韓敬,顧津伊,聶君旭,張艷萍,趙玲華
糖尿病腎?。╠iabetic nephropathy,DN)是2型糖尿病較嚴重和致命的并發(fā)癥之一。DN早期以腎臟肥大為主要病理特征,隨著病情進展,其可導致腎小球細胞外基質(zhì)沉積和腎小管間質(zhì)纖維化,最終發(fā)展為不可逆腎結(jié)構(gòu)性損傷,引起終末期腎?。?]。2009—2012年我國2型糖尿病患者中DN的患病率為30%~50%,已超越腎小球腎病成為我國慢性腎病的首要原因[2-4]。DN早期癥狀隱匿,若不及時發(fā)現(xiàn)往往延誤治療時機,探尋DN相關(guān)生物標志物,早期發(fā)現(xiàn)、早期干預(yù)是改善患者預(yù)后的關(guān)鍵[5]。腎纖維化是腎臟功能衰退的主要病理基礎(chǔ),過度炎癥反應(yīng)可促使成纖維細胞增殖和過量基質(zhì)蛋白積累,導致腎功能進行性下降,最終引發(fā)腎功能衰竭[6]。微小RNA(miRNAs)是一種單鏈非編碼RNA,通過抑制或降解mRNA,從而調(diào)節(jié)其靶基因的表達,miRNAs已被證實在腎纖維化的發(fā)展中起重要作用[7]。有研究顯示,在心房顫動大鼠模型中,通過誘導miR-27b-3p過表達,可靶向抑制Wnt3a表達,繼而抑制Wnt/β-Catenin信號通路,抑制心肌細胞纖維化[8]。生物信息學分析表明,miR-342-3p在DN中表達下調(diào),可能參與腎小管上皮細胞凋亡、腎間質(zhì)細胞外基質(zhì)的累積和纖維化進程[9]。目前,miR-27b-3p、miR-342-3p是否與DN有關(guān)尚不明確。本研究旨在探討DN患者血清miR-27b-3p、miR-342-3p表達水平與DN的關(guān)系,以期為相關(guān)研究提供參考。
1.1研究對象選擇2018年1月—2021年12月云南大學附屬醫(yī)院收治的2型糖尿病患者157例,診斷符合2017版《中國2型糖尿病防治指南》。排除標準:原發(fā)性腎臟疾病、腎先天畸形;伴惡性腫瘤、自身免疫疾病及急慢性感染性疾??;伴肺纖維化、肝纖維化、縱隔纖維化等纖維化疾病。根據(jù)患者尿白蛋白與肌酐比率(UACR)[10]將患者分為正常白蛋白尿(UACR<30 mg/g,NA)組49例、微量白蛋白尿(30 mg/g≤UACR<299 mg/g,MA)組41例、大量白蛋白尿(UACR≥300 mg/g,DN)組67例。3組年齡、性別構(gòu)成及體質(zhì)量指數(shù)(BMI)比較差異無統(tǒng)計學意義,具有可比性,見表1。本研究已經(jīng)獲得我院倫理委員會批準(倫理號:PZ-180212),患者或家屬均簽署知情同意書。
Tab.1 Comparison of baseline data between the three groups表1 3組基線資料比較
1.2研究方法
1.2.1一般資料收集收集受試者年齡,性別,BMI,吸煙史(煙齡20 a,吸煙量≥20包/a),合并疾?。ǜ哐獕骸⒏咧Y、冠心病、腦梗死),2型糖尿病病程,2型糖尿病家族史,是否合并視網(wǎng)膜病變,是否合并非酒精性脂肪肝,入院時收縮壓和舒張壓,降糖治療用藥情況(口服降糖藥物、胰島素皮下注射、口服降糖和胰島素皮下注射聯(lián)合用藥)等。
1.2.2實驗室檢查2型糖尿病患者入院24 h內(nèi)采集肘正中靜脈血3 mL和尿液完善實驗室常規(guī)檢查。采用Spectra-Max?iD5多功能酶標儀(上海美谷分子儀器有限公司)以雙抗體夾心酶聯(lián)免疫吸附試驗檢測尿液中Ⅳ型膠原(Ⅳ-C)、層粘連蛋白(LN)、Ⅲ型前膠原肽(PCⅢ)水平,試劑盒購自奧維亞生物技術(shù)有限公司。參照劉旭輝等[11]方法采用實時定量聚合酶鏈反應(yīng)檢測miR-27b-3p、miR-342-3p。引物序列miR-27b-3p:上游5′-AGTGGCTAAGTTCTGCTCTCAAC-3′,下游5′-CTCAACTGGTGTCGTGGAGTC-3′;miR-342-3p:上游5′-ACACTCCAGCTGGGAGGGGGTGCTATCTGTGAT-3′,下游5′-CTCAACTGGTGTCGTGGA-3′;U6(內(nèi)參):上游5′-CTCGCTTCGGCAGCACA-3′,下游5′-AACGCTTCACGAATTTGCGT-3′。東芝40型全自動生化分析儀檢測三酰甘油(TG)、總膽固醇(TC)、血尿素氮(BUN)、血肌酐(Scr),根據(jù)CKD-EPI公式估算腎小球濾過率(eGFR)。放射免疫法(儀器為GC-1200 γ放射免疫計數(shù)器)檢測尿微量白蛋白。美國強生穩(wěn)定倍加型血糖儀檢測末梢血空腹血糖(FPG),放射免疫法(日立h7060全自動化學免疫分析儀)檢測空腹胰島素(FINS)。計算穩(wěn)態(tài)模型評估胰島素抵抗指數(shù)(HOMA-IR)=(FPG×FINS)/22.5,HA8160糖化血紅蛋白分析儀檢測糖化血紅蛋白(HbA1c)。
