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    鹽酸阿霉素通過DRP1/FUNDC1信號通路調(diào)節(jié)線粒體動力學(xué)誘導(dǎo)大鼠慢性心力衰竭

    2022-11-09 01:16:48朱國旗李凌基戴小華
    中國藥理學(xué)通報 2022年11期
    關(guān)鍵詞:劑量實驗檢測

    夏 冉,朱國旗,高 兵,汪 恒,朱 夢,李凌基,王 祝,王 莖,戴小華

    (安徽中醫(yī)藥大學(xué) 1.中醫(yī)學(xué)院、2.針炙推拿學(xué)院、3.新安醫(yī)學(xué)教育部實驗室,安徽 合肥 230038;4.安徽中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院,安徽 合肥 230031)

    癌癥的發(fā)病率、住院率及死亡率逐年上升,全球估計13.1億人將于2030年死于癌癥[1]。鹽酸阿霉素(doxorubicin hydrochloride,DOX)是一種非選擇性Ⅰ類強效蒽環(huán)類抗生素,具有廣譜抗腫瘤活性作用,但因其心臟毒性作用,使用過程中易造成不可逆的充血性心力衰竭,導(dǎo)致臨床使用受限[2]。

    研究發(fā)現(xiàn),DOX是一種線粒體毒素,線粒體損傷是DOX誘導(dǎo)的心臟功能障礙和細胞死亡的核心[3-4]。線粒體依賴于動力蛋白家族GT Pases調(diào)節(jié),正常情況下,線粒體通過融合產(chǎn)生能量;而在應(yīng)激條件下,線粒體通過分裂將受損的線粒體分離出來進行自噬清除[5]。因此,線粒體的融合與分裂對于維持心肌細胞穩(wěn)態(tài)和心臟健康至關(guān)重要。然而,過度的分裂會損害心肌細胞,導(dǎo)致心室重構(gòu)[6]。在課題組前期研究中發(fā)現(xiàn),阿霉素在復(fù)制大鼠模型時,心肌細胞凋亡及自噬水平均有所上升[7-8]。因此,我們猜測DOX可能通過線粒體動力學(xué)導(dǎo)致心肌細胞死亡引發(fā)心力衰竭。

    臨床表明,心力衰竭的嚴(yán)重程度與抗癌治療過程中累積的DOX劑量相關(guān)[9]。為了避免實驗誤差,本研究采用DOX腹腔注射不同劑量構(gòu)建大鼠心衰模型[10],通過超聲心動圖、B型腦鈉肽(B-type natriuretic peptide,BNP)及心肌病理檢測判定心衰發(fā)展程度,并選出最優(yōu)劑量組。再聯(lián)用線粒體分裂抑制劑Mdivi-1,通過Western blot檢測大鼠相關(guān)動力學(xué)蛋白指標(biāo)及涉及的相關(guān)信號通路分子改變,探索DOX誘導(dǎo)心衰的發(fā)生機制,為臨床治療提供思路。

    1 材料與方法

    1.1 材料動物:SPF級SD ♂大鼠(200~250) g,84只,購于山東省實驗動物中心,生產(chǎn)許可證號:SCXK(魯)20190003。飼養(yǎng)于安徽中醫(yī)藥經(jīng)絡(luò)研究所大學(xué)動物房(清潔級),所有實驗均根據(jù)實驗動物護理指南進行。本研究獲得安徽中醫(yī)藥大學(xué)動物倫理委員會批準(zhǔn),批準(zhǔn)號為AHUCM-rats-2020026。

    1.2 藥品與試劑注射用鹽酸阿霉素(10 mg/支,山西普德藥業(yè)股份有限公司),Mdivi-1(25 mg/支,上海碧云天生物技術(shù)有限公司);兔多抗DRP1(ab184247,英國Abcam公司);兔多抗OPA1(bs-11764R,北京博奧森生物技術(shù)有限公司),兔多抗FUNDC1(A16318,武漢愛博泰克生物科技有限公司);大鼠B型腦鈉肽(BNP)酶聯(lián)免疫吸附測定試劑盒(武漢華美生物工程有限公司),SDS-PAGE凝膠制備試劑盒、BCA蛋白濃度測定試劑盒、ECL底物液(武漢賽維爾生物有限公司)。

