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    化學(xué)吸收劑單乙醇胺強(qiáng)化小球藻生長(zhǎng)代謝及固碳效應(yīng)的研究

    2022-09-09 09:17:22張效銘劉穎穎崔紅利張春輝薛金愛(ài)季春麗李潤(rùn)植
    激光生物學(xué)報(bào) 2022年4期
    關(guān)鍵詞:生長(zhǎng)質(zhì)量

    張效銘,劉穎穎,崔紅利,張春輝,薛金愛(ài),季春麗,李潤(rùn)植

    (山西農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院,太谷 030801)

    工業(yè)現(xiàn)代化的發(fā)展和世界人口的劇增是全球溫室氣體濃度增加的主要原因。自工業(yè)革命以來(lái),大氣中CO2濃度已從大約0.55 mg/m3上升到現(xiàn)在的0.79 mg/m3[1]。直到今天,世界一次能源需求仍由化石燃料(如煤、石油、天然氣等)滿(mǎn)足,同時(shí)在未來(lái)的很長(zhǎng)一段時(shí)間,化石能源還將繼續(xù)在能源結(jié)構(gòu)中占主導(dǎo)地位,這將導(dǎo)致化石燃料日益枯竭,CO2排放量持續(xù)增加?!疤歼_(dá)峰,碳中和”的任務(wù)目標(biāo)已被提出。應(yīng)對(duì)CO2排放這一問(wèn)題的有效途徑之一是以經(jīng)濟(jì)可行的形式對(duì)CO2進(jìn)行生物固定并轉(zhuǎn)化為高值產(chǎn)品,如生物柴油、多糖、活性蛋白等[2]。微藻長(zhǎng)期以來(lái)被認(rèn)為是唯一有潛力替代化石柴油的生物柴油來(lái)源,是減少溫室氣體的主要碳匯原料。微藻具有較高的生長(zhǎng)速率和CO2固定能力,并富含多種高附加值產(chǎn)物,其CO2固定效率是C3植物的10~50倍。微藻還具有可利用發(fā)電廠煙道廢氣和其他工業(yè)尾氣為無(wú)機(jī)碳源,利用市政廢水和工農(nóng)業(yè)生產(chǎn)廢水為營(yíng)養(yǎng)源(N、P等)等優(yōu)點(diǎn)。因此,利用微藻固定煙氣CO2聯(lián)產(chǎn)高附加值產(chǎn)品構(gòu)建低碳、綠色的資源化利用的新能源體系,被列為我國(guó)面向2050年能源可持續(xù)發(fā)展的潛力研究方向之一[3]。

    然而,微藻生物固碳的CO2捕獲率還比較低,這是因?yàn)镃O2在微藻培養(yǎng)體系中吸收傳質(zhì)效率較低,而CO2傳質(zhì)過(guò)程是影響微藻生長(zhǎng)及固碳效率的關(guān)鍵因素。而且大多數(shù)微藻在CO2體積分?jǐn)?shù)高于5%時(shí)生長(zhǎng)就會(huì)受到抑制,而工業(yè)煙氣中CO2含量在10%~20%,嚴(yán)重限制了微藻規(guī)?;潭–O2和高值產(chǎn)物的積累[4-5]。因此,選育能耐受高濃度CO2的優(yōu)良藻株、提高培養(yǎng)效率和降低培養(yǎng)成本是微藻固碳技術(shù)領(lǐng)域的首要任務(wù)。

    近年來(lái),國(guó)內(nèi)外研究者在提高微藻CO2固定效率和產(chǎn)物積累方面做了廣泛深入的研究。在藻液中添加CO2吸收劑可以有效地改善培養(yǎng)液的氣體傳質(zhì)效率,緩解因高濃度CO2造成的培養(yǎng)液酸化問(wèn)題,促進(jìn)微藻的生長(zhǎng)代謝,提高固碳效率。有研究者提出,在培養(yǎng)基中加入碳酸氫鈉(NaHCO3),通過(guò)連續(xù)供應(yīng)1%的CO2氣體,可以提高小球藻的生長(zhǎng)速率、CO2的利用率和油脂產(chǎn)率[6]。然而,大量碳酸鹽的加入不僅增加微藻的培養(yǎng)成本,還會(huì)導(dǎo)致pH值上升,超過(guò)微藻的最佳培養(yǎng)要求。微藻細(xì)胞易受高鹽度影響,從而不利于其生長(zhǎng),進(jìn)而導(dǎo)致微藻同步高效固定CO2和積累代謝產(chǎn)物無(wú)法實(shí)現(xiàn)。將醇胺類(lèi)化合物等化學(xué)吸收劑添加至微藻培養(yǎng)體系中可有效避免上述問(wèn)題。醇胺類(lèi)化合物的添加可以提高培養(yǎng)液初始pH及平衡穩(wěn)定pH,使培養(yǎng)液具有pH緩沖能力。除此之外,其還可顯著地提高培養(yǎng)液無(wú)機(jī)碳溶解度,并改變?nèi)芙庑蕴荚葱螒B(tài)的比例,提高CO2在培養(yǎng)液中的溶解傳質(zhì)能力,進(jìn)而提高微藻固定CO2的效率和生物質(zhì)產(chǎn)率。因此,醇胺類(lèi)化合物在微藻培養(yǎng)體系中的應(yīng)用因其高效性、可資源化和多藻適用性而受到廣泛關(guān)注[7-9]。

