杜穎琦,范麗莉,歐昌榮,2, ,湯海青,溫海英
(1.寧波大學(xué)食品與藥學(xué)學(xué)院,浙江寧波 315800;2.浙江省動(dòng)物蛋白食品精深加工技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,浙江寧波 315800;3.浙江藥科職業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,浙江寧波 315100)
鯖魚是一種常見的經(jīng)濟(jì)魚類,廣泛分布于西太平洋,含有豐富的蛋白質(zhì)、脂肪、維生素等營養(yǎng)成分,尤其是二十碳五烯酸和二十二碳六烯酸,對(duì)心腦血管健康有益,但鮮魚在儲(chǔ)存和運(yùn)輸過程中容易腐敗,嚴(yán)重限制了產(chǎn)品的保質(zhì)期,通過對(duì)魚肉發(fā)酵可以增強(qiáng)食品的感官特性和營養(yǎng)價(jià)值,以及延長食品保質(zhì)期,因此,發(fā)酵是許多國家的主要食物儲(chǔ)存方法。傳統(tǒng)的固態(tài)發(fā)酵魚是通過復(fù)雜的微生物活動(dòng)自然發(fā)酵,存在含鹽量高,發(fā)酵周期長,產(chǎn)品穩(wěn)定性難以控制以及顯著的風(fēng)味差異不利于大規(guī)模生產(chǎn)等缺點(diǎn)。采用現(xiàn)代生物發(fā)酵技術(shù)可以縮短發(fā)酵時(shí)間,穩(wěn)定和提高發(fā)酵魚的質(zhì)量,使發(fā)酵魚制品實(shí)現(xiàn)標(biāo)準(zhǔn)化和規(guī)?;a(chǎn)。有研究報(bào)道,接種發(fā)酵劑植物乳桿菌和嗜酸乳桿菌的發(fā)酵制品比自發(fā)發(fā)酵的產(chǎn)品更安全,并且在其中檢測到的生物胺更少。
發(fā)酵食品是一種復(fù)雜的微生態(tài)系統(tǒng),依賴于酶與微生物代謝活動(dòng)之間的相互作用。微生物群落在魚類發(fā)酵過程中不僅可作為酶和必需營養(yǎng)素的來源,并且其代謝演替決定了風(fēng)味物質(zhì)的組成和含量。揮發(fā)性風(fēng)味化合物及其前體是由發(fā)酵過程中蛋白質(zhì)和脂類的降解和縮合反應(yīng)產(chǎn)生的,與微生物活性密切相關(guān),因此,研究食品發(fā)酵過程中風(fēng)味形成的機(jī)理需要更關(guān)注微生物群落、風(fēng)味和風(fēng)味前體之間的關(guān)系。Illumina MiSeq 測序平臺(tái)用于rRNA的高通量測序,是微生物多樣性分析的重要研究工具。近年來,該方法已被用于研究各種發(fā)酵食品的微生物多樣性,包括發(fā)酵牛奶和奧地利酸面團(tuán)等。許多微生物在發(fā)酵魚中具有開發(fā)風(fēng)味的良好前景,逐漸引起研究者們的關(guān)注,已有研究人員成功研究了細(xì)菌成分與風(fēng)味化合物之間的相關(guān)性,但是關(guān)于細(xì)菌演替與發(fā)酵魚中揮發(fā)性風(fēng)味成分之間的關(guān)系鮮有報(bào)道。因此,本研究采用氣相色譜-離子遷移譜技術(shù)鑒定出接菌鯖魚發(fā)酵過程中促進(jìn)風(fēng)味形成的特征揮發(fā)性化合物,并通過高通量測序手段顯示出鯖魚發(fā)酵過程中細(xì)菌群落動(dòng)態(tài)變化,采用皮爾森(Pearson)相關(guān)性分析了鯖魚發(fā)酵揮發(fā)性風(fēng)味與細(xì)菌演替之間的相關(guān)性,確定接菌鯖魚在發(fā)酵過程中的風(fēng)味演替。
鯖魚 寧波路林水產(chǎn)品批發(fā)市場;植物乳桿菌24258()、嗜酸乳桿菌6074() 中國工業(yè)微生物菌種保藏管理中心;瓊脂糖、細(xì)菌DNA 提取試劑盒 美國OMEGA 科技公司;DL2000、DNA Marker 上海意泓生物科技有限公司;6×Load Buffer 北京全式金生物技術(shù)有限公司。