1.3統(tǒng)計學方法采用SPSS 25.00和MedCalc 19.0.4軟件進行數(shù)據(jù)分析。符合正態(tài)分布的計量數(shù)據(jù)以±s表示,偏態(tài)分布經(jīng)對數(shù)轉(zhuǎn)換后使其符合正態(tài)分布,多組間比較采用單因素方差分析,組間多重比較用LSD-t法。計數(shù)資料以例或例(%)表示,組間比較采用χ2檢驗,組間多重比較采用校正χ2檢驗。相關(guān)性分析采用Pearson相關(guān)。采用多因素Logistic回歸分析危險因素。繪制受試者工作特征(ROC)曲線進行診斷效能分析,采用Delong test檢驗計算曲線下面積差異。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 3組一般資料比較3組吸煙史、高脂血癥、冠心病、腦梗死、2型糖尿病家族史、舒張壓、降糖治療比例差異無統(tǒng)計學意義。與NA組比較,DN組和MA組2型糖尿病病程、收縮壓均增加(P<0.05),DN組高血壓、合并視網(wǎng)膜病變、合并非酒精性脂肪肝比例增加(P<0.05)。與MA組比較,DN組高血壓、2型糖尿病病程、合并視網(wǎng)膜病變、合并非酒精性脂肪肝比例、收縮壓均增加(P<0.05),見表2。
2.2 3組實驗室指標比較與NA組比較,MA組和DN組HbA1c、UACR、尿Ⅳ-C、尿LN、尿PCⅢ水平均增加,而miR-27b-3p、miR-342-3p表達均降低(P<0.05),DN組BUN、Scr水平增加,而eGFR水平降低(P<0.05)。與MA組比較,DN組HbA1c、BUN、Scr、UACR以及尿Ⅳ-C、LN、PCⅢ水平均增加,而eGFR和miR-27b-3p、miR-342-3p表 達 均 降 低(P<0.05),見表3。
2.3 影響DN的Logistic回歸分析結(jié)果以是否患DN(否=0,是=1)因變量,以高血壓(否=0,是=1)、2型糖尿病病程、視網(wǎng)膜病變(否=0,是=1)、非酒精性脂肪肝(否=0,是=1)、HbA1c、miR-27b-3p、miR-342-3p、收縮壓、UACR、BUN、Scr、尿Ⅳ-C、尿LN、尿PCⅢ,eGFR為自變量。單因素Logistic回歸結(jié)果顯示,高血壓、HbA1c、尿PCⅢ、eGFR、miR-27b-3p、miR-342-3p是DN發(fā)生的影響因素(P<0.05),見表4。將單因素Logistic回歸中差異有統(tǒng)計學意義的變量納入多因素Logistic回歸方程,采用逐步后退法選擇和剔除變量,結(jié)果顯示,較高水平的尿PCⅢ是DN的危險因素,而較高水平的miR-27b-3p、miR-342-3p、eGFR是保護因素(P<0.05),見表5。
2.4 相關(guān)性分析DN組miR-27b-3p、miR-342-3p表達與eGFR呈正相關(guān)(r分別為0.647、0.661,P<0.05),與尿PCⅢ呈負相關(guān)(r分別為-0.739、-0.766,P<0.05)。
Tab.2 Comparison of baseline data and laboratory indicators between the three groups表2各組一般資料比較
Tab.3 Comparison of laboratory indicators between the three groups表3各組實驗室指標比較 (±s)
Tab.3 Comparison of laboratory indicators between the three groups表3各組實驗室指標比較 (±s)
