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    生物檢測中微流控電化學(xué)芯片設(shè)計

    2022-11-21 06:47:48善盈盈郭黎明
    機械設(shè)計與制造 2022年11期
    關(guān)鍵詞:流道金箔微流

    善盈盈,李 琛,郭黎明

    (1.浙江機電職業(yè)技術(shù)學(xué)院機械技術(shù)系,浙江 杭州 310052;2.中國計量大學(xué)質(zhì)量與安全工程學(xué)院,浙江 杭州 310018)

    1 引言

    隨著社會的不斷發(fā)展進步,生物安全在人們的日常生活中越發(fā)受到重視,如何快速準確對致病生物源進行分析識別掌控,也成為解決生物安全問題首要難題。微流控技術(shù)在生物病毒檢測中被廣泛應(yīng)用,微流控(Microfluidics)是指使用微管道(尺寸為數(shù)十到數(shù)百微米)處理或操縱微小流體的系統(tǒng)所涉及的技術(shù),是一門新興交叉學(xué)科[1]。由于微流控器件具有小型化、集成化的特點,常被稱為微流控芯片,也被稱為芯片實驗室(Lab on a Chip)和微全分析系統(tǒng)(Micro-Total Analytical System)[2]。

    微流控芯片技術(shù)是將樣品制備、反應(yīng)、分離、檢測等基本操作集成到芯片上,自動完成分析檢測的全過程[3]。利用微流控芯片進行生物病毒檢測時,微流試劑攜帶病毒抗原在微米級的流道中運動,與固定在微流道壁面的特定抗體充分結(jié)合后發(fā)生反應(yīng),從而確定生物病毒的種類,如圖1所示。由于微流道尺度微小,微流試劑流速較慢,為實現(xiàn)準確快速的生物病毒檢測,須使抗原、抗體、微流試劑組成的多元復(fù)雜流場打破在流道內(nèi)的層流狀態(tài),才能實現(xiàn)多元流場的充分混合。

    圖1 微流控芯片近壁區(qū)示意圖Fig.1 Diagram of Microfluidics Near Wall Area

    國內(nèi)外眾多學(xué)者對于微流控流道中溶液混合進行了大量研究。文獻[4]利用在流道中設(shè)置一系列圓柱等障礙物的方法來影響微流體的流動。數(shù)值模擬的結(jié)果顯示流體混合效果得到顯著改善,同時除圓柱形障礙物,在流道內(nèi)放置平板型障礙物亦可以對流體的混合起到一定的促進作用。文獻[5]利用微電機對微流控平臺中,聚電解質(zhì)多層結(jié)構(gòu)下的黏彈性微流體混合效果進行流場調(diào)控實驗,實驗結(jié)果表明流場紊流增強效果明顯。文獻[6]利用Coanda效應(yīng)制作出了Coanda效應(yīng)混合器,在該混合器中,回流流體和主流流體之間產(chǎn)生強烈的混沌對流現(xiàn)象,從而改善混合效果。

    這里以微流控芯片中典型I型流道對研究對象,對微流道內(nèi)流場形態(tài)進行有限元數(shù)值模擬,得到了I型流道的流態(tài)參數(shù),以數(shù)值模擬結(jié)果中的微流場參數(shù)為依據(jù),確定了抗原抗體的快速混合反應(yīng)區(qū),為電化學(xué)微流控芯片檢測法中金箔電極的設(shè)置提供了理論依據(jù)。這里所研究的微流場內(nèi)的流體運動狀態(tài),對增強微流控芯片中抗原抗體的混合效果、提高生物病毒快檢技術(shù)的檢測效率有著重要意義。

    2 微流控芯片內(nèi)微流道流場分析

    這里的微流控芯片采用電化學(xué)阻抗法進行生物病毒檢測,因此需要在微流場內(nèi)流體運動較劇烈的區(qū)域布設(shè)金箔電極,通過生物病毒抗原抗體結(jié)合反應(yīng)所引起的金箔阻抗變化,進而對生物病毒濃度進行確定[7]。若要實現(xiàn)準確快速的生物病毒識別,則需要微流道內(nèi)生物病毒抗原抗體的快速、充分結(jié)合,也就是需要對微流道內(nèi)流體運動進行激勵,使流體盡可能的充分混合[8]。因此,這里通過對微流控芯片內(nèi)微流體運動形態(tài)進行數(shù)值模擬研究,得到微流道中流體運動最劇烈、最易于抗原抗體混合反應(yīng)的區(qū)域,進而指導(dǎo)金箔電極的布設(shè)。

    流場內(nèi)的流體運動形態(tài)主要取決于流場的雷諾數(shù)(Reynolds Number,Re),雷諾數(shù)越大,流體運動越劇烈。Re<2320時,流體處于層流狀態(tài);Re>4000時,流體處于湍流狀態(tài);2320<Re小于4000時,流體處于層流湍流的過度狀態(tài)[9]。

