趙新楠,彭吉星,吳海燕,鄭關(guān)超,郭萌萌,文藝曉,王聯(lián)珠,譚志軍*
(1.農(nóng)業(yè)農(nóng)村部水產(chǎn)品質(zhì)量安全檢測(cè)與評(píng)價(jià)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 中國水產(chǎn)科學(xué)研究院黃海水產(chǎn)研究所,青島 266071; 2.農(nóng)業(yè)農(nóng)村部水產(chǎn)品質(zhì)量安全風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估實(shí)驗(yàn)室, 青島 266071)
磷脂不僅是生物細(xì)胞膜的重要組成成分,同時(shí)具有信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)功能和生理代謝調(diào)節(jié)作用,水產(chǎn)品中富含活性不飽和脂肪酸,并且大都以磷脂的形式存在。由于磷脂具有防治心血管疾病,增強(qiáng)免疫力等生物功能特性,是相關(guān)水產(chǎn)品營(yíng)養(yǎng)品質(zhì)評(píng)價(jià)的重要指標(biāo)[1]。目前磷脂的研究主要集中在大豆和蛋黃中的卵磷脂,水產(chǎn)品中磷脂的研究較少[2-9]。磷脂類化合物種類多,常見的磷脂有20余種,據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道[10-18]水產(chǎn)品磷脂主要有磷脂酰膽堿、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰肌醇、溶血磷脂酰膽堿和鞘磷脂,其中磷脂酰膽堿(卵磷脂)和磷脂酰乙醇胺(腦磷脂)相對(duì)含量最高,以上5種磷脂占總磷脂含量的90%左右;牡蠣(Ostreagigastnunb)、鮭魚(Oncorhynchus keta)、磷蝦油、魚子、蟹和海膽中5種磷脂占其總磷脂含量的95%以上;貝類、刺參(Apostichopusjaponicas)和海膽(Echinoidea)等雖含有磷脂酰絲氨酸(Phosphatidylserine,PS)和心磷脂(Cardiolipin,CL),但僅占磷脂總含量的5%以下(見表1)。因此,本研究中磷脂化合物的分析選擇磷脂酰膽堿(Phosphatidylcholines,PC)、磷脂酰乙醇胺(Phosphatidylethanolamine,PE)、磷脂酰肌醇(Phosphatidylinositol,PI)、溶血磷脂酰膽堿(Lysophosphatidylcholine,LPC)和鞘磷脂(Sphingomyelin,SM)5種磷脂。
國內(nèi)針對(duì)磷脂檢測(cè)發(fā)布的相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)有GB 5537—2008[19]、GB 5009.272—2016[20]、GB/T 35867—2018[21],以上國標(biāo)方法主要用于植物油或從中提取的卵磷脂中磷脂的檢測(cè)。GB/T 35867—2018和《中華人民共和國藥典》(2015年版)[22]中磷脂的檢測(cè)均用高效液相色譜-蒸發(fā)光散射檢測(cè)(High performance liquid chromatography-Evaporative Light Scattering Detector,HPLC-ELSD)法,但其適用范圍僅涉及到油脂類或藥物用品中磷脂的檢測(cè),均未涉及水產(chǎn)品。