    1.3 儀器電子天秤:梅特勒-托利多儀器(上海有限公司);酶標(biāo)檢測儀(美國伯騰儀器有限公司);離心機(湖南湘儀實驗室儀器開發(fā)公司);電泳儀電源(北京六一儀器廠);脫色搖床(武漢賽維爾生物科技有限公司);磁力攪拌器(武漢賽維爾生物科技有限公司);轉(zhuǎn)印電泳儀(武漢賽維爾生物科技有限公司);雙垂直電泳儀(北京六一儀器廠);感光膠片(愛普生有限公司),Philips SONOS 5500超聲儀(荷蘭Philips公司)。

    2 方法

    2.1 分組與干預(yù)實驗一:SD大鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后,將大鼠隨機分為Control組(n=12)、DOX 1組(n=12)、DOX 2組(n=12)、DOX 3組(n=12)。Control組等體積腹腔注射生理鹽水;DOX各組均采用DOX交替腹腔注射,將阿霉素與0.9% 氯化鈉溶液制備成注射液(1 mg·mL-1),根據(jù)大鼠體質(zhì)量,DOX 1組以2 mg·kg-1注射DOX,1次/周,共6周,累計劑量達到12 mg·kg-1;DOX 2組以2.5 mg·kg-1注射DOX,1次/周,共6周,累計劑量達到15 mg·kg-1;DOX 3組以3 mg·kg-1注射DOX,1次/周,共6周,累計劑量達到18 mg·kg-1[11]。實驗二:SD大鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后,將大鼠隨機分為Control組(n=12)、DOX 2組(n=12)、DOX 2+Mdivi-1組(n=12),Control、DOX 2組實驗方法同前,DOX 2+Mdivi-1組在累計劑量達到15 mg·kg-1后,予以每日交替腹腔注射Mdivi-1(1 mg·kg-1),干預(yù)3周。

    2.2 超聲心動圖檢查實驗一結(jié)束后,以生理鹽水制備3%戊巴比妥鈉溶液,按30 mg·kg-1給予大鼠腹腔注射麻醉,待大鼠完全麻醉后,將大鼠仰臥位固定于鼠架板,胸部脫毛處理并涂抹超聲偶合劑,采用Philips SONOS 5500超聲儀,探頭頻率為12 MHz進行超聲心動圖檢查。以M型超聲心動圖進行測量各組大鼠左心室舒張末期內(nèi)徑(left ventricular internal diameter at end-diastole,LVIDd)、左心室收縮末期內(nèi)徑(left ventricular internal diameter at end-systole,LVIDs)、左心室射血分?jǐn)?shù)(left ventricular ejection fraction,LVEF)、左心室縮短分?jǐn)?shù)(left ventricular ejection fractional shortening,LVFS)。

    2.3 ELISA法檢測各組大鼠血清BNP含量超聲心動圖檢測后,將大鼠腹主動脈取血,經(jīng)離心后,取得血清學(xué)樣本。加適當(dāng)稀釋的待檢樣品100 μL于包被的反應(yīng)孔中,用封板膜封板后置37 ℃孵育,洗滌后于各孔中加入抗體100 μL,溫育洗滌后,在各孔加入酶結(jié)合物工作液100 μL,重復(fù)溫育洗滌,再于各孔加入TMB底物溶液100 μL,37 ℃避光反應(yīng)20 min,待終止反應(yīng)后,在酶標(biāo)儀上450 nm處,檢測出各孔OD值。

    2.4 HE染色檢測各組大鼠心肌細胞病理變化腹主動脈取血后,大鼠開胸,剝離并取出心臟組織,固定于4%組織固定液中,切片。依次將切片放入二甲苯Ⅰ 20 min二甲苯Ⅱ 20 min無水乙醇Ⅰ 5 min無水乙醇Ⅱ 5 min 75%乙醇5 min,再將切片入蘇木素染液染5 min,入伊紅染液中染色5 min,脫水封片。隨后用顯微鏡鏡檢,并進行圖像采集分析。

    2.5 WB法檢測各組大鼠心肌線粒體動力學(xué)及相關(guān)信號通路分子蛋白表達水平實驗二結(jié)束后,取各組大鼠心臟左心室部分組織,將組織用PBS洗滌后置于勻漿管中,勻漿后裂解組織,12 000×g離心10 min,收集上清,用BCA蛋白濃度測定試劑盒檢測蛋白濃度。沸水水浴變性15 min后電泳、轉(zhuǎn)膜、封閉,稀釋一抗,4 ℃孵育過夜,于脫色搖床上洗3次,將二抗用TBST稀釋3 000倍,室溫孵育30 min。將PVDF膜的蛋白加入ECL溶液充分反應(yīng),1~2 min后曝光,將膠片掃描,photoshop整理去色,Alpha軟件處理系統(tǒng)分析目標(biāo)帶的光密度值。

