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    解痙多肽表達化生動物模型的研究進展*

    2022-11-23 06:38:31陳萬群張金衛(wèi)綜述楊小軍審校
    重慶醫(yī)學 2022年14期
    關鍵詞:化生腺體造模

    陳萬群,張金衛(wèi),羅 楊 綜述,楊小軍△ 審校

    (重慶市中醫(yī)院:1.消化科;2.皮膚美容科 400021)

    胃腺癌作為世界范圍內(nèi)高致死率的腫瘤之一,其中幽門螺桿菌(helicobacter pylori,Hp)感染被認為是其發(fā)生、發(fā)展最重要的危險因素[1]。持續(xù)的感染及慢性炎癥導致胃癌前病變患者出現(xiàn)泌酸腺體缺失,即形成慢性萎縮性胃炎(chronic atrophic gastritis,CAG)[2]。CAG表現(xiàn)為胃單位的重組,即以峽部胃單位(胃小凹和深部胃竇細胞之間)胃祖細胞的增殖,以及胃腺體基底部有絲分裂后的主細胞重組成為增殖的化生細胞[3]。胃單位重組形成慢性萎縮被稱為解痙多肽表達化生(spasmolytic polypeptide-expressing metaplasia,SPEM)[4],這種化生形式具有進化保守性,可導致近端胃單位(如胃竇)的短暫性改變,進而使得其在應對深部腺體損傷條件下,具有修復及重組為正常胃黏膜結(jié)構的功能[5]。但是在某些條件下,重組被中斷后持續(xù)的SPEM可以進展到異型增生[6]。

    既往動物研究證實腸化生(intestinal metaplasia,IM)起源于SPEM,其中某些研究發(fā)現(xiàn)造模方式不同也會導致SPEM的進展不同,如Hp感染所致的SPEM僅進展到異型增生,而不會進展至IM,但這些研究均證實SPEM為癌前級聯(lián)反應的初始步驟[3,6-8]。目前國內(nèi)胃癌前病變動物模型研究鮮有涉及SPEM,本文就SPEM動物模型做一綜述。

    1 DMP-777誘導的缺乏炎癥的SPEM模型

    為了構建泌酸腺體萎縮模型,在2000年,GOLDENRING等[9]開展了DMP-777 誘導的可逆性泌酸腺體萎縮的研究,即單獨以該試劑處理小鼠特定時間后胃黏膜可自行恢復。DMP-777是一種具有選擇性的人白細胞彈性蛋白酶抑制劑,通常以濃度2%懸浮在0.5%的甲基纖維素的溶液中。研究證實DMP-777可導致特定壁細胞缺失,胃小凹增生而致使正常腺體細胞系缺乏。

    有研究發(fā)現(xiàn)DMP-777處理小鼠在2 d內(nèi)即可導致壁細胞的快速缺失,予野生型小鼠連續(xù)灌胃7 d,在腺體基底部即可出現(xiàn)表達解痙多肽(Trefoil factor 2,TFF2)的黏膜細胞系化生——SPEM;而在敲除胃泌素小鼠中,灌胃1 d即可形成在蛋白及核酸水平均陽性表達TFF2的SPEM;經(jīng)DMP-777處理14 d后,敲除胃泌素小鼠繼續(xù)予以戒斷DMP-777為期14 d的觀察,SPEM仍持續(xù)存在,故可得出SPEM形成依賴于胃泌素[10]。該團隊后續(xù)又對上皮生長因子受體(epidermal growth factor receptor,EGFR)是否調(diào)節(jié)泌酸腺體萎縮的化生應答進行了相關研究,分別予敲除雙調(diào)蛋白、轉(zhuǎn)化生長因子α及其野生型小鼠DMP-777灌胃,灌胃時間及藥物恢復期均為14 d,結(jié)果發(fā)現(xiàn)敲除雙調(diào)蛋白可促進泌酸腺體萎縮,SPEM及IM的形成[8,11-12]。因DMP-777誘導SPEM具有自身特點,仍在近期研究中與其他幾種造模方式形成模型對照,以研究主細胞化生機制[13]。