H1850R 高速冷凍離心機(jī) 湖南湘儀實(shí)驗(yàn)室儀器開發(fā)有限公司;JY-SPCT 電泳槽 北京君意東方電泳設(shè)備有限公司;NanoDrop-1000 微量分光光度計(jì) 美國BIO-RAD 公司;ArktikPCR 擴(kuò)增儀 賽默飛公司;Flavour Spec 氣相色譜-離子遷移譜(配有LAV Laboratory Analytical Viewer 和Library Search分析軟件) 德國G.A.S 公司;H1850-R 臺(tái)式高速冷凍離心機(jī) 湖南湘儀實(shí)驗(yàn)室開發(fā)有限公司;AL204天平 梅特勒-托利多儀器有限公司;Illumina MiSeq測序儀 美國Illumina 公司。
1.2.1 樣品處理
1.2.1.1 混合發(fā)酵劑的制備 參考Liao 等的菌種活化方法將植物乳桿菌和嗜酸乳桿菌接種于液體培養(yǎng)基中,37 ℃培養(yǎng)12 h,再以3%(v/v)接種量接種于肉湯培養(yǎng)基中擴(kuò)培,并通過高速冷凍離心機(jī)在4 ℃下以5000 g 離心10 min 后棄去培養(yǎng)液收集菌體沉淀,加入適量無菌生理鹽水(0.9% NaCI,w/v)洗滌兩次后,調(diào)至菌液濃度為10~10CFU/g,按照植物乳桿菌發(fā)酵劑和嗜酸乳桿菌發(fā)酵劑體積比為1:1 制備混合發(fā)酵劑,將菌液于4 ℃保存,并于24 h 內(nèi)使用。
1.2.1.2 鯖魚樣品的發(fā)酵 用蒸餾水洗滌、去頭去尾,剔除魚身中心主要骨刺并取出內(nèi)臟,洗凈腹腔黑膜,瀝干后切成5 cm×3 cm×3 cm 的小塊。將鯖魚塊與質(zhì)量分?jǐn)?shù)為8%的食鹽,2%的蔗糖(以瀝干魚肉計(jì)重)混合翻拌混勻,壓實(shí),在4 ℃條件下腌制24 h,中間翻拌1~2 次,使魚塊腌制均勻。腌制結(jié)束后放置陰涼通風(fēng)處,自然風(fēng)干至表面沒有水分后接種2%(v/v)的混合發(fā)酵劑,置于25 ℃恒溫培養(yǎng)箱中發(fā)酵,分別在第0、6、12、18、24 d 取樣測定鯖魚發(fā)酵過程中揮發(fā)性風(fēng)味化合物和細(xì)菌多樣性變化,并進(jìn)一步通過皮爾森分析兩者相關(guān)性。樣品按發(fā)酵時(shí)間進(jìn)行編號(hào)(如MF06 表示發(fā)酵第6 d 樣品)。
1.2.2 魚肉DNA 提取和PCR 擴(kuò)增
1.2.2.1 樣品預(yù)處理 無菌條件下稱取10 g 的發(fā)酵鯖魚樣品,加入10.0 mL 滅菌生理鹽水,渦旋后離心5 min(4 ℃,2000×g)收集上清液,用四層紗布過濾,將上清液再次離心10 min(4 ℃,10000×g),收集菌體沉淀。
1.2.2.2 DNA 提取 按照DNA 試劑盒說明提取魚肉樣品DNA,并通過瓊脂糖凝膠電泳實(shí)驗(yàn)檢測DNA提取結(jié)果,用NanoDrop-1000 微量分光光度計(jì)測DNA 純度,將檢測合格的DNA 置于在-80 ℃冰箱備用。
1.2.2.3 PCR 擴(kuò)增及測序 魚肉用上游引物341F(5'-CCTACGGGNGGCWGCAG-3')和下游引物806R(5'-GGACTACNNGGGTATCTAAT-3')擴(kuò)增細(xì)菌16S rRNA 基因的V3~V4 高變區(qū),提取的DNA 用熱循環(huán)聚合酶鏈反應(yīng)系統(tǒng)進(jìn)行擴(kuò)增。