    雷諾數(shù)的計算為:

    式中:υ—流體在流道的速度;ν—流體的運動粘度;ρ—流體密度;μ—流體的動力粘度;D—流道的等效水力直徑。

    當(dāng)微流道中流體能夠達到湍流狀態(tài)時,流體中抗原抗體的結(jié)合較為充分。這里微流控芯片中微流道尺寸為100μm,流道內(nèi)流體流速為10mL/min。微流道中流體為緩沖液與抗原的兩相流混合流體,緩沖液以水(H2O)為主,同時由于抗原數(shù)量較少,尺寸較小,所以密度和粘度均參考水(H2O)的相關(guān)參數(shù)。將流速換算后,υ為0.0473m/s。此時,流體的雷諾數(shù)較小,遠達不到湍流的要求。

    因此,需要通過對微流道中流體運動形態(tài)參數(shù)的數(shù)值模擬,判斷流道中各處微流場的流體特征,為微流控芯片中金箔電極的設(shè)計提供理論依據(jù),從而實現(xiàn)生物病毒的快速、準確的識別。

    3 微流場數(shù)值模擬研究

    這里采用Comsol Multiphysics有限元分析軟件對I型微流道進行數(shù)值模擬仿真研究,并根據(jù)數(shù)值模擬結(jié)果確定金箔電極的最佳敷設(shè)區(qū)域,進而對微流控芯片進行設(shè)計加工。

    3.1 邊界條件的設(shè)定及網(wǎng)格劃分

    邊界條件中,液相設(shè)定為水(H2O),此時不考慮特殊情況,設(shè)定水的密度為1000[kg/m3],水的粘度為1e-3[Pa*s],設(shè)管道直徑d0為0.1mm。水的初速度為0.04[m/s];根據(jù)計算所得,初始雷諾數(shù)為120。入口設(shè)置為層流入口,入口速度選擇法向流入速度,其值為0.04m/s,溫度設(shè)定為常溫273.15K。

    圖2 I型流道網(wǎng)格劃分圖Fig.2 Diagram of Type I Flow Channel Grids

    3.2 微流場數(shù)值模擬實驗結(jié)果

    3.2.1 流體速度數(shù)值模擬研究

    這里主要對微流道內(nèi)的流體運動形態(tài)進行研究,而流體形態(tài)取決于流體的雷諾數(shù),所以根據(jù)雷諾數(shù)的計算公式,著重考慮流道內(nèi)流場速度的分布,因此對I型流道內(nèi)的速度分布及雷諾數(shù)變化進行數(shù)值模擬研究。微流道內(nèi)流體運動的速度分布圖,如圖3所示。其中,橫截面下的速度云圖,如圖3(a)所示。縱截面的速度云圖,如圖3(b)所示。流體速度分布曲線,如圖3(c)所示。由圖可得,流體在流道中運動時,流道中心速度最大,能夠達到0.085m/s,由于受到流道壁面摩擦作用,越靠近壁面流體運動速度越小,壁面速度僅為0.01m/s,難以實現(xiàn)流體湍流激勵。

    圖3 微流道內(nèi)流體流速分布Fig.3 Distribution of Fluid Velocity in Micro Flow Channel

    3.2.2 流場雷諾數(shù)數(shù)值模擬研究

    為了判斷微流道中流體的運動形態(tài)變化,在流道中縱向選取7個觀測點,對觀測點的流場雷諾數(shù)進行計算,取點位置,如圖4所示。

    圖4 微流道內(nèi)觀測點示意圖Fig.4 Diagram of Observe Points in Micro Flow Channel

    流體在7個觀測點處的雷諾數(shù)隨時間變化的曲線,如圖5所示。由圖可得,在數(shù)值模擬實驗中,在迭代計算到0.1s時候,流體運動狀態(tài)趨于穩(wěn)定。其中,雷諾數(shù)最高的點出現(xiàn)在點3(距離入口處10mm處),雷諾數(shù)為85.2,最低點出現(xiàn)在點7(微流道出口處),雷諾數(shù)為83.6。除流道入口處以外,其余各點的雷諾數(shù)值隨著流道的深入而依次降低。數(shù)值模擬實驗結(jié)果與實際情況基本吻合。但是由于微流道管徑較小,初速度較低,流體在流道內(nèi)全過程的雷諾數(shù)整體較低,所以流體處于層流狀態(tài),還未達到湍流。

    圖5 微流道觀測點雷諾數(shù)變化曲線Fig.5 Curve of Observe Points Reynolds Number in Micro Flow Channel

    考慮到用于測量的金箔電極處于流道的下底面,若流體對壁面壓力較大,則能夠促使抗體向流道底部金箔電極上的抗原移動,增加抗原抗體的結(jié)合幾率。因此,這里針對流體對流道壁面的壓力分布進行數(shù)值模擬實驗,探究更能夠提高檢測效率的微流道區(qū)域。