國內(nèi)常用的檢測(cè)方法如比色法、分光光度法、電感耦合等離子體原子發(fā)射光譜法,只能測(cè)定總磷脂的含量,而且影響因素多,成分的準(zhǔn)確性較差,無法對(duì)其關(guān)鍵成分進(jìn)行定量分析檢測(cè),另外現(xiàn)有食品國標(biāo)中的磷脂液相色譜檢測(cè)方法檢測(cè)范圍不包括水產(chǎn)品及其制品,導(dǎo)致不能用于分析評(píng)價(jià)水產(chǎn)品及其制品磷脂的質(zhì)量?jī)?yōu)劣。液相色譜是目前磷脂分離和定性定量分析中最常用的方法,紫外檢測(cè)器和蒸發(fā)光散射檢測(cè)器是常用檢測(cè)器,其中,蒸發(fā)光散射檢測(cè)器的響應(yīng)信號(hào)獨(dú)立于分子中的雙鍵數(shù)目,對(duì)于紫外吸收弱的磷脂類物質(zhì)更為準(zhǔn)確靈敏,適用于不同來源磷脂的檢測(cè),是目前磷脂分析最常用的方法。
實(shí)驗(yàn)室前期優(yōu)化建立了HPLC-ELSD測(cè)定南極磷蝦(Euphausiasuperba)油中磷脂的方法[23],但是只涉及到磷脂酰膽堿、磷脂酰乙醇胺和溶血磷脂酰膽堿3種磷脂,且只分析了南極磷蝦油樣品。本研究在實(shí)驗(yàn)室前期研究基礎(chǔ)上,進(jìn)一步利用HPLC-ELSD檢測(cè)不同水產(chǎn)品中5種磷脂的含量,為水產(chǎn)品營(yíng)養(yǎng)品質(zhì)評(píng)價(jià)提供支撐,對(duì)促進(jìn)產(chǎn)業(yè)健康發(fā)展以及水產(chǎn)品高值化利用具有重要的意義和經(jīng)濟(jì)價(jià)值。
表1 不同水產(chǎn)品中磷脂含量比例Tab.1 The content ratio of phospholipids in different aquatic products
乳山二倍體牡蠣于春季采自威海乳山海洋所鎮(zhèn)南泓村海域;刺參于春季采自威海榮成東楮島海域;磷蝦粉來自青島康境等磷蝦粉加工企業(yè);虹鱒(Oncorhynchusmykiss)、螃蟹、海參性腺、海膽醬、鱘魚子,購自青島某超市。磷脂酰膽堿(CAS:8002- 43-5,PC)、磷脂酰乙醇胺(CAS:39382-08-6,PE)、磷脂酰肌醇(CAS:383907-33-3,PI)、溶血磷脂酰膽堿(CAS:9008-30-4,LPC)、鞘磷脂(CAS:85187-10-6,SM),均購于sigma公司,純度≥98%。鹽酸(優(yōu)級(jí)純),購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;氯仿、乙醚、丙酮,乙酸均為色譜級(jí),購自美國默克公司;甲醇、異丙醇、正己烷均為色譜級(jí),購自賽默飛世爾科技公司。
N-EVAP-24氮吹儀(Organomation公司);IKA渦旋振蕩器(德國艾卡公司);KQ-600DE超聲清洗機(jī)(昆山舒美公司);sigma 4-88離心機(jī)(sigma公司);CPA 1003P天平(美國賽多利斯公司);1 000 mg/6 mL氨基固相萃取柱(Waters公司);Chromolith Performance-Si(100 mm×4.6 mm)硅膠整體柱(Merck公司);Waters 2695高效液相色譜儀(Waters公司);Waters 2424蒸發(fā)光散射檢測(cè)器(Waters公司)。
1.2.1 樣品處理
稱取適量水產(chǎn)品樣品(牡蠣、刺參凍干粉樣品0.200 g;磷蝦粉樣品0.100 g;虹鱒、海膽黃、蟹黃、鱘魚子、海參性腺鮮樣2.00 g)置于50.0 mL離心管中,加入15 mL氯仿∶甲醇(2∶1,V/V)溶液,超聲提取30 min,4 000 r/min離心5 min,收集上清液,對(duì)殘?jiān)貜?fù)上述操作2次,合并上清液至分液漏斗中,加入10.0 mL 0.9%氯化鈉溶液,振蕩搖勻后靜置,收集下層氯仿,氯仿加入適量無水硫酸鈉脫水過濾后于30 ℃氮吹至近干,得到粗磷脂提取物。
