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    基于底物通道工程提升嗜熱腈水合酶對(duì)煙腈的催化性能

    2022-11-19 11:27:56張廣林周哲敏
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2022年21期
    關(guān)鍵詞:氰基卡那霉素煙酰胺

    張廣林,周哲敏

    1(無(wú)錫新恒輝材料有限公司,江蘇 無(wú)錫,214072)2(江南大學(xué) 生物工程學(xué)院,江蘇 無(wú)錫,214122)

    煙酰胺是一種輔助性藥物,是煙酸的酰胺形式,眾多研究中表明其參與抗炎和抗衰老過(guò)程[1],現(xiàn)已廣泛用于治療各種皮膚病,如高危人群的非黑色素瘤皮膚癌[2]。目前,工業(yè)上生物法產(chǎn)煙酰胺在漸漸取代化學(xué)合成法,主要是因?yàn)樯锓ù蟠筇岣吡水a(chǎn)物的純度,降低了可導(dǎo)致血管舒張等副作用的副產(chǎn)物煙酸[3]的含量,節(jié)約了分離成本。

    腈水合酶(nitrile hydratase,NHase,EC 4.2.1.84)是一種金屬酶,在微生物的腈代謝過(guò)程中催化腈類化合物生成相應(yīng)的酰胺。由于腈類及酰胺類化合物屬于有機(jī)溶劑,其對(duì)酶蛋白的損害較大,或改變了酶蛋白的構(gòu)象,或?qū)е旅傅鞍妆砻姹匦杷肿拥膩G失[4],且水合反應(yīng)是一個(gè)放熱反應(yīng)。因此,尋求高穩(wěn)定性的腈水合酶一直是研究的熱點(diǎn)。

    本課題組于2020年在GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)中尋找到一種嗜熱菌溫泉熱堿芽胞桿菌(Caldalkalibacillusthermarum) TA2.A1來(lái)源的腈水合酶基因[Cal.tNHase,GenBank:EGL84005.1 (α亞基), EGL84004.1(β亞基)],實(shí)現(xiàn)了其在大腸桿菌工程菌株內(nèi)的異源表達(dá),并初步研究了該酶的酶學(xué)性質(zhì)和催化性能[5]。該酶穩(wěn)定性已滿足工業(yè)應(yīng)用的需求,但其催化煙腈的活性尚有提升的空間。

    在此之前,研究采用各種蛋白質(zhì)工程的方法以提高NHase的催化活性,如結(jié)構(gòu)域交換和亞基融合,然而,所獲得的NHase的性質(zhì)并不總是令人滿意[6]。近年來(lái),酶的底物通道受到越來(lái)越多的關(guān)注,其對(duì)酶的催化性能起著關(guān)鍵作用[7]。定制底物通道可以顯著提高酶的活性、選擇性和穩(wěn)定性,是一種新的有效策略[8-9]。本文將通過(guò)此方法來(lái)提高Cal.tNHase的活性,以提高其應(yīng)用潛力。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)材料

    1.1.1 菌株與質(zhì)粒

    大腸桿菌JM109感受態(tài)用于基因克隆,大腸桿菌BL21(DE3)感受態(tài)用于蛋白表達(dá),均為實(shí)驗(yàn)室前期保藏菌株;質(zhì)粒 pET-24a(+),由本實(shí)驗(yàn)室保藏。

    1.1.2 酶與主要試劑

    Prime STAR MAX 高保真酶、Quick CutDpnI 消化酶,大連寶生物工程有限公司;3-氰基吡啶、煙酰胺,上海麥克林生化科技有限公司;葡萄糖、氨水、培養(yǎng)基中所用各種鹽類,國(guó)藥化學(xué)試劑有限公司;胰蛋白胨、酵母提取物,英國(guó)Oxoid公司。

    1.1.3 培養(yǎng)基

    LB培養(yǎng)基(g/L):胰蛋白胨10.0, 酵母提取物5.0, NaCl 10.0。

    2YT培養(yǎng)基(g/L):胰蛋白胨16.0, 酵母提取物10.0, NaCl 5.0, IPTG終濃度0.4 mmol/L, Co 0.1。

    5 L發(fā)酵罐培養(yǎng)基(g/L):胰蛋白胨16.0, 酵母提取物10.0, 葡萄糖10.0, KH2PO44.6, (NH4)2PO434.0, 二水合檸檬酸三鈉7.4, 微量元素母液10 mL。

    補(bǔ)料培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖500.0, MgSO47.4, 酵母提取物12.0, 胰蛋白胨12.0。

