周欣雨,佐兆杭,王 穎,2,3,4, ,么 楊 ,孫 維,張乃丹,龐惟俏
(1.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)食品學(xué)院,黑龍江大慶 163319;2.國家雜糧工程技術(shù)研究中心,黑龍江大慶 163319;3.糧食副產(chǎn)物加工與利用教育部工程研究中心,黑龍江大慶 163319;4.黑龍江省農(nóng)產(chǎn)品加工與質(zhì)量安全重點實驗室,黑龍江大慶 163319;5.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院作物科學(xué)研究所,北京 100081)
隨消費者生活方式和膳食結(jié)構(gòu)的改變,植物性蛋白倍受青睞。研究發(fā)現(xiàn)增加植物蛋白有助于預(yù)防糖尿病、增強心肺功能和抑制腫瘤細胞。蕓豆作為食用豆中的主要品種之一,種植范圍廣,成本低,廣泛被應(yīng)用于食品加工。蕓豆的蛋白質(zhì)含量豐富(23%),含脂量低,具有很高藥用和保健價值,心臟病和高脂血癥患者食用優(yōu)選,且蕓豆蛋白多肽的抗氧化活性較高,可提高機體免疫能力,抑菌和抗病功效突出。然而,因蕓豆蛋白表面電荷低,水溶性差,導(dǎo)致蛋白質(zhì)在水溶液中不穩(wěn)定,使蕓豆蛋白不能全面滿足工業(yè)生產(chǎn)的需要。因此,利用綠色、環(huán)保的物理技術(shù),來改變蛋白質(zhì)的理化性質(zhì),從而提高人們對植物蛋白的利用率是十分必要的。
超聲波技術(shù)被公認為一種實用高效的提取技術(shù),與熱工藝不同,超聲波在食品蛋白行業(yè)的實施更簡單、更快、更便宜,能耗更低,設(shè)備污染更低,操作條件更便利、無菌。隨著超聲處理產(chǎn)生的空化作用和機械作用,導(dǎo)致分子間鍵的斷裂和重新形成,可降低液滴尺寸,提高乳液穩(wěn)定性,改變蛋白質(zhì)溶解度等,如改變豌豆蛋白、大豆蛋白的乳化性等性能,已廣泛應(yīng)用于食品工業(yè)。但目前豌豆蛋白、大豆蛋白的研究主要是超聲對其理化及結(jié)構(gòu)特性的影響,對蛋白質(zhì)不同超聲條件以及超聲前后抗氧化能力鮮有報道。本研究以蕓豆蛋白為原料,研究了超聲處理對蕓豆蛋白理化及抗氧化能力的影響,旨為拓寬蕓豆蛋白的應(yīng)用領(lǐng)域,為蕓豆蛋白在相關(guān)功能性食品的研發(fā)與加工中提供理論依據(jù)及數(shù)據(jù)支撐。
脫脂蕓豆蛋白(蛋白質(zhì)量分數(shù)90%) 三原天域生物制品有限公司;T-AOC 試劑盒、鐵離子還原力試劑盒 上海博湖生物科技有限公司;5,5'-二硫代雙(2-硝基苯甲酸)、乙二胺四乙酸 上海碧云天生物技術(shù)有限公司;甘氨酸 上海吉至生化科技有限公司;三羥甲基氨基甲烷 天津光復(fù)科技發(fā)展有限公司;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH) 美國Sigma 公司;以上試劑 均為分析純。
AR2140 電子天平 常州勵岸寶機械設(shè)備科技有限公司;DL-360B 型超聲波清洗機、FD-1A-50 型冷凍干燥機、JIDI-18D 型臺式多用途高速離心機上海之信儀器有限公司;UV759 型紫外分光光度計愛來寶醫(yī)療科技有限公司;PHS-3C pH 計 上海精密科學(xué)儀器有限公司;NLM100 均質(zhì)機 上海人和科學(xué)儀器有限公司。
1.2.1 超聲處理蕓豆蛋白樣品的制備 參考Tomotake等的方法制備超聲后蕓豆蛋白樣品,略有改動。20 g 蕓豆蛋白粉溶解于100 mL 蒸餾水中并攪拌均勻,分別作用于不同超聲功率(160、400 W),不同超聲時間(10、20、30 min),樣品為A、A、A、B、B、B。超聲結(jié)束將樣品平鋪放入容器中,-80 ℃冰箱凍12 h 后通過凍干機干燥成粉末,于4 ℃冰箱密封保存。
1.2.2 蕓豆蛋白水解度測定 利用鄰苯二甲醛(OPA)法對蕓豆蛋白進行水解度測定。用紫外可見光分光光度計測定其吸光度(340 nm),吸光度要在精準反應(yīng)2 min 后測定。按照下列公式進行計算:
式中:0.9516 meqv/L:去離子水固定參數(shù);OD:吸光度;h:水解的肽鍵數(shù);h:總肽鍵數(shù),(蕓豆蛋白為7.42 mmol/g);SerineNH:毫摩SerineNH/g 蛋白;X:待測樣品重量(g);P:待測樣品濃度(g/mL);、:分別用常數(shù)1.00、0.40 表示。
1.2.3 蕓豆蛋白溶解度測定 取0.5 g 蕓豆蛋白粉加入30 mL 去離子水,500 r/min 下攪拌1 h,8000 r/min離心15 min,取上清液,微量凱氏定氮法測定蛋白含量。溶解度為上清液中蛋白質(zhì)含量占總蛋白質(zhì)量濃度的百分比度。
1.2.4 蕓豆蛋白游離巰基與二硫鍵含量測定 將10 mmol/L 5,5'-二硫代-(2-硝基苯甲酸)(DTNB)溶解在0.1 mol/L Tris-甘氨酸緩沖液(2.5% SDS,0.004 mol/L EDTA,0.09 mol/L 甘氨酸,0.086 mol/L Tris,pH8.0)中得到Ellman’s 試劑。取50 μL DTNB 緩沖液與2 mL 濃度為0.01 g/mL 的樣品溶液混合,25 ℃避光反應(yīng)30 min。紫外分光光度計測定吸光度(412 nm),以緩沖液為空白,測定游離巰基含量。在測定總巰基含量時,將適量的蛋白質(zhì)樣品溶解于尿素-Tris-甘氨酸緩沖液(10 mol/L 尿素,2.5% SDS,0.004 mol/L EDTA,0.09 mol/L 甘氨酸,0.086 mol/L Tris,pH8.0)和-巰基乙醇(-Me;加入50 μL),搖勻后在25 ℃暗室孵育60 min。8000 r/min 離心20 min,將得到的上清溶于5 mL 濃度為12%的TCA(w/v)中,重復(fù)3 次。離心后將沉淀溶解于2.5 mL 的Tris-甘氨酸溶液中,加入50 μL DTNB,25 ℃避光孵育30 min。最后,用紫外分光光度計在412 nm 處測量吸光度。巰基含量的計算公式如下:
式中:A為樣品在412 nm 處減去空白后的紫外吸光度值;D 為樣品稀釋倍數(shù);C 為樣品濃度(g/mL);二硫鍵含量由總巰基含量減去游離巰基含量再除以二得到。
1.2.5 蕓豆蛋白乳化性及乳化穩(wěn)定性測定 乳化性及乳化穩(wěn)定性的測定參考Wu 等報道的方法,用磷酸鹽緩沖液溶液(0.1 mol/L,pH7.0)配制蕓豆蛋白溶液,使蛋白的質(zhì)量濃度為0.2%,蛋白溶液與大豆油的體積比為4:1,配置好溶液后,利用均質(zhì)機使其形成乳狀液(1000 r/min,1 min),均質(zhì)液靜止0 和10 min后從離心管底部0.5 cm 處取50 μL 漿液,并加入5 mL質(zhì)量分數(shù)為0.1%的SDS 溶液中制成混合液,振蕩混勻,在500 nm 處測定混合液吸光度。0 min 時混合液的吸光度值記為A,10 min 時混合液的吸光度值為A,以0.1%的SDS 溶液做空白對照,計算公式如下:
式中:θ 表示乳化液中的油相體積分數(shù)(25%)。
1.2.6 蕓豆蛋白起泡性及起泡穩(wěn)定性測定 配制100 mL 蛋白質(zhì)量分數(shù)為5%的蛋白分散液,均質(zhì)(8000 r/min,2 min),均質(zhì)20 s 停頓20 s,然后快速轉(zhuǎn)入量筒中,記錄剛轉(zhuǎn)入量筒的泡沫體積V,并分別記錄在2、30 min 時泡沫的體積為V、V。
1.2.7 蕓豆蛋白抗氧化能力測定
1.2.7.1 蕓豆蛋白總抗氧化能力測定 取0.5 g 蕓豆蛋白粉加入50 mL 去離子水中,混合均勻。采用TAOC 試劑盒測定。
1.2.7.2 蕓豆蛋白DPPH 自由基清除能力測定 參考張雪春等的方法略有改動。乙醇為溶劑配制濃度為2×10mol/L 的DPPH 自由基溶液,于4 ℃冰箱保存?zhèn)溆?。?.5 mL 濃度為0.01 g/mL 樣品溶液,加入4 mL DPPH 自由基溶液混勻,室溫靜置30 min。利用紫外分光光度計測定其吸光值A(chǔ)(517 nm);同時取4 mL 2×10mol/L DPPH 自由基溶與0.5 mL 60%乙醇混勻,測定其吸光值A(chǔ),計算公式如下:
1.2.7.3 蕓豆蛋白鐵離子還原能力測定 取0.5 g 蕓豆蛋白粉加入50 mL 去離子水中,混合均勻。使用鐵離子還原力試劑盒進行測定。