    3 結(jié)果

    3.1 DOX大鼠一般情況變化實驗6周后,Control組大鼠體質(zhì)量增長正常,DOX各組大鼠精神狀態(tài)變差,食欲減退,毛發(fā)脫落,體質(zhì)量下降,活動緩慢,部分大鼠出現(xiàn)腹瀉。實驗后DOX各組體質(zhì)量與對照組相比,均有所下降,差異有統(tǒng)計學(xué)意義,且DOX 3組比DOX1組和DOX 2組體質(zhì)量下降更明顯,如Fig 1E所示。此外,DOX的累積劑量與大鼠的死亡率呈正相關(guān),DOX 1組大鼠死亡率17%(n=10),DOX 2組大鼠死亡率25%(n=9),DOX 3組大鼠死亡率42%(n=7),對照組無死亡。

    3.2 DOX大鼠心臟結(jié)構(gòu)及心功能改變?yōu)榱嗽u估DOX大鼠心臟結(jié)構(gòu)及心功能變化,在實驗6周后,對大鼠進行超聲心動圖檢測。DOX各組大鼠與Control組相比,大鼠均出現(xiàn)左心室擴大,心功能降低(Fig 1A),且差異有統(tǒng)計學(xué)意義;與DOX 1組相比,DOX 2組、DOX 3組LVIDd,LVIDs值升高,EF、FS值下降,差異有統(tǒng)計學(xué)意義;與DOX 2組相比,DOX 3組EF、FS值下降,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(Fig 1B、C)。我們進一步檢測了心衰定量標(biāo)志物BNP,結(jié)果表明,相比于Control組大鼠,DOX各組大鼠BNP均有所升高(Fig 1D,P<0.01);與DOX 1組相比,DOX 2組、DOX 3組BNP值升高(Fig 1D,P<0.01);與DOX 2組相比,DOX 3組BNP值升高(Fig 1D,P<0.01)。

    3.3 DOX大鼠心肌病理變化為了明確大鼠心肌病理變化,取大鼠心臟組織進行HE染色。Control組大鼠心肌細胞排列有序,細胞結(jié)構(gòu)規(guī)則,無細胞肥大、增生,無炎性浸潤;DOX各組大鼠心肌細胞排列松散,形態(tài)不規(guī)則,間質(zhì)增生,心肌纖維染色不均,伴有肥大細胞和炎性細胞浸潤,且DOX 3組較DOX 1組、DOX 2組心肌細胞損傷更嚴(yán)重(Fig 2)。

    3.4 DOX大鼠線粒體動力學(xué)及相關(guān)通路信號分子的變化 通過實驗一數(shù)據(jù)對比,選取了DOX 2組為最優(yōu)劑量。設(shè)立Control組、DOX 2組、DOX 2+Mdivi-1組,進一步檢測心肌組織內(nèi)心肌線粒體分裂蛋白1(dynamin-related protein 1,DRP1)、線粒體融合蛋白1(optic atrophy 1,OPA1)及相關(guān)信號通路蛋白(FUN14 domain containing 1,F(xiàn)UNDC1)(Fig 3A)。與Control組相比,DOX 2組及DOX 2+Mdivi-1組FUNDC1信號通路相關(guān)的線粒體分裂蛋白DRP1表達增強,融合蛋白OPA1表達降低;與DOX 2組相比,DOX 2+Mdivi-1組FUNDC1、DRP1蛋白表達量降低,OPA1表達增強,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(Fig 3B)。4 討論

    實驗的病理結(jié)果顯示,DOX具有明顯的心肌細胞損害作用,DOX各組大鼠表現(xiàn)為心功能障礙,且DOX導(dǎo)致的心衰程度與DOX累計劑量呈正相關(guān),隨著DOX累計劑量的上升,大鼠的心衰發(fā)展及死亡率均有所上升。在進一步探討DOX心衰機制中發(fā)現(xiàn),DOX導(dǎo)致大鼠心肌內(nèi)DRP1、FUNDC1蛋白表達量增加、OPA1蛋白表達降低。說明一定劑量的DOX誘導(dǎo)慢性心衰發(fā)生,其機制可能與DRP1/FUNDC1介導(dǎo)的心肌線粒體發(fā)生過度分裂、減少線粒體融合有關(guān)。