    誘導(dǎo)劑母液(g/100 mL):IPTG 0.286, CoCl2·6H2O 1.8。

    微量元素母液(g/L):FeSO4·7H2O 10.0,CuSO4·5H2O 3.0,MnSO4·H2O 0.38,ZnSO4·7H2O 5.25,(NH4)6Mo7O240.11,Na2B4O7·10H2O 0.23,CaCl2·2H2O 2.65,溶于1 mol/L HCl中。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 計(jì)算機(jī)半理性設(shè)計(jì)方法

    Cal.tNHase的晶體結(jié)構(gòu)目前尚未被解析。根據(jù)PSI-BLAST的檢索結(jié)果,該酶α亞基與來(lái)源于Bacillussp.RAPc8的腈水合酶(PDB ID:2DPP)的同源性為86%,其β亞基與來(lái)源于BacillussmithiiSC-J05-1的腈水合酶(PDB ID:1V29)同源性最高,達(dá)63.6%,于是以此為模板,使用trRosetta在線工具構(gòu)建出Cal.tNHase的三維結(jié)構(gòu)[10]。PROCHECK輸出的拉式圖[11](Ramachandran plot)表明所構(gòu)建的模型是可靠的。隨后三維模型經(jīng)NAMD軟件[12]進(jìn)行50 ns的分子動(dòng)力學(xué)模擬,繼續(xù)對(duì)其結(jié)構(gòu)進(jìn)行進(jìn)一步優(yōu)化,所用力場(chǎng)為Charmm力場(chǎng)。底物通道的計(jì)算分析使用的是CAVER Analyst 2.0[13]軟件,最小探針半徑0.9 ?,檢測(cè)深度4 ?,底物通道起始位點(diǎn)為腈水合酶活性中心的幾何中心。

    1.2.2 突變體庫(kù)的構(gòu)建

    以溫泉熱堿芽胞桿菌來(lái)源的腈水合酶構(gòu)建的重組質(zhì)粒 pET-24a(+)-Cal.tNHase 為模板,采取全質(zhì)粒PCR對(duì)預(yù)測(cè)的突變位點(diǎn)進(jìn)行單點(diǎn)的代表性氨基酸(A、D、F、H、K)突變,將構(gòu)建好的質(zhì)粒轉(zhuǎn)入E.coliJM109中,送測(cè)序,將測(cè)序結(jié)果正確的質(zhì)粒重新轉(zhuǎn)入E.coliBL21(DE3)中備用。

    1.2.3Cal.tNHase和突變體的表達(dá)與純化

    將上述構(gòu)建成功的菌株, 分別在含有50 g/mL卡那霉素的LB平板上劃線,37 ℃倒置培養(yǎng)過(guò)夜,挑取單菌落置于含有50 g/mL卡那霉素的5 mL 2YT液體培養(yǎng)基的試管中,37 ℃、200 r/min培養(yǎng)8~10 h將培養(yǎng)好的試管種子液以1%(體積分?jǐn)?shù),下同)的接種量轉(zhuǎn)接到含有50 g/mL卡那霉素的100 mL 2YT培養(yǎng)基搖瓶中,37 ℃、200 r/min培養(yǎng)至OD600為0.6~0.8時(shí),添加終濃度為0.4 mmol/L IPTG、0.1 g/L CoCl2·6H2O的誘導(dǎo)劑,30 ℃、200 r/min誘導(dǎo)14 h。