**P<0.01;a與NA組比較,b與MA組比較,P<0.05。
組別NA組MA組DN組F n 49 41 67 TC(mmol/L)5.19±1.42 5.21±1.53 5.28±1.55 0.276 TG(mmol/L)1.75±0.20 1.76±0.21 1.80±0.25 0.537 LDL-C(mmol/L)3.57±0.55 3.59±0.51 3.62±0.65 0.317 FPG(mmol/L)7.90±1.30 7.93±1.31 8.42±1.35 2.765 FINS(U/mL)8.79±1.83 8.82±1.93 9.05±2.33 1.805 HbA1c(%)5.02±1.21 6.12±1.34a 8.85±1.79ab 77.594**HOMA-IR 3.08±0.59 3.11±0.97 3.39±1.08 2.861 BUN(mmol/L)5.65±1.35 6.12±1.09 35.26±6.32ab 1 044.950**Scr(μmol/L)84.98±16.97 85.35±16.53 186.43±21.52ab 555.002**組別NA組MA組DN組F UACR(mg/g)16.35±3.53 103.47±26.23a 369.02±41.42ab 839.418**eGFR[mL/(min·1.73m2)]113.05±13.42 112.32±13.26 82.35±6.43ab 145.616**Ⅳ-C(μg/L)72.02±12.72 80.12±15.32a 201.32±30.07ab 707.673**LN(μg/L)64.95±13.08 71.50±16.09a 136.26±28.65ab 149.726**PCⅢ(μg/L)44.02±10.27 49.53±11.02a 163.26±21.18ab 921.650**miR-27b-3p(2-ΔΔCt)3.10±0.69 2.29±0.55a 1.02±0.35ab 166.444**miR-342-3p(2-ΔΔCt)2.81±0.52 2.01±0.34 0.95±0.28ab 249.438**
Tab.4 Univariate Logistic regression analysis of factors affecting the incidence of DN表4影響DN的單因素Logistic回歸分析
Tab.5 Multivariate Logistic regression analysis of factors affecting the incidence of DN表5影響DN的多因素Logistic回歸分析
2.5 各指標診斷DN效能分析基于前述Logistic回歸結(jié)果,建立聯(lián)合診斷回歸預(yù)測模型,Log[P/(1-P)]=15.087+0.502×尿PCⅢ-0.842×eGFR-0.559×miR-27b-3p-0.416×miR-342-3p,擬合ROC曲線顯示聯(lián)合診斷DN的AUC為0.948,聯(lián)合檢測效能高于單獨eGFR、尿PCⅢ、miR-27b-3p、miR-342-3p(Z分別 為5.631、5.794、6.715、4.577,P<0.05),見 圖1、表6。
Fig.1 ROC graphs of eGFR,PCⅢ,miR-27b-3p and miR-342-3p for diagnosing DN圖1 eGFR、尿PCⅢ、miR-27b-3p、miR-342-3p診斷DN的ROC曲線
Tab.6 Efficacy of eGFR,PCⅢmiR-27b-3p and miR-342-3p in diagnosing DN表6 eGFR、尿PCⅢ、miR-27b-3p、miR-342-3p診斷DN的效能
DN是導致糖尿病患者死亡和殘疾的主要原因。目前,DN診斷以UACR、eGFR為主要參考指標,但是UACR、eGFR受感染、發(fā)熱、心力衰竭等因素影響較大,積極探尋新型DN相關(guān)生物學標志物十分必要。目前,已發(fā)現(xiàn)DN患者血清和腎組織中部分miRNA異常表達,miRNA可能與DN發(fā)病機制密切相關(guān),有望成為DN早期診斷的潛在標志物[12]。miR-27b-3p是與組織纖維化密切相關(guān)的miRNA,位于人類19號染色體,在乳腺、肝臟、腎臟等多種器官中廣泛表達,miR-27b-3p通過靶向轉(zhuǎn)化生長因子(TGF)-β受體1、Smad等纖維化相關(guān)基因表達,從而參與成纖維細胞活化的調(diào)節(jié)過程,其與多種纖維化相關(guān)疾病的發(fā)生有關(guān)[13]。