采用氨基固相萃取柱完成磷脂的凈化,將粗磷脂提取物置于10.0 mL玻璃試管中,加入2.00 mL氯仿溶解樣品。氨基固相萃取柱先用5.00 mL氯仿活化,將溶解的試樣移入氨基固相萃取柱中,依次用10.0 mL 氯仿-異丙醇(2∶1,V/V)溶液和10.0 mL乙醚-乙酸(72∶1,V/V)溶液淋洗小柱,再依次用10.0 mL甲醇和10.0 mL甲醇-氯仿-2%鹽酸水(100∶200∶1,V/V/V)溶液洗脫,合并洗脫液;在30 ℃下氮吹至近干,加入適量正己烷-異丙醇(2∶3,V/V)溶液溶解試樣并定容至10.0 mL,取1.00 mL過0.45 μm尼龍濾膜后上機(jī)檢測(cè)分析。
1.2.2 色譜條件
色譜條件參考文藝曉等[23]的研究,柱溫:30 ℃;流速:1.5 mL/min;載氣壓力:50 psi;漂移管溫度:65 ℃,噴霧器:加熱模式75%;流動(dòng)相:A為正己烷-三乙胺(2 500∶1,V/V)溶液,B為丙醇,C為13%乙酸溶液;梯度洗脫程序見表2。
表2 流動(dòng)相梯度洗脫程序Tab.2 Gradient elution program of mobile phases
分別準(zhǔn)確稱取30.0 mg磷脂酰膽堿、20.0 mg溶血磷脂酰膽堿、10.0 mg磷脂酰乙醇胺、10.0 mg磷脂酰肌醇和10.0 mg鞘磷脂,用正己烷-異丙醇(2∶3,V/V)溶液溶解定容至10.0 mL作為標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液。取適量標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液用正己烷-異丙醇(2∶3,V/V)溶液稀釋配制系列標(biāo)準(zhǔn)工作溶液。將標(biāo)準(zhǔn)系列工作液分別注入液相色譜儀,如圖1所示,混合標(biāo)準(zhǔn)工作液中的5種磷脂可以達(dá)到很好地分離效果,而且基線平穩(wěn)、干擾少,能在15 min內(nèi)完成一次分析。以系列標(biāo)準(zhǔn)溶液中各磷脂質(zhì)量濃度對(duì)數(shù)值作橫坐標(biāo),以相應(yīng)色譜峰峰面積對(duì)數(shù)值作縱坐標(biāo),標(biāo)準(zhǔn)曲線見表2。根據(jù)蒸發(fā)光散射檢測(cè)原理y=axb,其中y指峰面積;x指磷脂標(biāo)準(zhǔn)溶液質(zhì)量濃度(mg/L);a、b與蒸發(fā)溫度、流動(dòng)相性質(zhì)等條件有關(guān)的常數(shù),由于y和x為非線性關(guān)系,因此對(duì)等式兩邊取對(duì)數(shù),則線性標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為lgy=blgx+lga。
圖1 5種磷脂混合標(biāo)準(zhǔn)溶液的液相色譜圖(1-PE;2-PI;3-PC;4-SM;5-LPC)Fig.1 Liquid chromatogram of 5 kinds of phospholipid mixed standard solution(1-PE;2-PI;3-PC;4-SM;5-LPC)
取試樣溶液注入液相色譜儀中,按相同色譜條件進(jìn)行測(cè)定,記錄色譜峰的保留時(shí)間和峰面積,外標(biāo)法定量。試樣溶液中各磷脂的響應(yīng)值應(yīng)在標(biāo)準(zhǔn)曲線范圍內(nèi),超出范圍的試樣溶液可適當(dāng)稀釋后再進(jìn)行測(cè)定。
表3 磷脂標(biāo)準(zhǔn)曲線及R2值Tab.3 Standard curve and R2 value of phospholipids