    本實(shí)驗(yàn)室從大同電廠附近水域分離純化出一株生長(zhǎng)速率快且能耐高濃度CO2的經(jīng)自然環(huán)境酸馴化的優(yōu)良小球藻種質(zhì)。該藻種可以在高濃度CO2下持續(xù)生長(zhǎng),而在此條件下,添加化學(xué)吸收劑是否可以進(jìn)一步提高該藻的固碳能力及生物量和產(chǎn)物積累還有待驗(yàn)證。因此,本文以大同電廠小球藻為研究對(duì)象,探討在高濃度CO2下添加不同質(zhì)量濃度的單乙醇胺(monoethanolamine,MEA)對(duì)微藻生長(zhǎng)、油脂積累和光合活性等生理生化特征的影響,為深入理解微藻固碳機(jī)制和微藻高效固碳聯(lián)產(chǎn)高值產(chǎn)品應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)和技術(shù)支撐。

    1 材料與方法

    1.1 藻株

    試驗(yàn)所用小球藻Chlorellasp.為實(shí)驗(yàn)室從大同電廠附近水域篩選純化所得,保藏于本實(shí)驗(yàn)室。

    1.2 培養(yǎng)條件

    將小球藻單藻落藻細(xì)胞接種于250 mL錐形瓶中,加入100 mL BG11培養(yǎng)基,將藻液放在連續(xù)光照強(qiáng)度為1 000 lx和溫度為25℃的環(huán)境中培養(yǎng)。將處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的50 mL藻液接種到裝有600 mL BG11培養(yǎng)基的柱狀光生物反應(yīng)器中,使得接種后的藻液質(zhì)量濃度為0.1 g/L。溫度設(shè)置為25℃,光照強(qiáng)度為6 000 lx,CO2體積分?jǐn)?shù)為20%,通氣比為0.33,連續(xù)通氣培養(yǎng)10 d,設(shè)置5組試驗(yàn)組,分別添加0、50、100、200、300 mg/L MEA,以 0 mg/L MEA為對(duì)照,每組設(shè)置3組平行。在接種后第2、4、6、8、10 d取樣測(cè)定培養(yǎng)液pH、生物量、葉綠素?zé)晒鈪?shù),在培養(yǎng)結(jié)束后測(cè)定色素和油脂含量。

    1.3 生物量的測(cè)定

    取一定體積的藻液V(mL),通過(guò)真空抽濾裝置將其過(guò)濾到預(yù)先稱(chēng)好的質(zhì)量為W0(g)的孔徑為0.45 μm的醋酸-硝酸纖維混合微孔濾膜(使用前沸水煮3次并烘干)上,然后將濾有藻細(xì)胞的濾膜放在烘箱中烘干至恒重,稱(chēng)其重量記為W1(g)。根據(jù)公式(1)計(jì)算生物量密度C( g/L)。

    根據(jù)公式(2)計(jì)算生物量產(chǎn)率Poverall[g/(L·d)]。

    C0(g/L)為初始生物量質(zhì)量濃度;Ct(g/L)為培養(yǎng)結(jié)束后生物量質(zhì)量濃度;t(d)為培養(yǎng)時(shí)間。

    1.4 色素含量的測(cè)定

    采用比色法測(cè)定微藻中色素的含量。取5 mL藻液 4 500 r/min 離心 10 min,棄上清液后向沉淀中加入與藻液等體積的95%乙醇,充分震蕩后置于 75℃水浴鍋水浴 15 min,冷卻后 4 500 r/min離心10 min,用分光光度計(jì)測(cè)上清液在665、649和470 nm的吸光度(optical density,OD),根據(jù)公式(3~5)[10]計(jì)算藻細(xì)胞中葉綠素a、葉綠素b和類(lèi)胡蘿卜素的質(zhì)量濃度CChla、CChlb和CCa(rmg/L)。

    根據(jù)藻液離心前的生物量密度以及加入量,可將各色素質(zhì)量濃度換算成色素含量(mg/g,細(xì)胞干重)。

    1.5 葉綠素?zé)晒鈪?shù)的測(cè)定

    取3 mL藻液放入遮光比色皿,暗處理5 min后,使用Handy-PEA葉綠素?zé)晒鈨x(Hansatech Instruments Ltd,英國(guó))測(cè)定其相關(guān)光合參數(shù)——最大光能轉(zhuǎn)換效率(maximum photochemical quantum yield of PSII,F(xiàn)v/Fm)、實(shí)際光能轉(zhuǎn)化效率[effective photo-chemical quantum yield of PSII,Y(Ⅱ)]、光化學(xué)淬滅系數(shù)(coefficient of photochemical fluorescence quenching,qP)和非光化學(xué)淬滅系數(shù)(non-photochemical quenching,NPQ)。測(cè)定光反應(yīng)條件下Y(Ⅱ)'和光合有效輻射量(photo-synthetically active radiation,PAR)值,根據(jù)公式(6)計(jì)算相對(duì)電子傳遞速率(electron transport rate,ETR)值。各葉綠素?zé)晒鈪?shù)的含義如表1所示。

