康 濤,郭曉敏,王 濤,雷 琦,楊 謙,郭荷娜
(陜西省人民醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)二科,陜西 西安 710068)
帕金森病(Parkinson’s disease,PD),又名震顫麻痹,是除了阿爾茲海默病外的第二大中樞神經(jīng)系統(tǒng)退行性疾病,多發(fā)于中老年人[1]。帕金森病的病理機制復雜,近年來對神經(jīng)退行性病變發(fā)病機制的研究發(fā)現(xiàn),小膠質(zhì)細胞介導的腦內(nèi)慢性炎癥反應可能是其重要病理特征之一[2]。小膠質(zhì)細胞是中樞神經(jīng)系統(tǒng)中最主要的免疫細胞,腦部炎癥發(fā)生后,小膠質(zhì)細胞產(chǎn)生并釋放大量的炎癥因子到病變區(qū),進一步加重大腦的炎癥損傷[3-4]。因此,如何減少小膠質(zhì)細胞的炎癥反應是減輕大腦繼發(fā)性損傷的關(guān)鍵所在。
NLRC3是含有CARD(Caspase-recruitment domain)結(jié)構(gòu)域的NOD樣受體家族3的簡稱,在多種疾病中起抑制炎癥反應、調(diào)控細胞增殖、抑制腫瘤發(fā)生的作用[5-6]。據(jù)報道,提高NLRC3的表達可抑制TLR4/MyD88/NF-κB信號通路介導的腦脊髓炎[7]。另有研究表明,NLRC3參與調(diào)節(jié)小膠質(zhì)細胞的發(fā)育[8]。然而,NLRC3在小膠質(zhì)細胞炎癥反應中的作用及分子機制尚不清楚。本研究通過過表達小膠質(zhì)細胞BV2中的NLRC3,來探究其對LPS誘導的炎癥反應的影響以及作用機制。
1.1 實驗材料 小鼠小膠質(zhì)細胞BV2購于中國科學院細胞庫;一抗抗體與二抗抗體均購自Abcam公司;BCA蛋白質(zhì)定量檢測試劑盒購自Thermo Fisher Scientific公司;RPMI1640培養(yǎng)基、胎牛血清購自美國Hy Clone公司;TRIzol購自美國Invitrogen公司;Ad-NLRC3-GFP(Ad-NLRC3)及其對照空載體Ad-CONl7-GFP(Ad-NC)腺病毒購自上海吉凱基因公司;PCR引物由上海生工生物科技有限公司完成;一氧化氮(NO)測定試劑盒購自南京建成生物技術(shù)有限公司;ELISA試劑盒購自北京東哥生物科技公司;二氧化碳培養(yǎng)箱購自上海力申科學儀器有限公司;羅氏96熒光定量PCR儀購自美國Roche Applied Science公司;iMark酶標儀購自美國BIO-RAD公司。
1.2 實驗方法
1.2.1 細胞培養(yǎng):小鼠小膠質(zhì)細胞BV2常規(guī)培養(yǎng)于RPMI1640培養(yǎng)液(含10%胎牛血清及雙抗)中,置于37 ℃、5% CO2的細胞培養(yǎng)箱,隔天換液,細胞融合至80%~90%時傳代,傳至第三代后給予LPS刺激,24 h之后進行后續(xù)實驗。
1.2.2 細胞轉(zhuǎn)染:將生長狀況良好的BV2細胞計數(shù)后均勻接種于6孔培養(yǎng)板中,當細胞融合度達到80%左右,按復合感染指數(shù)(MOI)=100加入腺病毒液感染48 h。之后利用熒光顯微鏡觀察細胞的GFP熒光強度。
1.2.3 實時定量PCR:根據(jù)Trizol法提取細胞中總RNA,并檢測總RNA的完整性及純度,接著利用反轉(zhuǎn)錄試劑盒將RNA反轉(zhuǎn)成cDNA,再使用熒光定量PCR儀進行熒光定量檢測。NLRC3上游引物序列為5’-CTACCCAAGGCATTCAGCCA-3’,下游引物序列為5’-ACACCTCTTGCTTCCTCGTG-3’;內(nèi)參基因GAPDH上游引物序列為5’-CATGGCCTTCCGTGTTCCTA-3’,下游引物序列為5’-TGCTTCACCACCTTCTTGATG-3’。PCR循環(huán)程序為95 ℃預熱3 min,94 ℃變性20 s,59 ℃退火30 s,72℃延伸20 s,共35個循環(huán)。采用2-ΔΔCt法計算相對表達量。