磷脂按照來源,可分為動(dòng)物來源、植物來源和微生物來源,動(dòng)物性來源的磷脂主要來自蛋黃、腦部組織、肝臟及水產(chǎn)動(dòng)物等,水產(chǎn)動(dòng)物尤其是海洋動(dòng)物含有豐富的二十二碳六烯酸(DHA)和二十碳五烯酸(EPA)。磷脂標(biāo)準(zhǔn)品分為植物來源(大豆)和動(dòng)物來源(PI為牛肝臟來源,PC、PE、LPC、SM為雞蛋黃來源)2種不同生物來源,如圖2所示,不同來源標(biāo)準(zhǔn)品的響應(yīng)值(峰面積)不同,經(jīng)對(duì)比分析,同濃度的大豆來源磷脂標(biāo)準(zhǔn)品色譜峰面積大于動(dòng)物來源標(biāo)準(zhǔn)品(比值在1.11~1.36之間),影響樣品定量結(jié)果。由于動(dòng)物來源磷脂中脂肪酸碳鏈長(zhǎng)度和不飽和脂肪酸種類及占比與水產(chǎn)品中磷脂更接近,因此宜選用動(dòng)物性來源標(biāo)準(zhǔn)品。
圖2 5種磷脂混合標(biāo)準(zhǔn)溶液的液相色譜圖(左圖:大豆來源;右圖:動(dòng)物來源)Fig.2 Liquid chromatogram of 5 kinds of phospholipid mixed standard solution (Left: soybean source; Right: animal source)
采用A:氯仿-甲醇(2∶1,V/V)、B:氯仿-甲醇(1∶2,V/V)、C:二氯甲烷-甲醇(2∶1,V/V)、D:95%乙醇、E:乙醇-丙酮(1∶1,V/V)、F:正己烷、G:正己烷-乙酸乙酯(7∶3,V/V)7種有機(jī)溶劑或混合溶液提取南極磷蝦粉中的磷蝦油,比較不同提取溶劑對(duì)南極磷蝦油得率及磷脂含量的影響。由圖3可知,采用95%乙醇溶液和氯仿-甲醇(2∶1,V/V)提取得到的南極磷蝦油得率最高,正己烷提取的南極磷蝦油得率最低,而在正己烷中加入極性相對(duì)較強(qiáng)的乙酸乙酯,磷蝦油得率有明顯提高。
圖3 有機(jī)溶劑提取南極磷蝦油得率Fig.3 The yield of Antarctic krill oil extracted by organic solvent
進(jìn)一步分析不同溶劑提取的南極磷蝦粉中磷脂,如表4所示,通過乙醇提取得到的磷脂在色譜圖中有干擾峰;不同溶劑提取得到南極磷蝦油中均含有PC和LPC,其中95%乙醇和氯仿-甲醇(2∶1,V/V)溶液提取得到的PC、LPC和PE含量相近且最高;正己烷提取得到的磷蝦油中PC和LPC含量最少。綜合考慮,本方法采用氯仿-甲醇(2∶1,V/V)進(jìn)行磷脂的提取。
表4 不同溶劑提取的南極磷蝦粉中磷脂含量Tab.4 Phospholipid content in Antarctic krill meal extracted with different solvents (mg·g-1)
根據(jù)前期磷蝦油中磷脂研究及文獻(xiàn)報(bào)道[23-25],繼續(xù)選用氨基固相萃取柱作為凈化柱。由于前期研究以氯仿-異丙醇(2∶1,V/V)、乙醚-乙酸(72∶1,V/V)、甲醇分別作為淋洗液和洗脫液對(duì)磷蝦油中PE、PC、LPC 3種磷脂進(jìn)行富集凈化,本研究發(fā)現(xiàn)僅用甲醇作為洗脫液時(shí),PI的洗脫效果較差(PI易溶于氯仿-甲醇),采用10.0 mL甲醇和10.0 mL甲醇-氯仿-2%鹽酸水(100∶200∶1,V/V/V)兩種溶液洗脫后再合并洗脫液的方法,對(duì)PI有較好洗脫效果。磷蝦油磷脂檢測(cè)結(jié)果表明,磷蝦油中含量最高的是PC,其次為L(zhǎng)PC,最后是PE,與文獻(xiàn)報(bào)道的磷脂含量趨勢(shì)一致[8]。