PCR 擴(kuò)增體系總量為50 μL,包括2×Taq Master Mix(Dye)25 μL,正反向引物各2 μL、Template DNA 1 μL,補(bǔ)雙蒸水(ddHO)至50 μL。擴(kuò)增程序?yàn)椋?4 ℃預(yù)變性2 min;94 ℃變性30 s,50~65 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,共35 個(gè)循環(huán);72 ℃擴(kuò)展2 min。利用PCR 純化試劑盒對(duì)瓊脂糖凝膠回收的PCR 產(chǎn)物進(jìn)行純化,然后用Nanodrop 2000 超微量分光光度計(jì)定量并按每個(gè)樣本的測序要求進(jìn)行混合,最后使用Illumina HiSeq 2500 平臺(tái)對(duì)純化的混合樣本進(jìn)行細(xì)菌rRNA 基因的高通量測序分析。為避免不同測序深度引起偏差對(duì)每個(gè)樣品隨機(jī)選取均一化到50000 序列用于后續(xù)的實(shí)驗(yàn)分析。
1.2.3 揮發(fā)性化合物檢測
1.2.3.1 頂空進(jìn)樣條件 將2.5 g 樣鯖魚品置于20 mL頂空玻璃取樣瓶中;頂空孵化溫度40 ℃;孵化時(shí)間20 min;孵化轉(zhuǎn)速500 r/min;進(jìn)樣體積500 μL;進(jìn)樣針溫度85 ℃。
1.2.3.2 GC 條件 色譜柱:石英毛細(xì)管柱(15 m×0.53 mm,0.5 μm);色譜柱溫度:60 ℃;載氣:N(純度≥99.999%);載氣流速:開始2 mL/min;2~10 min,2~20 mL/min;10~20 min,20~100 mL/min;20~30 min,100~150 mL/min;分析時(shí)間:25 min。
1.2.3.3 IMS 檢測條件 IMS 漂移裝置安裝在GC的頂部,漂移管長度:98 mm;漂移管溫度:45 ℃;漂移氣:N;漂移氣流量:150 mL/min;放射源:射線。
1.2.4 相關(guān)性分析 將混和接菌鯖魚發(fā)酵過程中微生物群落結(jié)構(gòu)變化與揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的改變之間進(jìn)行皮爾森相關(guān)性分析,結(jié)果顯示細(xì)菌群落的變化與揮發(fā)性有機(jī)化合物的產(chǎn)生具有相關(guān)性。用Origin 作圖,在屬水平上相對(duì)豐度R>1%,0.01<<0.05 的用*標(biāo)記;相對(duì)豐度R>1%,<0.01 用**標(biāo)記。
用FLASH 軟件(version1.2.7,http://ccb.jhu.edu/software/FLASH/)對(duì)原始數(shù)據(jù)進(jìn)行拼接二端序列;通過QIIME(quantitative insights into microbial ecology,http://qiime.org/)軟件處理樣品微生物群落的擴(kuò)增子基因序列,去除質(zhì)量較差的序列,包括質(zhì)控和去除嵌合體;最后將相似性大于97%的序列聚類成操作分類單元(Operational Taxonomic Units,OTUs),去除古菌、葉綠體和非細(xì)菌序列及僅有一條序列的OTUs;采用Qiime 軟件計(jì)算細(xì)菌群落豐富度和多樣性;采用GC-IMS 設(shè)備自帶的LAV(Laboratory Analysis tical Viewer)分析軟件,GC-IMS Library Search 軟件內(nèi)置的2014NIST 數(shù)據(jù)庫和IMS 數(shù)據(jù)庫對(duì)特征風(fēng)味物質(zhì)進(jìn)行定性分析;采用LAV 中Reporter和Gallery 插件程序構(gòu)建不同樣品間揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的差異圖譜和指紋圖譜;利用SPSS11.0 統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行Pearson 相關(guān)性分析,Origin Pro9.0 軟件作圖。