    3.2.3 流場壓力分布數(shù)值模擬研究

    微流道內(nèi)壓力分布,如圖6所示。由圖可得,微流道內(nèi)壓力最大處為流體入口處,壓力約為(1.4×103)Pa,并隨著流體的運動壓力逐漸衰減,流經(jīng)入口后三分之一處時,壓力約為(1.2×103)Pa,流經(jīng)入口后三分之二處時,壓力約為(0.6×103)Pa,在流道出口處壓力最小,壓力約為(0.2×103)Pa,符合壓力實際衰減規(guī)律。

    圖6 微流道壓力分布云圖Fig.6 Distribution of Fluid Pressure in Micro Flow Channel

    綜上所述,對于微流控芯片設(shè)計而言,需綜合考慮微流體的流態(tài)以及對壁面的壓力。因此,在利用電化學(xué)法設(shè)計面向生物病毒檢測的微流控芯片時,可將金箔電極布設(shè)在微流道入口后三分之一處,在此種設(shè)計情況下,能夠充分保證微流體中的抗原與附著在底面金箔電極上的抗體的結(jié)合效率。

    4 面向生物病毒檢測微流控芯片的設(shè)計

    這里設(shè)計了含金箔電極的微流控阻抗檢測芯片,在結(jié)構(gòu)上分為三層,分別為基底層、通道層和蓋片層,設(shè)計結(jié)構(gòu)示意圖,如圖7所示。

    圖7 微流控芯片結(jié)構(gòu)示意圖Fig.7 Structure of Microfluidics Chip

    所設(shè)計的微流控芯片基底層采用玻璃材質(zhì),通道層和蓋片層采用聚二甲基硅氧烷(PDMS),并利用SU-8 陽膜制作出微流道[10]。根據(jù)這里數(shù)值模擬實驗結(jié)果,在玻璃基底距離微流道入口三分之一處,通過磁控射頻濺射法噴射厚度為100nm 的金箔,并采用濕法蝕刻技術(shù)雕刻出微叉指陣列電極的圖案,同時利用磁控射頻濺射法噴射厚度為10nm 的Cr 層,以提高金箔與玻璃的粘結(jié)度。

    微流控芯片設(shè)計圖與實物圖,如圖8所示。金箔電極的設(shè)計參數(shù)為:電極對數(shù)20對、電極高100nm、長0.6mm、寬15μm、電極間距15μm。微通道的設(shè)計參數(shù)為:長7mm、寬0.5mm、深100μm;儲液池和廢液池的參數(shù)為:直徑3mm,深100μm;微反應(yīng)室的體積為:(1.2×0.5×0.1)mm=60nL。在蓋片層對應(yīng)儲液池和廢液池的中心打孔,直徑為0.5mm,連接導(dǎo)管用于試劑的輸入和排出。

    圖8 微流控芯片設(shè)計圖及實物圖Fig.8 Diagram of Microfluidics Chip

    面向生物病毒的微流控檢測系統(tǒng)示意圖,如圖9所示。這里設(shè)計的微流控芯片將與Harvard注射泵、電化學(xué)工作站及計算機構(gòu)成生物病毒檢測系統(tǒng)。注射泵通過直徑為0.5mm的鋼針和軟導(dǎo)管與微流控芯片的入口相連;反應(yīng)模塊包括微流控芯片、金叉指電極,為生物病毒從捕捉到免疫反應(yīng)所產(chǎn)生的阻抗變化提供平臺;檢測模塊包括電化學(xué)工作站和計算機,電化學(xué)工作站與微流控芯片的金箔電極連接,對金箔電極上產(chǎn)生的阻抗變化信號進行檢測。

    圖9 面向生物病毒的微流控檢測系統(tǒng)示意圖Fig.9 Diagram of Microfluidic Detection System of Biological Virus

    5 結(jié)論

    這里針對電化學(xué)方法進行生物病毒檢測中,如何使抗原抗體在微流控芯片微流道內(nèi)快速、充分混合并進行生物反應(yīng)的問題,利用COMSOL有限元分析方法對微流道內(nèi)流場進行數(shù)值模擬研究,數(shù)值模擬結(jié)果顯示在微流道中,流體最大流速為0.085m/s,最大雷諾數(shù)為86.2,遠達不到湍流狀態(tài);因此進行流體對微流道壁面壓力分布數(shù)值模擬,結(jié)果顯示,流體在微流道入口至出口處,壓力從(1.4×103)Pa衰減至(0.2×103)Pa。綜合數(shù)值模擬實驗結(jié)果,確定了電化學(xué)方法中金箔電極敷設(shè)的最佳區(qū)域為微流道入口后三分之一處?;跀?shù)值模擬試驗結(jié)果對微流控芯片進行制作,并設(shè)計了面向生物病毒的微流控檢測系統(tǒng),為提高生物檢測技術(shù)效率提供了技術(shù)支持。

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