    表1 本文所用引物及其序列Table 1 Primers used in this study

    將上述培養(yǎng)的菌液以12 000 r/min離心后收集菌體,再用結(jié)合緩沖液(20 mmol/L Na2HPO4、280 mmol/L NaCl、6 mmol/L KCl,pH 7.4)濃縮5倍后重懸浮,于超聲波破碎儀中以開3 s停7 s破碎20 min,然后將破碎液12 000 r/min離心30 min,取上清液過(guò)0.22 μm膜后置于冰上備用。純化使用strep親和層析,先準(zhǔn)備好除菌且除氣泡的超純水、結(jié)合緩沖液、洗滌緩沖液(20 mmol/L Na2HPO4、280 mmol/L NaCl、6 mmol/L KCl、2.5 mmol/L脫硫生物素,pH 7.4)。先用超純水將柱子中保存的乙醇溶液至少以5倍體積沖洗干凈;再用結(jié)合緩沖液平衡柱子,紫外吸收調(diào)零;上樣10~15 mL, 再以結(jié)合緩沖液平衡柱子,使紫外吸收降到0;然后用洗滌緩沖液洗脫,收集目的蛋白。純化結(jié)束后,將收集到的蛋白用Bradford法標(biāo)定蛋白質(zhì)量濃度,SDS-PAGE測(cè)定純度,最后將蛋白質(zhì)量濃度調(diào)整到0.05 mg/mL備用。

    1.2.4 水合活性的測(cè)定

    腈水合酶反應(yīng)體系:10 μL質(zhì)量濃度0.05 mg/mL的蛋白或OD600=1的細(xì)胞液加入490 μL含200 mmol/L的3-氰基吡啶的水溶液,25 ℃下反應(yīng)10 min,再加入500 μL乙腈進(jìn)行終止。將反應(yīng)后的樣品過(guò)0.22 μm的膜除菌,用HPLC過(guò)C18柱檢測(cè)其酶活力,流動(dòng)相為V(乙腈)∶V(水)=1∶2的混合液,檢測(cè)波長(zhǎng)215 nm,檢測(cè)溫度40 ℃,流動(dòng)相流速0.6 mL/min,進(jìn)樣量10 μL,監(jiān)測(cè)10 min,每組數(shù)據(jù)至少進(jìn)行3次平行實(shí)驗(yàn)。

    酶活力定義:25 ℃下1 min內(nèi)生成1 μmol煙酰胺所需要的酶量(U)。比酶活力定義為1 mg蛋白所具有的酶活力(U/mg);細(xì)胞酶活力定義為1 mL發(fā)酵液細(xì)胞所具有的酶活力(U/mL)。

    1.2.5 酶學(xué)性質(zhì)研究

    熱穩(wěn)定性:將NHase進(jìn)行表達(dá)純化,統(tǒng)一調(diào)整蛋白質(zhì)量濃度到0.1 mg/mL,將酶液置于金屬浴設(shè)備中,設(shè)置金屬浴設(shè)備溫度65 ℃,處理酶液0、0.2、0.5、1、2、4 h,取樣進(jìn)行酶活力測(cè)定,定義每個(gè)酶在處理時(shí)間為0 h時(shí)酶活力為100%,分析其熱穩(wěn)定性。

    底物及產(chǎn)物耐受性:將NHase進(jìn)行培養(yǎng)誘導(dǎo),然后離心菌液收集菌體,將OD600=8的菌體分別置于3-氰基吡啶濃度為0、1 mol/L和煙酰胺濃度為0、2 mol/L的水溶液中,25 ℃孵育30 min,12 000 r/min離心1 min后去除上清液,再用10 mmol/L的磷酸緩沖液清洗菌體2次,測(cè)其菌體酶活力,定義每個(gè)酶用不含3-氰基吡啶和煙酰胺水溶液處理后酶活力為100%,分析其底物及產(chǎn)物耐受性情況。