    2 Hp或貓螺桿菌(H.felis)感染小鼠形成慢性炎癥的動物模型

    Hp感染引起慢性淺表性胃炎并可進展至慢性萎縮性胃炎、腸化、異型增生甚至胃癌,現(xiàn)有研究主要通過Hp或H.felis注射、灌胃或者與黏膜共培養(yǎng)形成相關模型。研究證實H.felis可加速C57BL/6小鼠胃黏膜萎縮、細胞凋亡及改變細胞系分化[14-15]。抑酸及Hp感染均可導致高胃泌素血癥,有研究發(fā)現(xiàn)胰島素-胃泌素轉(zhuǎn)基因小鼠在20月齡時表現(xiàn)為胃黏膜化生、異型增生、原位癌及具有血管浸潤的胃癌,而H.felis感染的胰島素-胃泌素轉(zhuǎn)基因小鼠可進一步加速黏膜內(nèi)腫瘤的發(fā)生(85%),黏膜下腫瘤浸潤(54%)及血管內(nèi)浸潤(46%),說明H.felis感染對化生、異型增生及腫瘤形成具有重要作用[16]。

    此后,又有研究縮膽囊素/胃泌素受體及組胺H2受體信號通路在胃黏膜萎縮和胃癌中的作用,證實縮膽囊素/胃泌素及組胺H2受體拮抗劑具有協(xié)同抑制H.felis感染的胰島素-胃泌素轉(zhuǎn)基因小鼠模型胃黏膜萎縮和胃癌形成的作用[17]。另有研究發(fā)現(xiàn)Hp感染早期即形成SPEM,腺體改變起源于持續(xù)感染Hp的SPEM腺體中,即由SPEM繼發(fā)IM[7]。同樣,使用H.felis感染C57BL/6小鼠6個月可形成SPEM模型,證實SPEM為癌前初始步驟,SPEM為進展至異型增生乃至胃癌的關鍵階段[18]。因Hp或H.felis感染所致的SPEM模型基本可模擬人體的SPEM形成過程,故與人體臨床標本對照可用于研究SPEM腺體細胞的遺傳不穩(wěn)定性[19]。

    3 L-635形成快速誘導的具有炎癥應答的SPEM小鼠模型

    由于DMP-777可抑制中性粒細胞彈性蛋白酶,在早期固有免疫應答階段阻止炎癥應答,因此DMP-777形成的壁細胞缺失的SPEM模型缺乏炎癥應答。而人體內(nèi)化生的形成均在一系列炎性反應的條件下產(chǎn)生,為了形成具有炎癥的新型的壁細胞缺失的SPEM模型,有研究者用德國默克公司合成的結(jié)構性相關的β內(nèi)酰胺復合物,該復合物可以保持壁細胞質(zhì)子載體潛在的活性,但卻不會攻擊中性粒細胞彈性蛋白酶。予C57BL/6小鼠連續(xù)灌胃3 d后,TFF2、內(nèi)因子均陽性表達的SPEM模型快速形成,這一模型再次證實炎癥和壁細胞缺失共同構成SPEM。

    在前期研究基礎上,研究者比較了DMP-777、L-635及H.felis誘導的SPEM模型,結(jié)果發(fā)現(xiàn),3種不同的造模方式均可形成SPEM,至少是主細胞的部分轉(zhuǎn)化,L-635造模的特點為快速形成具有炎癥應答的主細胞轉(zhuǎn)化的SPEM模型[3],缺點是合成L-635價格昂貴,不易獲得,在一般實驗室難以得到推廣。使用前面所述的3種造模方式,研究發(fā)現(xiàn)凝集素(clusterin)在3種不同方式造模小鼠中均異常升高,而囊性纖維化跨膜傳導調(diào)節(jié)蛋白(cystic fibrosis transmembrane conductance regulator,CFTR)僅在具有炎癥表達的模型中表達升高,在人胃黏膜中,CFTR在腸化組織而非SPEM中表達[20]。由于L-635與DMP-777形成的SPEM存在炎癥有無的差別,故研究炎癥細胞通路在SPEM生成的作用可利用此兩種不同的造模方式,作為良好的對比模型,IL-33/13細胞因子信號通路在化生中的作用得到證實[21]。此后,基于該信號通路,后續(xù)研究發(fā)現(xiàn)外源性給予IL-33可使正常小鼠誘導SPEM形成[22]。由此看出,隨著SPEM形成機制的深入研究,未來SPEM構建模型將出現(xiàn)多樣化趨勢。