圖1 為根據(jù)LAV 分析得到的鯖魚發(fā)酵過程中的GC-IMS 三維譜圖。可以直觀看出,鯖魚樣品在發(fā)酵過程中揮發(fā)性有機(jī)物的種類較為相似,組間差異性觀察存在困難。為了更好地橫向比較分析貯藏時(shí)間對(duì)鯖魚發(fā)酵過程中風(fēng)味物質(zhì)的影響,通過采用差異對(duì)比模式,將圖1 進(jìn)行降維處理得到圖2。如圖2 所示,縱坐標(biāo)為保留時(shí)間,橫坐標(biāo)為遷移時(shí)間,紅色豎線為反應(yīng)離子峰,其兩側(cè)的每一點(diǎn)代表一種揮發(fā)性有機(jī)物。取發(fā)酵第0 d 的樣品(MF00)作為參比,其他樣品的譜圖扣除參比。若背景為白色,表示揮發(fā)性物質(zhì)濃度一致;若背景為藍(lán)色,表示揮發(fā)性物質(zhì)濃度低于參比;若背景為紅色,表示揮發(fā)性物質(zhì)濃度高于參比。可以看出,大多數(shù)信號(hào)保留時(shí)間范圍為100~200 s,漂移時(shí)間為1.0~1.5 s,在相同的保留時(shí)間和漂移時(shí)間下,樣品的揮發(fā)性物質(zhì)含量各不相同。隨著發(fā)酵時(shí)間的進(jìn)行,樣品揮發(fā)性物質(zhì)含量明顯增多,與發(fā)酵第0 d 相比,第6~24 d 的樣品在200~400 s 的保留時(shí)間范圍內(nèi)發(fā)現(xiàn)更多紅點(diǎn),尤其是發(fā)酵后期顏色更深,表明隨著發(fā)酵時(shí)間的延長,揮發(fā)性化合物的種類和濃度逐漸增加。
圖1 鯖魚發(fā)酵過程中揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的GC-IMS 三維譜圖Fig.1 GC-IMS three-dimensional spectrogram of volatile flavor compounds during mackerel fermentation
圖2 鯖魚發(fā)酵過程中揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的GC-IMS 二維譜圖Fig.2 GC-IMS two-dimensional spectrogram of volatile flavor compounds during mackerel fermentation
通過GC-IMS 技術(shù)對(duì)鯖魚發(fā)酵過程中揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)組分進(jìn)行定性分析,共鑒定出酸類、醛類、醇類、酮類、酯類和呋喃類等51 種物質(zhì)(見表1)。為進(jìn)一步比較鯖魚發(fā)酵過程中揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的動(dòng)態(tài)變化情況,利用LAV 軟件的GalleryPlot 插件,根據(jù)各物質(zhì)組分在遷移譜中的信號(hào)峰生成指紋圖譜,如圖3 所示,橫坐標(biāo)表示揮發(fā)性化合物,縱坐標(biāo)表示不同樣品名稱,數(shù)字編號(hào)表示未定性的化合物,已定性的化合物用其名稱表示。其中,每行代表檢測樣品的所有信號(hào)峰,每列代表不同樣品同一揮發(fā)性物質(zhì)的信號(hào)峰。從揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的離子峰排列可明顯看出,鯖魚樣品在第0 d 時(shí)含有的揮發(fā)性有機(jī)化合物以醛類、酮類物質(zhì)居多,主要包括己醛、丙酮、2,4-庚二烯醛和2-戊烯醛等,此外還含有少量酸類和酯類物質(zhì)。隨著發(fā)酵時(shí)間的延長,鯖魚中揮發(fā)性有機(jī)物的種類和濃度都有所增加,發(fā)酵第6 d,己醇、2-丁酮、丙酮、2-庚酮、3-甲基丁醛含量顯著增加,3-羥基-2-丁酮和3-甲基丁醛的含量明顯高于其他組,并產(chǎn)生了富含香氣成分的乙酸乙酯等新的揮發(fā)性風(fēng)味化合物,這是由于混合接菌的鯖魚發(fā)酵過程中,在微生物及各種酶的作用下,一些大分子類物質(zhì)被水解成小分子有機(jī)物。其中,醛類主要來源于脂質(zhì)氧化,賦予發(fā)酵鯖魚令人愉悅的青草或奶酪香味。酯類可賦予發(fā)酵鯖魚香甜的果香味。酮類被認(rèn)為是對(duì)發(fā)酵鯖魚風(fēng)味具有貢獻(xiàn)的揮發(fā)性成分,賦予發(fā)酵鯖魚花香及果香味,同時(shí)有助于消減魚肉腥味。直至發(fā)酵第12 d,酯類、酮類含量增加,醛類相對(duì)含量減少,形成了獨(dú)特的發(fā)酵風(fēng)味,其中乙酸乙酯、2-甲基丁酸乙酯、乙酸異戊酯逐漸增加,之后繼續(xù)發(fā)酵,酯類化合物的相對(duì)含量變化不明顯,2-丁酮和2-庚酮含量顯著降低,其含量之后基本無變化。2-庚醛(二聚體)、2-戊烯醛(二聚體)、2-庚酮(單體)等一些相對(duì)分子較大的物質(zhì)含量增加,有辛辣和尖刺味的3-甲基丁酸及2-丁酮含量逐漸增加,并且具有水果香味的3-甲基丁醛含量逐漸降低,導(dǎo)致發(fā)酵鯖魚風(fēng)味不協(xié)調(diào),鯖魚發(fā)酵達(dá)到末期。由此可見,接菌發(fā)酵可以增加魚肉揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的種類和含量,使發(fā)酵魚肉風(fēng)味更加渾厚,氣味延綿。
圖3 鯖魚發(fā)酵過程中揮發(fā)性物質(zhì)指紋譜圖Fig.3 Fingerprint spectrum of volatile flavor compounds during mackerel fermentation
表1 鯖魚發(fā)酵過程中的主要揮發(fā)性化合物Table 1 Volatile compounds during mackerel fermentation
通過對(duì)混合接菌鯖魚發(fā)酵過程中微生物在門和屬水平上的分布情況進(jìn)行分析,結(jié)果如圖4 所示。發(fā)酵魚肉的細(xì)菌菌群主要有厚壁菌門(Firmicutes)、變形桿菌門(Proteobacteria)、放線菌門(Actinobacteria)、擬桿菌門(Bacteroidetes)、梭桿菌門(Fusobacteria)和纖維桿菌門(Fibrobacteres)。在整個(gè)發(fā)酵過程中厚壁菌門的相對(duì)豐度最高,其它門只占少數(shù)。發(fā)酵第6 d,厚壁菌門相對(duì)豐度從97.0%下降至91.38%,而在發(fā)酵中后期,其相對(duì)豐度逐漸增加到98.81%??梢?,厚壁菌門為發(fā)酵鯖魚中的優(yōu)勢微生物,接種的植物乳桿菌和嗜酸乳桿菌均屬于厚壁菌門,發(fā)酵中后期其相對(duì)豐度不斷增加,抑制了相關(guān)腐敗微生物生長;變形菌門的相對(duì)豐度先增加后減少最后又略微上升。
圖4 鯖魚發(fā)酵過程中細(xì)菌門水平的相對(duì)豐度Fig.4 Relative abundance of bacteria at phylum during mackerel fermentation
