí)也減少樣品中雜質(zhì)的提出;且國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)中使用的丙酮提取劑屬易致毒易致爆溶劑,而乙腈毒性和安全性相對(duì)丙酮較小。因此通過綜合操作安全性簡(jiǎn)便性、提取效率和凈化效果方面,最終選用乙腈作為提取劑。
2.1.2 凈化方法的比較
常見凈化方法有液-液萃取法、固相萃取小柱凈化法等,由于蔬菜樣品提取液色澤較深,基質(zhì)干擾較多,含有大量色素、有機(jī)質(zhì)和鹽類,選取最優(yōu)的分離純化方法會(huì)在最大程度降低樣品基質(zhì)干擾,提高分析方法的準(zhǔn)確性和精密度。試驗(yàn)分別測(cè)試直提后上樣、C18固相萃取凈化柱、氨基柱、氧化鋁層析柱的凈化方法,其中乙腈提取后直接上樣基質(zhì)干擾嚴(yán)重,氧化鋁層析柱和氨基柱對(duì)基質(zhì)除雜和回收效果均不理想;試驗(yàn)對(duì)比待凈化液中甲醇含量對(duì)回收效果影響,甲醇含量分別為20%,25%和30%時(shí)上樣凈化的回收率分別為95.2%,97.6%和96.2%,其中用25%甲醇含量的待凈化液過凈化柱回收率最高。因此該方法采用甲醇含量25%的待凈化液過C18固相萃取柱進(jìn)行凈化。
使用的C18色譜柱大多數(shù)都是使用單官能團(tuán)硅烷化試劑鍵合形成的單層鍵合相,也有使用雙官能團(tuán)或三官能團(tuán)硅烷試劑鍵合形成的多層鍵合相,也稱為聚合型鍵合相。C30鍵合相具有比C18更長(zhǎng)的烷基鏈,有更強(qiáng)的疏水性,在硅膠表面形成致密的多層C30烷基鏈。由于多層鍵合相可以形成更為致密的鍵合層,能更加有效地掩蔽硅膠表面的硅羥基,同時(shí)具有更強(qiáng)的溶質(zhì)保留能力和對(duì)強(qiáng)極性物質(zhì)更小的非特異性吸附,對(duì)非極性溶質(zhì)的保留能力和分辨率更高,具有非常好的分離能力?;诙鄬泳酆闲玩I合相的優(yōu)勢(shì)和C30烷基鏈優(yōu)異的分離效果,試驗(yàn)以甲醇和水為流動(dòng)相,以加標(biāo)菠菜樣品為基質(zhì),對(duì)比C18色譜柱和C30色譜柱及不同流動(dòng)相比例條件下的中阿維菌素與雜質(zhì)峰的分離效果,見圖1~圖5。圖譜表明,使用C30色譜柱分離菠菜基質(zhì)中阿維菌素效果明顯優(yōu)于C18色譜柱,其中采用C30色譜柱、甲醇-水(85∶15,V/V)作為流動(dòng)相時(shí),阿維菌素主峰與雜質(zhì)峰分離度R>1.5,分離效果最佳,雜質(zhì)干擾最小。
圖1 C18色譜柱、甲醇-水(90∶10,V/V)為流動(dòng)相分離菠菜基質(zhì)中阿維菌素色譜圖
圖2 C18色譜柱、甲醇-水(85∶15,V/V)為流動(dòng)相分離菠菜基質(zhì)中阿維菌素色譜圖
圖3 C30色譜柱、甲醇-水(90∶10,V/V)為流動(dòng)相分離菠菜基質(zhì)中阿維菌素色譜圖
圖4 C30色譜柱、甲醇-水(85∶15,V/V)為流動(dòng)相分離菠菜基質(zhì)中阿維菌素色譜圖
圖5 C30色譜柱、甲醇-水(85∶15,V/V)為流動(dòng)相阿維菌素標(biāo)準(zhǔn)品色譜圖
在上述試驗(yàn)條件下測(cè)定0.50,0.75,1.00,2.00和5.00 mg/L系列質(zhì)量濃度的阿維菌素標(biāo)準(zhǔn)溶液,以峰面積為縱坐標(biāo),質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)繪制線性關(guān)系曲線,得到的線性方程為Y=40 800X-355,其中r2值為0.999 8,結(jié)果表明在0.50~5.00 mg/L范圍內(nèi)有良好的線性關(guān)系。配制適當(dāng)濃度的阿維菌素標(biāo)準(zhǔn)溶液,在上述條件下平行測(cè)定6次,按照rSN=10計(jì)算得出方法定量限為0.01 mg/kg,滿足食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)GB 23200.19—2016要求。