1.2.4 Western blot:收集各組細胞,提取細胞總蛋白。使用BCA蛋白質(zhì)定量檢測試劑盒測定蛋白含量,將蛋白上樣至SDS-PAGE中,130 V恒壓電泳2 h;濕轉(zhuǎn)法將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜上;用含5%脫脂奶粉的Tris緩沖液封閉1 h,裁剪后與一抗4 ℃孵育過夜;TBST清洗膜8 min,重復4次,加相應的HRP標記的二抗,室溫孵育2 h;TBST重復清洗膜4次,用ECL法顯像,用Image J軟件進行灰度分析。
1.2.5 CCK-8法檢測細胞活力:利用不同濃度LPS(0.1、1、2、5 g/ml)處理小膠質(zhì)細胞,每組設置6個重復,于37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)孵育。48 h后加入10 μl CCK-8試劑并繼續(xù)孵育4 h,用酶標儀測定450 nm處的吸光度。
1.2.6 比色法檢測NO含量:將小膠質(zhì)細胞分為未處理組,LPS處理組,LPS+Ad-NC處理組,LPS+Ad-NLRC3處理組,每組設置6個重復,于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)孵育。48 h后裂解細胞,按照檢測試劑盒說明書檢測NO含量。
1.2.7 ELISA測定白細胞介素-1β(IL-1β)、IL-6和腫瘤壞死因子-α(TNF-α)水平:將小膠質(zhì)細胞分為未處理組,LPS處理組,LPS+Ad-NC處理組,LPS+Ad-NLRC3處理組,每組設置6個重復,于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)孵育。48 h后收集培養(yǎng)基上清液,然后嚴格按照ELISA試劑盒說明書進行檢測。
1.3 統(tǒng)計學方法 采用SPSS 22.0 統(tǒng)計學軟件進行分析。數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差表示,兩個樣本均數(shù)比較使用t檢驗,多個樣本間比較使用ANOVA方差分析;P<0.05為差異具有統(tǒng)計學意義。
2.1 LPS處理對BV2細胞活力的影響 使用不同濃度LPS(0.1、1、2、5 g/ml)處理BV2細胞后,其細胞活力分別為(98.67±6.38)%、(85.24±2.64)%、(78.37±8.11)%、(69.55±4.77)%。與未處理組相比,1、2、5 g/ml LPS處理組的細胞活力顯著降低(P<0.05),而0.1 g/ml LPS處理組與未處理組之間比較無統(tǒng)計學差異(P>0.05)。見圖1。
注:與未處理組比較,*P<0.05
2.2 LPS處理對NLRC3表達的影響 qRT-PCR與Western blot檢測結(jié)果顯示,與未處理組比較,LPS處理后的BV2細胞中NLRC3的mRNA與蛋白表達量下降(圖2A、2B),差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。而Ad-NLRC3顯著提高了BV2細胞中NLRC3的mRNA與蛋白表達水平(P<0.05,圖2A、C)。
注:與未處理組比較,*P<0.05;與LPS+Ad-NC組比較,#P<0.05
2.3 過表達NLRC3抑制LPS誘導的NO釋放 NO含量檢測結(jié)果表明,LPS顯著增加了BV2細胞中NO的釋放,而Ad-NLRC3顯著抑制了LPS誘導的NO釋放,比較差異有統(tǒng)計學意義(均P<0.05)。見圖3。
注:與未處理組比較,*P<0.05;與LPS+Ad-NC組比較,#P<0.05