在屬的水平上細(xì)菌共得到41 個(gè)屬,由圖5 可知,在發(fā)酵第0 d 乳桿菌屬()、巨型球菌屬()和葡萄球菌屬()的相對(duì)豐度較大,是該發(fā)酵時(shí)期的優(yōu)勢微生物,三者的相對(duì)豐度分別為81%、10%和6.14%,這是由于魚肉自身攜帶的微生物在適宜的條件下繁殖,隨著發(fā)酵時(shí)間延長,接種的植物乳桿菌和嗜酸乳桿菌開始迅速增殖,抑制了大量微生物繁殖,僅有少量適應(yīng)酸性環(huán)境的微生物生長,細(xì)菌豐富度減少。發(fā)酵第6 d,乳桿菌屬()的相對(duì)豐度顯著下降到46.74%(<0.05),隨著發(fā)酵時(shí)間的延長,乳桿菌屬()的相對(duì)豐度持續(xù)增加,這與Jiang 等的研究一致。發(fā)酵末期相對(duì)豐度達(dá)到94%,這是由于乳桿菌屬()含有許多酶系,能產(chǎn)生能夠分解脂肪酸、亞硝胺,產(chǎn)生控制內(nèi)毒素等多種抗菌代謝產(chǎn)物,此外,乳桿菌屬()與食品發(fā)酵過程中氨基酸的代謝有關(guān),可以促進(jìn)產(chǎn)品風(fēng)味形成。巨型球菌屬()在發(fā)酵過程中相對(duì)豐度一直減少,可能是發(fā)酵過程中代謝產(chǎn)物的影響。葡萄球菌屬()在發(fā)酵第6 d 急劇增加到37.6%,隨著發(fā)酵進(jìn)行迅速下降至3.92%,之后趨于穩(wěn)定,這可能是由于發(fā)酵過程中酸化作用和厭氧條件所致。該結(jié)果與Casaburi 等的報(bào)告結(jié)果一致,即酸化抑制了發(fā)酵香腸中葡萄球菌的生長。此外,也有研究報(bào)道,葡萄球菌可抑制脫羧酶生長,從而減少生物胺的產(chǎn)生,提高發(fā)酵魚發(fā)酵質(zhì)量。
圖5 鯖魚發(fā)酵過程中細(xì)菌屬水平的相對(duì)豐度Fig.5 Relative abundance of bacteria at genus level during mackerel fermentation
除了占主導(dǎo)優(yōu)勢的乳桿菌屬、葡萄球菌屬和巨型球菌外,還有一些相對(duì)豐度較低的細(xì)菌存在發(fā)酵魚樣品中,如芽孢桿菌屬()、不動(dòng)桿菌屬()、嗜甲基菌()、假單胞菌()、嗜冷桿菌()、青枯菌()、馬賽菌()、鞘氨醇單胞菌屬()、糖單胞菌()、魏斯氏菌屬()等。其中,芽孢桿菌()能夠分泌淀粉酶和糖化酶,主要與揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)如吡嗪類、酮類、醛類、醇類的產(chǎn)生有關(guān),部分芽孢桿菌屬()有胺氧化酶或胺脫氫酶活性,在發(fā)酵過程中產(chǎn)生抗菌活性,可以有效降低生物胺的積累。鞘氨醇單胞菌()生命力旺盛,分布范圍廣泛,是海洋厭氧性超微細(xì)菌的代表,也是研究較多的藻類毒素的降解菌。有研究表明,不動(dòng)桿菌()含量的增多會(huì)加速水產(chǎn)品品質(zhì)的劣變進(jìn)程,對(duì)水產(chǎn)品的品質(zhì)特性有顯著影響。馬賽菌屬()是產(chǎn)生甘露聚糖酶、淀粉酶、纖維素酶等多糖水解酶的菌株。魏斯氏菌()是一種產(chǎn)于發(fā)酵食品中的乳酸菌,在食品發(fā)酵過程中,能夠發(fā)酵葡萄糖、甘露糖、麥芽糖等產(chǎn)生乳酸,賦予發(fā)酵食品新的感官質(zhì)量和風(fēng)味質(zhì)量。糖單胞菌()的次級(jí)代謝產(chǎn)物對(duì)金黃色葡萄球菌和枯草芽孢桿菌有抑制作用。綜上,乳桿菌屬()、巨型球菌屬()、葡萄球菌屬()、芽孢桿菌屬()、不動(dòng)桿菌屬()、嗜甲基菌屬()、假單胞菌屬()、魏斯氏菌屬()等共同構(gòu)成了發(fā)酵鯖魚的細(xì)菌群落,為發(fā)酵鯖魚特征風(fēng)味的形成和產(chǎn)品安全特性提供良好的環(huán)境。