在菠菜樣品空白基質(zhì)中分別添加0.01,0.05和0.10 mg/kg的阿維菌素標(biāo)準(zhǔn)品,按照上述試驗(yàn)條件進(jìn)行加標(biāo)回收試驗(yàn),每個(gè)加標(biāo)水平重復(fù)測(cè)定6次,外標(biāo)法定量測(cè)得阿維菌素的平均回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(SRSD),結(jié)果見表1。阿維菌素的加標(biāo)平均回收率為93.7%~97.5%,其SRSD值為1.1%~2.2%,滿足GB/T 27404—2008《實(shí)驗(yàn)室質(zhì)量控制規(guī)范 食品理化檢測(cè)》要求,且方法具有良好的重復(fù)性。
表1 回收率與相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=6)
隨機(jī)選取大白菜、蘿卜、馬鈴薯、豇豆、小白菜5種實(shí)際蔬菜樣品,在基質(zhì)中分別添加0.05 mg/kg的阿維菌素標(biāo)準(zhǔn)品,按上述測(cè)試條件進(jìn)行加標(biāo)回收試驗(yàn),試驗(yàn)結(jié)果見表2。測(cè)得5種蔬菜樣品中阿維菌素含量的回收率為92.8%~102.4%,SRSD值為1.1%~4.5%(n=6),回收率和精密度均滿足試驗(yàn)要求。
表2 實(shí)際樣品中阿維菌素殘留量回收率和精密度試驗(yàn)結(jié)果(n=6)
建立蔬菜中阿維菌素殘留量分析檢測(cè)的高效液相色譜法,前處理方面采用乙腈進(jìn)行超聲提取,鹽析分離,SPE小柱固相進(jìn)行萃取,減少色素和脂質(zhì)的吸附,與國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)中采用丙酮提取前處理方法相比,毒性小、操作簡(jiǎn)便快捷、基質(zhì)干擾影響?。粌x器測(cè)定方面采用二極管陣列檢測(cè)器,普及率高,結(jié)果定量準(zhǔn)確,試驗(yàn)方法選用C30色譜柱進(jìn)行色譜分離純化,由于C30鍵合相具有比C18更長(zhǎng)的烷基鏈,具有更好的分離效果,通過有效調(diào)節(jié)流動(dòng)相比例最大限度降低基質(zhì)干擾峰的影響。試驗(yàn)結(jié)果表明在0.50~5.00 mg/L范圍內(nèi)阿維菌素色譜峰面積與質(zhì)量濃度之間有良好線性關(guān)系,準(zhǔn)確度高,蔬菜樣品中阿維菌素0.05 mg/kg水平加標(biāo)回收率可達(dá)92.8%~102.4%;重復(fù)性好,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)溶液偏差為1.1%~4.5%(n=6),試驗(yàn)優(yōu)化標(biāo)準(zhǔn)方法,降低基質(zhì)干擾,具有較強(qiáng)的可操作性,穩(wěn)定性好,可有效適用于蔬菜中阿維菌素殘留的定量分析,滿足日常檢測(cè)需求,為阿維菌素殘留量的快速檢測(cè)提供參考依據(jù),便于在基層實(shí)驗(yàn)室推廣使用,為保障果蔬質(zhì)量安全檢測(cè)提供技術(shù)支撐。