    既往研究表明,大鼠在腹腔注射DOX累計劑量達到12 ~18 mg·kg-1時,可發(fā)生CHF[12]。在實驗一中發(fā)現(xiàn),大鼠腹腔注射DOX累積劑量達到12 mg·kg-1時,超聲心動圖顯示大鼠射血分?jǐn)?shù)保留或下降,BNP含量上升;當(dāng)累積劑量越大時,大鼠精神狀態(tài)更差,體質(zhì)量降低明顯,部分伴有腹水發(fā)生,超聲心動圖顯示大鼠的LVIDd、LVIDs更高,LVEF、LVFS值更低。BNP是診斷心衰的重要標(biāo)志物,在左心室超負荷狀態(tài)下,BNP分泌增高,并隨著疾病的嚴(yán)重程度而遞增,對于評估心衰的嚴(yán)重程度及預(yù)后具有重要價值。實驗結(jié)果證實,劑量的累積導(dǎo)致大鼠BNP進一步升高,心功能更差??紤]到DOX 1組存在極少數(shù)射血分?jǐn)?shù)保留情況,DOX 2組死亡率小于DOX 3組,且DOX 2組同DOX 3組比較LVIDd與LVIDs差異無統(tǒng)計學(xué)意義,因此,選取了DOX 2組作為最優(yōu)劑量進行實驗二。

    Fig 1 Effect of DOX on cardiac structure,cardiac function and body weight of

    Fig 2 The morphological changes of heart tissues in four groups(200×)

    FUNDC1(FUN14 domain containing 1)是位于線粒體外膜的蛋白質(zhì),通過參與線粒體的融合及分裂,維持心臟功能,F(xiàn)UNDC1的缺失會導(dǎo)致心力衰竭[13]。在正常情況下,F(xiàn)UNDC1與位于線粒體內(nèi)膜(IMM)上的線粒體融合蛋白:視神經(jīng)萎縮蛋白1(optic atrophy 1,OPA1)相互作用,為心肌細胞提供能量;而在應(yīng)激條件下,F(xiàn)UNDC1能夠促進線粒體動力相關(guān)蛋白1(dynamin-related protein 1,DRP1)易位至線粒體外膜(OMM)進而誘導(dǎo)線粒體分裂[14]。在實驗中發(fā)現(xiàn),DOX誘導(dǎo)的大鼠發(fā)生心衰時,F(xiàn)UNDC1、DRP1蛋白表達量增強,而OPA1蛋白表達量下降。OPA1對線粒體嵴結(jié)構(gòu)的控制發(fā)揮重要作用,能夠阻止細胞色素C的釋放,減少細胞凋亡發(fā)生[15]。OPA1的降低表明DOX導(dǎo)致心肌線粒體受損,心肌線粒體融合減少,能量供應(yīng)降低,心肌細胞死亡風(fēng)險增加。DRP1是線粒體分裂的關(guān)鍵樞紐,主要位于細胞質(zhì)中[16]。在DOX誘發(fā)的大鼠心衰中,F(xiàn)UNDC1、DRP1蛋白表達量增強,表明DOX增強了線粒體的分裂,且兩蛋白趨勢相同提示DOX可能通過FUNDC1通路招募了DRP1蛋白。為了繼續(xù)驗證FUNDC1與DRP1蛋白的關(guān)聯(lián)性,我們使用了線粒體分裂抑制劑(Mdivi-1)。Mdivi-1作為Drp1的選擇性抑制劑,在DOX誘導(dǎo)的心臟毒性中具有保護作用[17]。結(jié)果表明,在聯(lián)用了Mdivi-1之后,DRP1、FUNDC1的蛋白均有所降低,OPA1蛋白表達增強。由此可見,DOX誘導(dǎo)的心衰可能與其通過DRP1/FUNDC1信號通路促進了線粒體過度分裂、減少了線粒體融合有關(guān)。但本實驗只對涉及的通路及機制做了初步探討,后續(xù)可通過基因敲除及檢測蛋白間相互作用,做進一步深入研究。

    Fig 3 Effect of DOX on mitochondrial dynamics and

    **P<0.01vsControl group;#P<0.05vsDOX 2 group;##P<0.01vsDOX 2 group

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