利用Alpha 多樣性可直觀反應(yīng)微生物群落的豐富度和多樣性,包括一系列統(tǒng)計(jì)分析指數(shù)如Chao1指數(shù)、Shannon 指數(shù)、Richness 指數(shù)和Simpson 指數(shù)等。Chao1 指數(shù)數(shù)值越大,表明群落中的物種種類越多,豐富度越高。Shannon 和Richness 指數(shù)值越大,Simpson 值越小,表明群落多樣性越高。多樣性指數(shù)分析如表2 所示,鯖魚發(fā)酵過程中細(xì)菌多樣性整體呈現(xiàn)先上升后下降趨勢。發(fā)酵早期,細(xì)菌群落多樣性和豐度較高,可能由于經(jīng)過一段時(shí)間的微生物代謝,環(huán)境中的代謝產(chǎn)物得到積累,能夠?yàn)楦嗟奈⑸锷L提供營養(yǎng)物質(zhì)。隨著發(fā)酵的進(jìn)行,細(xì)菌種群多樣性逐漸降低,這說明接種的發(fā)酵菌株能很好的適應(yīng)發(fā)酵環(huán)境,產(chǎn)生大量酸類物質(zhì),從而抑制了其他不適應(yīng)較高酸性發(fā)酵環(huán)境微生物的生長,物種數(shù)量也隨之下降,同時(shí)發(fā)酵過程中乳酸菌具有較強(qiáng)酸的耐受力,逐漸成為豐度較高的主體,導(dǎo)致微生物多樣性不斷降低。吳燕燕等對(duì)腌干魚加工過程中微生物進(jìn)行分析,也發(fā)現(xiàn)腌制過程中魚類細(xì)菌多樣性呈先升后降的趨勢。大量研究表明,發(fā)酵水產(chǎn)品在貯藏或加工過程中優(yōu)勢微生物的不斷積累,抑制了其他微生物的生長,導(dǎo)致微生物多樣性降低。
表2 鯖魚發(fā)酵過程中微生物群落的多樣性指數(shù)Table 2 Diversity index of microbial communities during mackerel fermentation
為研究樣品的取樣量能否代表原樣品物種豐富度,對(duì)樣品的個(gè)數(shù)和物種的種類做稀釋分布曲線,從而評(píng)估所構(gòu)建的文庫的覆蓋率是否達(dá)到飽和。結(jié)果見圖6,隨著測序深度的增加,Chao1 和Shannon指數(shù)曲線基本趨于平坦,表明測序數(shù)據(jù)量合理,測序深度能夠反映出樣品中絕大多數(shù)微生物的物種信息。
圖6 鯖魚發(fā)酵過程中魚肉細(xì)菌群落Chao1 指數(shù)(a)和Shannon 指數(shù)(b)分析Fig.6 Curve analysis of Chao1 index (a) and Shannon index (b) of bacterial community in mackerel during fermentation
水產(chǎn)品中的蛋白質(zhì)、脂質(zhì)、碳水化合物等大分子化合物是風(fēng)味物質(zhì)形成的前體,在微生物及其相關(guān)酶系作用下,這些物質(zhì)發(fā)生水解,參與氨基酸代謝及脂質(zhì)代謝等途徑,形成特征風(fēng)味物質(zhì)。由圖7 可知,與揮發(fā)性有機(jī)化合物相關(guān)的細(xì)菌有22 個(gè)屬,其中乳桿菌屬、葡萄球菌屬、不動(dòng)細(xì)菌屬和鞘脂菌屬對(duì)揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的形成有顯著影響。乳桿菌屬與戊酮、乙醇、3-羥基-2-丁酮等物質(zhì)存在極強(qiáng)的正相關(guān),與3-甲基丁酸、3-辛酮等存在負(fù)相關(guān)性;葡萄球菌與酯類化合物存在極強(qiáng)的正相關(guān),與酮類物質(zhì)存在負(fù)相關(guān);不動(dòng)細(xì)菌屬與9 種物質(zhì)存在正相關(guān),與10 種物質(zhì)存在負(fù)相關(guān),其中與醛類、酮類的相關(guān)性比較強(qiáng)。