2.4 過表達NLRC3抑制LPS誘導的炎癥因子表達 本實驗利用ELISA和qRT-PCR測定BV2細胞培養(yǎng)上清液中炎癥因子的表達水平。ELISA結(jié)果顯示,經(jīng)LPS處理的細胞培養(yǎng)上清液中IL-1β、IL-6和TNF-α的含量顯著增多,而Ad-NLRC3抑制了它們的表達(圖4A),相比較差異有統(tǒng)計學意義(均P<0.05)。同樣,qRT-PCR的結(jié)果顯示,Ad-NLRC3可顯著抑制LPS誘導的IL-1β、IL-6和TNF-α mRNA的表達(P<0.05,圖4B)。
注:與未處理組比較,*P<0.05;與LPS+Ad-NC組比較,#P<0.05
2.5 過表達NLRC3抑制LPS誘導的PI3K/AKT和NF-κB信號通路激活 為進一步探究NLRC3抑制BV2細胞炎癥反應的分子機制,本實驗檢測了NLRC3對PI3K/AKT和NF-κB通路的影響。LPS處理顯著上調(diào)p-AKT/AKT、p-p65/p65以及p-IκB/IκB的比值,而Ad-NLRC3顯著降低了p-AKT/AKT、p-p65/p65以及p-IκB/IκB的比值,比較差異有統(tǒng)計學意義(均P<0.05)。見圖5。
注:與未處理組比較,*P<0.05;與LPS+Ad-NC組比較,#P<0.05
LPS是革蘭陰性菌的產(chǎn)物,可通過激活細胞內(nèi)的NF-κB、MAPK等炎癥信號通路,引起小膠質(zhì)細胞中TNF-α等炎癥因子、NO等炎癥介質(zhì)的表達增加,因此被廣泛用于刺激在體或體外細胞產(chǎn)生炎癥反應[9-10]。本研究中運用LPS刺激小鼠小膠質(zhì)細胞BV2建立小膠質(zhì)細胞炎癥模型,實驗結(jié)果表明,在給予LPS刺激后,BV2細胞中PI3K/AKT與NF-κB通路被激活,NO以及炎癥因子的表達量都顯著提高。
NLRC3是天然免疫系統(tǒng)中的一種模式識別受體,能夠感受外源入侵和內(nèi)源性的危險信號。Karki等[11]在NLRC3-/-小鼠腸炎相關(guān)腸腫瘤模型的研究中發(fā)現(xiàn),與野生型小鼠相比,NLRC3-/-小鼠局部結(jié)腸組織中的炎性細胞及炎性細胞因子(IL-lβ、IL-6與TNF等)均顯著升高,免疫印跡結(jié)果顯示,IκBα磷酸化水平也顯著增加。Gültekin等[12]發(fā)現(xiàn)NLRC3通過與炎癥小體復合物相互作用來負調(diào)節(jié)炎癥反應。此外,據(jù)報道,NLRC3可通過減少PI3K的激活來抑制小鼠肺動脈高壓炎癥[13]。Schneider等[14]稱,NLRC3可以減少LPS誘導的NF-κB的釋放,進而抑制炎癥的發(fā)生。在本研究建立的小膠質(zhì)細胞炎癥模型中,NLRC3的表達量顯著降低,過表達NLRC3后,LPS誘導的細胞炎癥反應受到抑制。
NF-κB是調(diào)控炎癥反應的重要信號分子,LPS刺激可以誘導IκB磷酸化,NF-κB二聚體被釋放,從胞漿轉(zhuǎn)運入胞核,啟動炎癥相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄表達[15]。而且,大量體內(nèi)體外研究表明,抑制NF-κB信號通路的激活可以有效減輕小膠質(zhì)細胞的炎癥反應,這可能成為帕金森病的一個潛在治療靶點[16]。PI3K/AKT是一種參與細胞生命活動以及調(diào)節(jié)細胞功能的重要信號通路[17-18]。有報道稱,LPS處理小膠質(zhì)細胞可以激活PI3K/AKT通路,進一步研究發(fā)現(xiàn),抑制PI3K/AKT通路的激活可以提高小膠質(zhì)細胞的抗炎作用[19-20]。另外,有研究已證實NLRC3能夠抑制NF-κB與PI3K/AKT信號通路,調(diào)控炎癥的發(fā)生[13-14]。同樣,本研究結(jié)果表明NLRC3可以抑制小膠質(zhì)細胞中LPS導致的NF-κB與PI3K/AKT通路的激活。
綜上所述,過表達NLRC3可通過抑制NF-κB與PI3K/AKT信號通路抑制LPS誘導的小膠質(zhì)細胞炎癥反應,為延緩和治療帕金森病提供了新的思路和理論依據(jù)。