    4 Tamoxifen誘導的急性SPEM小鼠模型

    由于DMP-777所致SPEM模型缺乏炎癥應答,L-635價格昂貴而不易獲得,H.felis誘導的SPEM造模時間長且可能伴有異型增生乃至胃癌,故探索新型的造模劑極為迫切。Tamoxifen是一種廣泛使用于臨床與研究的選擇性雌激素受體調(diào)節(jié)劑,研究發(fā)現(xiàn)予Tamoxifen≥3 mg/20 g正常小鼠體重3 d,即可導致超過90%胃壁細胞凋亡及酶原主細胞化生,且胃組織可在3周后恢復正常[23]。這一造模方式成為目前研究SPEM最常用的造模方式,并形成了相關方法學文獻指導,使得這一造模方式具有均一、可重復驗證而得以推廣[24]。

    鑒于Tamoxifen造模的穩(wěn)定性,借助此模型開展了對SPEM相關炎性因子如白細胞介素-10(IL-10)的研究[25],急性藥物及慢性炎癥所致胃黏膜損害所致SPEM的單細胞轉(zhuǎn)錄分析[26]。構建此項模型后,同樣也為研究Hp與化生改變之間的關系創(chuàng)造了良好條件,將Tamoxifen誘導的急性SPEM小鼠胃黏膜形成自由浮動的組織塊,與Hp共培養(yǎng)后證實,不管在人還是小鼠SPEM腺體中,均可通過路易斯抗原(sialyl-Lewis X,sLex)連接[27]。同時,為了研究頸黏液細胞、主細胞及SPEM細胞在小鼠中增殖和分化模式,最新研究在使用Tamoxifen及Hp誘導形成胃黏膜損害的同時,予以溴尿苷作為誘變劑進行干預,進一步對穩(wěn)態(tài)或化生誘導的胃黏膜損害的細胞增殖和分化進行了研究報道[28]。以SPEM為代表的各類化生究竟如何增加致癌的風險,為了研究這一問題,有研究者將C57BL/6小鼠共同飼以高劑量Tamoxifen及雷帕霉素,在誘導SPEM同時可阻滯哺乳動物雷帕霉素靶蛋白敏感型復合體(mammalian target of rapamycin complex 1,mTORC1)活性,并讓小鼠自由飲用含亞硝基脲的水誘導胃癌形成[29]。

    隨著對SPEM機制研究的深入,近期研究傾向于將多種模型對比使用或聯(lián)合使用,或聯(lián)合使用關鍵基因、蛋白敲除小鼠等復合形成動物模型,或加用其他化學藥物,以達到驗證既定研究假設的作用[29-31]。如使用DMP-777、L-635、H.felis之間形成不同對照模型,研究主細胞轉(zhuǎn)化的機制[32]?;蛘邽榱搜芯刻囟ǖ鞍讓PEM的影響,使用敲除該蛋白如人附睪蛋白4(human epididymis protein 4,HE4)基礎上,分別使用DMP-777、L-635、高劑量Tamoxifen誘導的SPEM模型,以研究HE4蛋白在胃癌形成中的作用[33]。

    5 脫氧膽酸(deoxycholic acid,DCA)刺激巨噬細胞源外泌體促進SPEM形成

    DCA作為一種對人類有害的次級膽汁酸,有研究證實其可促進腸化生標記物的表達?;诖?,有研究者將6周齡大的C57BL/6雄性小鼠隨機分成正常對照組(無菌水灌胃)、DCA組(100 μmol/L DCA溶于無菌水中),兩組中每只小鼠每天用200 μL無菌水灌胃(含或不含DCA),4周后收獲胃黏膜標本,熒光免疫檢測SPEM標記物TFF2、GSⅡ外源凝集素,結(jié)果顯示此種造模方式同樣可形成SPEM[34]。但此種造模方式目前僅有一個研究采用,其穩(wěn)定性尚待更多研究予以證實。

    6 總 結(jié)

    綜上所述,不管藥物誘導還是Hp或H.felis感染均可形成SPEM模型,但因不同藥物及Hp或H.feli感染的不同特性,使得誘導模型具有自身特點,均可為目前研究SPEM生成及進展機制使用。研究者可根據(jù)研究目的選擇相應造模方式,同時由于各個模型的自身局限性,開展不同模型進行對照研究可以較好揭示SPEM在胃癌前病變中的作用機制。

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