實驗均進行三次重復(fù),結(jié)果以平均值±標準偏差表示。利用Excel、SPSS 22.0 等進行數(shù)據(jù)的處理和分析,采用Origin 2018 繪圖。
超聲處理對蕓豆蛋白水解度的影響如圖1 所示。與未處理組相比,蕓豆蛋白水解度隨著超聲功率與時間的增加而提高,當超聲時間20 min、功率400 W(B)時蕓豆蛋白的水解度增強效果最顯著(<0.05),由3.34%增加至20.10%。分析是由于超聲處理產(chǎn)生的空化效應(yīng)改變了蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu),使包埋在蛋白質(zhì)內(nèi)部的活性部位暴露,增加了底物與活性部位的結(jié)合,使蛋白質(zhì)水解度提高,這一結(jié)果與杜雙奎等研究一致。但當超聲功率不變,時間繼續(xù)增加時(B),水解度開始下降,分析是由于超聲時間過長,使蕓豆蛋白暴露在外的與底物結(jié)合的活性部位被破壞,導(dǎo)致水解度開始降低。
圖1 不同超聲條件對蕓豆蛋白水解度的影響Fig.1 Effects of different ultrasonic conditions on protein hydrolysis degree of kidney bean
溶解度是蛋白質(zhì)的重要性質(zhì)之一。如圖2 所示,當超聲時間10 min、功率160 W(A)時,蕓豆蛋白溶解度變化并不顯著(<0.05),在A(20 min,160 W)至B(20 min,400 W)時,蕓豆蛋白溶解度隨著超聲時間及功率的增加而顯著提高(<0.05),在B時蛋白溶解度達到最大值79.43%。超聲產(chǎn)生的空化作用與機械效應(yīng)可將蛋白質(zhì)聚集體顆粒發(fā)生解聚現(xiàn)象,使蛋白質(zhì)聚集體粒徑降低,增強蛋白質(zhì)與水相互作用,從而增加蛋白質(zhì)溶解度。當超聲功率不變,時間繼續(xù)增加時(B),蛋白質(zhì)溶解度發(fā)生下降現(xiàn)象,分析是超聲時間過長導(dǎo)致蛋白質(zhì)的解聚體重新聚集,溶解度減小。Zhong 等指出,在不同溫度和時間加熱時對綠豆蛋白的溶解度影響不大;相反,在熱與超聲共同作用下,隨處理溫度和時間增加,蛋白質(zhì)溶解度逐漸增加,由此超聲也被認定是蛋白質(zhì)溶解度增加的主要原因。
圖2 不同超聲條件對蕓豆蛋白溶解度的影響Fig.2 Effects of different ultrasonic conditions on protein solubility of kidney bean
圖3 表示了不同超聲強度處理蕓豆蛋白中游離巰基與二硫鍵含量的變化。由圖3 可知,隨超聲強度增加,蛋白中游離巰基的含量顯著提高(<0.05),二硫鍵的含量顯著降低(<0.05);與未處理組相比,超聲時間20 min、功率400 W(B)時游離巰基的含量最高、二硫鍵含量最低,分別由3.95 μmol/g 增加至7.45 μmol/g、由2.91 μmol/g 減少至1.31 μmol/g。分析是因超聲使蛋白質(zhì)分子顆粒減小,進而內(nèi)部機構(gòu)發(fā)生了改變。Hu 等研究表明,超聲處理會破壞蛋白質(zhì)內(nèi)二硫鍵,分解成新游離巰基。因此,本實驗中超聲處理使蛋白質(zhì)內(nèi)部的巰基暴露與二硫鍵的斷裂,降低了蛋白質(zhì)分子的穩(wěn)定性,從而使蕓豆蛋白的游離巰基的含量增加與二硫鍵的減少。但在當超聲功率不變時間延長時,蛋白中游離巰基的含量變少,二硫鍵含量增多,分析是蛋白質(zhì)所含游離巰基在長期暴露于極性環(huán)境中易與二硫鍵重新結(jié)合,導(dǎo)致游離巰基的減少與二硫鍵增多。
圖3 不同超聲條件對蕓豆蛋白游離巰基與二硫鍵含量的影響Fig.3 Effects of different ultrasonic conditions on content of freegroup and disulfide bond in kidney bean protein