魏斯氏菌、鞘脂桿菌、不動(dòng)桿菌、嗜甲基菌等微生物雖然相對(duì)豐度不高,但與揮發(fā)性風(fēng)味的形成存在很大的相關(guān)性,例如,魏斯氏菌與吡嗪類、酮類、酸類、酯類等15 種揮發(fā)性物質(zhì)存在相關(guān)性,鞘脂桿菌與多種酮類物質(zhì)存在很強(qiáng)的負(fù)相關(guān)性?;旌暇杲臃N的鯖魚發(fā)酵過程中揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的變化與微生物群落演替聯(lián)系緊密,多種微生物共同作用不僅提高了發(fā)酵鯖魚的穩(wěn)定性,而且使其風(fēng)味更加濃郁協(xié)調(diào)。
圖7 鯖魚發(fā)酵過程中細(xì)菌菌落與揮發(fā)性化合物相關(guān)性熱圖Fig.7 Mogram of correlation between bacterial colony and volatile compounds during mackerel fermentation
本研究基于鯖魚發(fā)酵過程中細(xì)菌群落組成和關(guān)鍵氣味物質(zhì)的特征,揭示了鯖魚發(fā)酵過程中風(fēng)味演替規(guī)律。主要結(jié)論如下:混合接種鯖魚發(fā)酵過程中隨著發(fā)酵時(shí)間的延長揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)種類和含量逐漸增加。發(fā)酵初期以醛類和酮類為主,隨著發(fā)酵時(shí)間的延長,酯類和酮類化合物相對(duì)含量增多,共同構(gòu)成了發(fā)酵魚肉獨(dú)特的風(fēng)味;接種鯖魚發(fā)酵過程中微生物豐度隨著發(fā)酵時(shí)間的延長呈先上升后下降趨勢。門水平上分析表明,厚壁菌門是發(fā)酵鯖魚中的優(yōu)勢微生物。屬水平分析表明,細(xì)菌優(yōu)勢菌屬從發(fā)酵前期的乳桿菌屬()、巨型球菌屬()和葡萄球菌屬()逐漸轉(zhuǎn)變?yōu)橹?、后期的乳桿菌屬(),此外,豐度較低的芽孢桿菌屬()、不動(dòng)桿菌屬()、嗜甲基菌屬()、假單胞菌屬()、魏斯氏菌屬()等在發(fā)酵過程中也扮演著重要作用,共同構(gòu)成了發(fā)酵鯖魚的細(xì)菌群落,為發(fā)酵鯖魚特征風(fēng)味的形成和產(chǎn)品安全特性提供良好的環(huán)境;利用皮爾森(Pearson)相關(guān)性分析接菌鯖魚發(fā)酵過程中微生物群落演替與揮發(fā)性風(fēng)味形成的相關(guān)性,發(fā)現(xiàn)微生物菌落結(jié)構(gòu)與揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)關(guān)系復(fù)雜,其中乳桿菌屬、葡萄球菌屬、不動(dòng)細(xì)菌屬和鞘脂菌屬對(duì)揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的形成有顯著影響,豐度較低的魏斯氏菌、鞘脂桿菌、不動(dòng)桿菌、嗜甲基菌等微生物與揮發(fā)性風(fēng)味的形成也存在顯著正相關(guān)性,可見揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的變化是多種微生物協(xié)同作用的結(jié)果。本研究為深入了解鯖魚發(fā)酵的本質(zhì),探索揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)與微生物的關(guān)系及為人工發(fā)酵劑的生產(chǎn)和發(fā)酵調(diào)控提供理論依據(jù)。