    1.2.6 5 L罐產(chǎn)酶發(fā)酵

    從-80 ℃保存的甘油管內(nèi)用接種環(huán)沾取菌液,在含有50 g/mL卡那霉素的LB平板上劃線,37 ℃培養(yǎng)過(guò)夜,挑取單菌落與含有50 g/mL卡那霉素的30 mL LB液體培養(yǎng)基培養(yǎng)8~10 h,再以1%接種量轉(zhuǎn)接于新鮮的含有50 g/mL卡那霉素的30 mL LB液體培養(yǎng)基中進(jìn)行擴(kuò)培7.5 h。最后將擴(kuò)培后的菌液接入5 L發(fā)酵罐中,接種量為6%,卡那霉素添加量為0.1%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))。發(fā)酵罐的初始培養(yǎng)體積為2 L,pH 7.0,培養(yǎng)溫度37 ℃,攪拌槳轉(zhuǎn)速200 r/min,通氣量3 L/min,此時(shí)將罐內(nèi)的溶氧標(biāo)定為100%。在接種后,發(fā)酵罐內(nèi)的溶氧與轉(zhuǎn)速偶聯(lián),維持溶氧在30%,最大通氣量為7 L/min,最大攪拌槳轉(zhuǎn)速1 000 r/min。發(fā)酵進(jìn)行到6 h左右出現(xiàn)溶氧反彈現(xiàn)象,此時(shí)初始培養(yǎng)基中的碳源基本耗盡,開始以指數(shù)流加的方式進(jìn)行補(bǔ)料,流加時(shí)控制菌體比生長(zhǎng)速率μ=0.2 h-1。當(dāng)細(xì)胞 OD600達(dá)到60左右時(shí),降低溫度為30 ℃,以15 mL/h的恒流速流加誘導(dǎo)劑進(jìn)行誘導(dǎo),直至100 mL誘導(dǎo)劑全部補(bǔ)完。整個(gè)發(fā)酵過(guò)程中流加氨水進(jìn)行pH調(diào)節(jié),維持罐內(nèi)發(fā)酵液pH=7.0。發(fā)酵過(guò)程在開始補(bǔ)料后以2 h間隔取樣,監(jiān)測(cè)其生長(zhǎng)狀況,記錄OD600和葡萄糖濃度,樣品采用HPLC測(cè)定水合活性。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 Cal.tNHase突變體的篩選

    利用trRosetta在線建模工具構(gòu)建了Cal.tNHase的三維結(jié)構(gòu)模型,并使用PROCHECK獲取了所構(gòu)建模型的拉式圖,拉式圖結(jié)果表明所構(gòu)建的模型是可靠的(圖1)。

    圖1 Cal.tNHase三維結(jié)構(gòu)拉式圖Fig.1 Main Ramachandran plot of the constructed model of Cal.tNHase

    在此基礎(chǔ)上,通過(guò)CAVER底物通道預(yù)測(cè)工具,預(yù)測(cè)定位了如圖2所示的8個(gè)位于底物通道上的氨基酸殘基αL89、βL37、βA41、βG42、βY46、βL48、βV121、βV126。

    圖2 Cal.tNHase結(jié)構(gòu)模型及其底物通道模型Fig.2 Cartoon model of Cal.tNHase and its substrate access tunnel

    由于βLeu48位點(diǎn)已在前期研究中篩選,本研究對(duì)余下7個(gè)位點(diǎn)進(jìn)行突變庫(kù)的構(gòu)建。為提高篩選效率且保證突變體庫(kù)中氨基酸類型的全面性,將其分別突變?yōu)槠渌?種具有代表性氨基酸:側(cè)鏈帶負(fù)電的天冬氨酸(D)、帶芳香族側(cè)鏈的苯丙氨酸(F)、側(cè)鏈帶正電的賴氨酸、組氨酸(K、H)以及帶非極性側(cè)鏈的丙氨酸(A),共計(jì)33個(gè)突變體,研究底物通道上氨基酸殘基的種類對(duì)腈水合酶活性的影響。首先,將野生型腈水合酶和突變體進(jìn)行培養(yǎng)誘導(dǎo),測(cè)其細(xì)胞酶活力。調(diào)整細(xì)胞液OD600=1,結(jié)果如圖3所示,野生型Cal.tNHase酶活力為21.4 U/mL,在這33個(gè)突變體中,αL89H、βG42K的酶活力有一定的提高,分別為37.8 和42.2 U/mL。

    圖3 Cal.tNHase突變體細(xì)胞酶活力Fig.3 Catalytic activity of cells harboring Cal.tNHase mutants

    為了進(jìn)一步促進(jìn)腈水合酶活力的提高,遂將αL89H和βG42K進(jìn)行組合突變。野生型以及這3個(gè)突變體經(jīng)誘導(dǎo)表達(dá)后分離純化,測(cè)得的比酶活力數(shù)據(jù)如圖4所示。突變體βG42K比酶活力為553.0 U/mg,是野生型(220.3 U/mg)的2.5倍,但在與αL89H進(jìn)行組合突變后,酶活力未得到進(jìn)一步提高。

    a-突變化的表達(dá)純化;b-突變化比酶活力圖4 突變體表達(dá)純化及比酶活力比較Fig.4 Expression and purification of the mutants and their specific activities toward 3-cyanopyridine注:WT-野生型