乳化性是指超聲通過改變蛋白質(zhì)的二級結(jié)構(gòu),使之部分變性,從而暴露疏水基團使之相互作用解離,促進分子在小顆粒表面擴散,從而更好地吸附油水界面上的油滴,乳化穩(wěn)定性越高,則表示乳化性質(zhì)越好。如圖4 所示,超聲后蕓豆蛋白的乳化及乳化穩(wěn)定性顯著增加(<0.05),超聲時間10 min、功率400 W 時蕓豆蛋白的乳化性最佳,由2.66 m/g 增加至5.49 m/g,乳化穩(wěn)定性最好,由51.68%增加至70.11%,但當超聲功率不變,時間繼續(xù)增加時,乳化及乳化穩(wěn)定性開始下降。這是由于超聲時間過長會使蛋白質(zhì)嚴重變性,蛋白質(zhì)小顆粒重新聚集成大顆粒從而降低了乳化性。大量研究發(fā)現(xiàn),超聲處理可以有效地改善蛋白質(zhì)的乳化性及乳化穩(wěn)定性等功能性指標。
圖4 不同超聲條件對蕓豆蛋白乳化性及乳化穩(wěn)定性的影響Fig.4 Effects of different ultrasonic conditions on sulfhydryl emulsification and stability of kidney bean protein
由圖5 可知,超聲處理對蕓豆蛋白起泡性及起泡穩(wěn)定性差異顯著(<0.05),在超聲時間10 min、功率400 W 時蕓豆蛋白的起泡性和起泡穩(wěn)定性達到最大值,分別由88.13%增加至162.81%,由65.24%增加至72.94%。分析是超聲波產(chǎn)生的空化作用使蕓豆蛋白分子聚集程度降低,蛋白質(zhì)疏松,從而蕓豆蛋白更容易吸附在氣-水界面上,增加了蕓豆蛋白的起泡性及起泡穩(wěn)定性。望運滔等研究,隨超聲強度增加,鷹嘴豆蛋白的起泡性顯著增強(<0.05),超聲處理20 min 時,達到最大值136.7%,是未處理組的2.3 倍。但當超聲功率不變、時間延長時,蕓豆蛋白的起泡性及起泡穩(wěn)定性數(shù)值下降,這是由于超聲時間過度,蛋白質(zhì)疏松結(jié)構(gòu)變得緊密,使起泡性及起泡穩(wěn)定性出現(xiàn)降低的現(xiàn)象。因此,適當?shù)某曁幚砟軌蛴行У奶岣呤|豆蛋白的起泡性及起泡穩(wěn)定性。
圖5 不同超聲條件對蕓豆蛋白起泡性及起泡穩(wěn)定性的影響Fig.5 Effects of different ultrasonic conditions on foamability and foamability stability of kidney bean protein
蕓豆蛋白的抗氧化能力如圖6 所示。由圖6 可知,超聲處理前后蛋白抗氧化能力差異顯著(<0.05),在超聲時間10 min、功率400W(B)時,蕓豆蛋白總抗氧化能力、DPPH 自由基清除能力與Fe 離子還原能力分別達到最大值,總抗氧化能力由323.60 U/mL增加到636.28 U/mL;DPPH 自由基清除能力由49.70%增加至87.28%;Fe 離子還原能力由62.74%增加至80.58%。研究人員發(fā)現(xiàn)超聲處理會加速蛋白質(zhì)疏水性氨基酸外露,使蛋白質(zhì)疏水性與水解度增加,而蛋白質(zhì)的抗氧化能力與疏水性與水解度成正比。由此說明,超聲處理增加蛋白質(zhì)的疏水性與水解度,從而增加了蕓豆蛋白的抗氧化能力。這也與上述試驗中水解度增加的趨勢相符。當超聲功率不變,時間繼續(xù)增加時,蛋白的三種抗氧化能力指標數(shù)值開始下降,分析是超聲時間過長,暴露氨基酸基團重新被掩埋,水解度下降,繼而抗氧化能力降低。
圖6 不同超聲條件對蕓豆蛋白抗氧化能力的影響Fig.6 Effects of different ultrasonic conditions on antioxidant capacity of kidney bean protein
與未處理組相比,超聲處理顯著提高(<0.05)蕓豆蛋白的溶解度、水解度、乳化性及乳化穩(wěn)定性、起泡性及起泡穩(wěn)定性,超聲處理使蕓豆蛋白游離巰基含量增加,二硫鍵含量減少。超聲處理提高了蕓豆蛋白抗氧化能力,總抗氧化能力、DPPH 自由基清除能力與Fe 離子還原能力三種指標數(shù)據(jù)均顯著提高(<0.05)。但超聲時間過長也會引發(fā)蕓豆蛋白的理化性質(zhì)數(shù)值與抗氧化能力下降,因此,適度超聲處理可以提高蕓豆蛋白理化性質(zhì)及抗氧化能力。