根據(jù)空白樣品加標(biāo)以信噪比(S/N≥10)確定定量限,PC定量限為0.60 mg/g,PE、PI、SM的定量限為0.20 mg/g,LPC定量限為0.40 mg/g。
采用處理后的牡蠣、虹鱒、磷蝦粉樣品作為空白基質(zhì),分別添加不同量的磷脂混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,用本方法進(jìn)行驗(yàn)證,具體加標(biāo)量見表5。5種磷脂的加標(biāo)回收率及精密度良好,加標(biāo)回收率范圍為77%~102%,RSD范圍為0.75%~9.78%,結(jié)果表明該方法具有較好的回收率和良好的精密度。
表5 不同固體基質(zhì)磷脂加標(biāo)回收率和精密度Tab.5 Spiked recovery and precision of phospholipids from different solid matrices
對(duì)磷蝦粉、牡蠣粉、虹鱒、刺參粉等不同樣品檢測(cè)分析結(jié)果如表6所示,磷蝦粉中主要含有PE、PC、LPC 3種磷脂,其中PC含量在29.71~35.30 mg/g之間,占總磷脂含量的85.20%~90.14%,遠(yuǎn)高于其他樣品,其次為L(zhǎng)PC含量在2.55~4.12 mg/g之間,PE含量為0.99~2.01 mg/g,但PI、SM未檢出;乳山牡蠣凍干粉樣品中PC含量最高,在10.75~12.90 mg/g之間,占總磷脂含量的63.67%~70.08%;其次為PE含量在2.49~4.40 mg/g之間,PI和SM含量分別為1.64~2.32 mg/g和0.46~0.90 mg/g,部分樣品中未檢出;虹鱒鮮樣中也是PC含量最高,含量范圍在5.33~6.64 mg/g之間,占總磷脂含量的65.14%~72.25%,其次為PE含量在2.10~2.55 mg/g之間,PI和SM僅有部分樣品檢出,含量少且低于0.5 mg/g;刺參凍干粉樣品中主要含有PC、PE以及PI,其中PC含量最高,為15.84~20.41 mg/g,占總磷脂含量的74.23%~79.18%,其次為PE含量在2.90~3.69 mg/g之間,PI含量為1.60~2.70 mg/g,但未檢出LPC和SM。
表6 不同水產(chǎn)品樣品中磷脂含量Tab.6 Phospholipid content in different aquatic product samples
此外,對(duì)海膽醬、蟹黃、鱘魚子以及海參性腺等水產(chǎn)品生殖腺組織中磷脂含量分析,含量如表7所示。海膽黃中主要含有PE、PC、LPC、SM 4種磷脂,其中PC含量最高;大閘蟹蟹黃中含有PC、PE和SM 3種磷脂,其磷脂總量和海膽黃相近;鱘魚子醬中只檢出PC,且含量為4種性腺樣品中最高;海參性腺樣品主要含有PE和PC 2種磷脂,但含量較少,均低于1.00 mg/g。
表7 不同水產(chǎn)品性腺中磷脂含量Tab.7 Phospholipid content in gonads of different aquatic products
磷脂的分析檢測(cè)由于儀器、樣品來源、計(jì)算原理、方法不一致等給結(jié)果對(duì)比帶來困難,因此,建立一種統(tǒng)一可用的檢測(cè)方法是十分必要的。本研究建立了HPLC-ELSD測(cè)定水產(chǎn)品中5種磷脂的定性和定量分析方法,并對(duì)方法的回收率及精密度進(jìn)行了驗(yàn)證。樣品分析結(jié)果表明,牡蠣、虹鱒、刺參、磷蝦粉等不同水產(chǎn)品中磷脂含量豐富,但組成和含量存在差異,其中含量最高的磷脂均為磷脂酰膽堿,其次為磷脂酰乙醇胺,其他3種磷脂即溶血磷脂酰膽堿、磷脂酰肌醇和鞘磷脂僅在部分樣品中檢出,且含量較少。