研究顯示,miR-27b在心肌纖維化患者和大鼠梗死心臟組織中表達水平均增加,miR-27b過表達通過抑制含F(xiàn)框及WD重復結(jié)構(gòu)域蛋白7介導的Snail降解,促使膠原蛋白Ⅰ、膠原蛋白Ⅲ和基質(zhì)金屬蛋白酶-9表達,誘導上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT),促進心肌細胞增殖和纖維化[14]。miR-27b-3p同樣參與視網(wǎng)膜下纖維化進程,miR-27b-3p表達增加可通過靶向調(diào)控HOXC6基因,阻斷TGF-β/Smad信號通路激活,抑制EMT和視網(wǎng)膜纖維化[15]。miR-27b-3p還 通 過 直 接 靶 向TGF-β受 體1和SMAD2,抑制肺組織成纖維細胞活化[13]。本研究結(jié)果顯示,DN組、MA組患者血清miR-27b-3p表達較NA組下調(diào),且miR-27b-3p表達與eGFR呈正相關(guān),與尿PCⅢ呈負相關(guān),表明miR-27b-3p表達下調(diào)可能導致腎纖維化和腎功能損傷,提示miR-27b-3p可抑制腎纖維化和2型糖尿病患者DN進程,機制可能為miR-27b-3p表達下調(diào)而導致其抗纖維化作用減弱,促使肌成纖維細胞活化和增殖,腎小管上皮細胞凋亡及上皮細胞表型轉(zhuǎn)化,導致細胞外基質(zhì)在腎間質(zhì)過度積聚,最終導致腎纖維化和DN的發(fā)生。體外實驗亦顯示,miR-27b-3p通過結(jié)合信號轉(zhuǎn)導和轉(zhuǎn)錄激活因子1(STAT1)的3′-UTR并下調(diào)STAT1表達,從而抑制α-平滑肌激動蛋白、Ⅲ型膠原蛋白和纖維連接蛋白表達,減輕腎纖維化[16]。
miR-342-3p定位于14q32,嵌入其宿主基因Ena/VASP like(EVL)的第三個內(nèi)含子中,與細胞外基質(zhì)沉積和TGF-β信號通路均關(guān)系密切[17]。miR-342-3p是Notch信號通路的下游分子,通過抑制內(nèi)皮細胞中的SMAD1/5磷酸化,從而調(diào)節(jié)血管內(nèi)皮生長因子和TGF-β表達,參與血管生成和EMT[18]。另外,miR-342-3p還可負向調(diào)控Wnt3a表達,從而參與腫瘤細胞的增殖、凋亡過程以及EMT調(diào)控過程[19]。TGF-β是腎纖維化的關(guān)鍵介質(zhì),主要通過激活其下游Smad信號通路來誘導α-平滑肌激動蛋白、Ⅲ型膠原蛋白和纖連蛋白表達,促進成纖維細胞活化,增強膠原合成和細胞外基質(zhì)沉積,最終導致腎纖維化形成[20]。EMT是肌成纖維細胞的主要來源,活化肌成纖維細胞可引起細胞外基質(zhì)沉積,引起腎間質(zhì)纖維化[21]。由此推測,miR-342-3p可能與腎纖維化和腎臟疾病有關(guān)。本研究結(jié)果亦顯示,DN組、MA組患者血清miR-342-3p表達較NA組下調(diào),證實了miR-342-3p低表達與腎纖維化和腎功能下降有關(guān)。推測miR-342-5p參與DN的機制為:首先,miR-342-5p可通過負向調(diào)控Ptch1表達,抑制由TGF-β1誘導的細胞自噬,進而抑制腎纖維化進程[22];其次,miR-342-3p可靶向抑制SRY盒轉(zhuǎn)錄因子6表達,促進腎系膜細胞增殖并抑制其凋亡,抑制高糖誘導的腎間質(zhì)纖維化[23]。因此,miR-342-3p表達下調(diào)可能通過促使腎纖維化,從而導致腎功能損傷和DN發(fā)生。
miR-27b-3p、miR-342-3p在DN患者血清中的異常表達可用作DN輔助診斷的參考指標。本研究ROC分析結(jié)果顯示,miR-27b-3p、miR-342-3p在糖尿病人群中鑒別DN的AUC為0.733、0.652,表明miR-27b-3p、miR-342-3p可鑒別DN的發(fā)生,但是單獨診斷敏感度和特異度均偏低,尚不能滿足診斷DN的需求,聯(lián)合eGFR、PCⅢ、miR-27b-3p、miR-342-3p指標后AUC明顯擴大,表明聯(lián)合miR-27b-3p、miR-342-3p、eGFR、PCⅢ檢測可提高DN的檢出率,為臨床診斷提供更可靠的參考。
綜上,DN、MA患者血清miR-27b-3p、miR-342-3p表達較NA患者均降低,miR-27b-3p、miR-342-3p低表達與腎功能下降、DN發(fā)生有關(guān);miR-27b-3p、miR-342-3p表達下調(diào)可能通過加速腎纖維化,從而參與DN發(fā)病過程。因此,miR-27b-3p、miR-342-3p可作為DN輔助診斷的參考指標。