    2.2 Cal.tNHase-βG42K突變體的酶學(xué)性質(zhì)

    經(jīng)過(guò)篩選得到的突變體βG42K催化活性得到了一定的提高,但可能使其穩(wěn)定性有所降低,所以從熱穩(wěn)定性、底物耐受性、產(chǎn)物耐受性方面與其野生型進(jìn)行了比較,結(jié)果如圖5-a所示。野生型酶在65 ℃孵育3 h后仍保持其初始活性的50%左右,而βG42K突變體在65 ℃熱處理1.5 h后失去一半的活性,但在熱處理的過(guò)程中,βG42K突變體的比酶活力一直高于野生型。據(jù)報(bào)道,現(xiàn)有熱穩(wěn)定性最優(yōu)的腈水合酶來(lái)源于芽胞桿菌菌株RAPc8,該酶在50 ℃下熱處理2.5 h后可保持一半活性,然而在60 ℃下熱處理20 min后,活性喪失一半以上[14]。顯然,研究所獲得的突變體βG42K的熱穩(wěn)定性更具優(yōu)勢(shì),具備一定的應(yīng)用前景。

    腈水合酶的水合過(guò)程能否持續(xù)進(jìn)行與其本身對(duì)腈類底物或酰胺產(chǎn)品的耐受性有關(guān)。因此實(shí)驗(yàn)中用高濃度的3-氰基吡啶和煙酰胺來(lái)處理Cal.tNHase野生型和βG42K突變體,檢測(cè)其殘余酶活力,分析酶的底物及產(chǎn)物耐受性。如圖5-b所示,突變體βG42K經(jīng)1 mol/L 3-氰基吡啶處理30 min后,相對(duì)酶活力為48.2%,而Cal.tNHase野生型為59.3%。經(jīng)2 mol/L煙酰胺處理30 min后,突變體βG42K保留了67.2%,野生型為63.3%(圖5-c)。

    a-65 ℃熱處理時(shí)間;b-3-氰基吡啶濃度;c-煙酰胺濃度圖5 Cal.tNHase βG42K酶學(xué)性質(zhì)Fig.5 Enzymatic properties of the Cal.tNHase bG42K

    2.3 突變株5 L罐產(chǎn)酶發(fā)酵

    經(jīng)過(guò)上述驗(yàn)證,突變體βG42K的催化性能基本滿足應(yīng)用所需,遂將此菌株進(jìn)行5 L罐的放大培養(yǎng)。采用分批補(bǔ)料的方式,在OD600=60時(shí)開始誘導(dǎo),菌體前期培養(yǎng)溫度37 ℃,誘導(dǎo)溫度30 ℃。如圖6所示,整個(gè)補(bǔ)料過(guò)程中葡萄糖積累量不超過(guò)1 g/L,在發(fā)酵時(shí)長(zhǎng)為25 h時(shí)菌體OD600最高為110,此時(shí)細(xì)胞酶活力是5 539.0 U/mL,為已報(bào)道的WANG等[15]研究中細(xì)胞酶活力的2倍,說(shuō)明突變體βG42K相較于此前的研究在發(fā)酵酶活力方面更具優(yōu)勢(shì)。

    圖6 突變株βG42K高密度發(fā)酵Fig.6 High-density fermentation of mutant strain βG42K

    3 結(jié)論

    本研究成功通過(guò)定制底物通道提高了Cal.tNHase的活力,篩選出的突變體βG42K比酶活力是其野生型的2.5倍。該突變體在65 ℃下的半衰期仍有1.5 h,且對(duì)底物3-氰基吡啶和產(chǎn)品煙酰胺的耐受性并未大幅度降低,能滿足工業(yè)生產(chǎn)的需要。通過(guò)對(duì)突變體βG42K進(jìn)行放大發(fā)酵,在5 L罐上完成高密度發(fā)酵,細(xì)胞酶活力達(dá)到5 539.0 U/mL。

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