    表1 葉綠素?zé)晒鈪?shù)Tab. 1 Chlorophyll fluorescence parameters

    1.6 CO2固定率和CO2利用率的計(jì)算

    根據(jù)公式(7)計(jì)算CO2固定率Fc[(g CO2/(L·d)]。

    其中微藻生物量中的碳含量按50%估算[11];12(g/mol)和44(g/mol)分別表示碳和CO2的相對(duì)分子質(zhì)量。

    根據(jù)公式(8)計(jì)算CO2利用率Ec。

    V(L)為藻液體積;mc1(g/d)為每天通入培養(yǎng)基中CO2的質(zhì)量;mc2(g/d)為每天通入培養(yǎng)基空氣中CO2的質(zhì)量。

    1.7 總脂含量的測(cè)定

    采用氯仿-甲醇萃取法測(cè)定微藻中的總脂含量。稱(chēng)取0.05 g左右的凍干藻粉A1(g)放入研缽并加入適量石英砂,在研缽中充分研磨后加入5 mL甲醇和2.5 mL氯仿,將混合物轉(zhuǎn)移到50 mL離心管中,并高速振蕩5 min使其均勻混合,然后將離心管密封置于37℃、轉(zhuǎn)速為150 r/min的搖床24 h,之后取出離心管8 000 r/min離心5 min,收集上清液到新的離心管中;再向沉淀管中加入5 mL甲醇和2.5 mL氯仿,高速震蕩5 min后置于37℃搖床2 h,取出后再次離心,并取上清與之前收集的上清液合并。觀察藻渣顏色,如未抽提干凈,再重復(fù)上述步驟1~2次。向合并的上清液中加入5 mL氯仿和9 mL 1% NaCl溶液,漩渦震蕩混勻,保證最終體系為V(甲醇)∶V(氯仿)∶V(1% NaCl)=2.0∶2.0∶1.8。將混合液8 000 r/min離心 10 min,將下層有機(jī)相轉(zhuǎn)移至另一預(yù)先稱(chēng)重A2(g)的玻璃管中,用氮吹儀在60℃下將溶液吹干,待氯仿?lián)]發(fā)干凈后,再將玻璃管置于55℃真空干燥箱中烘干3 h,冷卻后稱(chēng)其重量A3(g),根據(jù)公式(9)、(10)計(jì)算總脂含量TL(%)和產(chǎn)率PLipid[(mg(/L·d)]。

    1.8 統(tǒng)計(jì)分析

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同質(zhì)量濃度MEA對(duì)培養(yǎng)基pH的影響

    培養(yǎng)液pH是影響微藻生長(zhǎng)及CO2高效固定的重要因素。為了研究不同質(zhì)量濃度的MEA在20%CO2條件下對(duì)生物培養(yǎng)基pH的影響,本文測(cè)試了藻液pH隨時(shí)間的變化趨勢(shì)(圖1)。培養(yǎng)第0天時(shí),不添加MEA的培養(yǎng)基在通入20% CO2后,pH下降到了5.35,隨著添加MEA質(zhì)量濃度的增加,pH也隨之升高,MEA質(zhì)量濃度為300 mg/L時(shí),pH升高到6.22。隨著培養(yǎng)時(shí)間的增加,藻液pH在不加MEA和加入低質(zhì)量濃度的MEA(50 mg/L)時(shí)呈現(xiàn)隨時(shí)間逐漸上升的趨勢(shì),而加入較高質(zhì)量濃度的MEA(>50 mg/L)時(shí),藻液pH隨時(shí)間呈現(xiàn)先下降后上升的趨勢(shì)。但整體而言,加入MEA后藻液的pH在高濃度CO2下波動(dòng)范圍有所減小,由常規(guī)培養(yǎng)時(shí)的5.35~6.87(0 mg/L MEA)縮小為5.81~6.44(300 mg/L MEA)。

    圖1 不同質(zhì)量濃度MEA對(duì)藻液pH的影響Fig. 1 Effects of different mass concentrations of MEA on the pH in the culture medium

    2.2 不同質(zhì)量濃度MEA對(duì)小球藻生長(zhǎng)、固碳效應(yīng)及油脂積累的影響

    干重是表征藻細(xì)胞生長(zhǎng)情況的重要指標(biāo)。從圖2可以看出:當(dāng)MEA質(zhì)量濃度由0 mg/L增加至100 mg/L時(shí),小球藻生物量比對(duì)照顯著提高;當(dāng)MEA質(zhì)量濃度為50 mg/L時(shí),培養(yǎng)10 d的小球藻干重達(dá)到最大值3.07 g/L,是對(duì)照組生物量的1.44倍;而MEA質(zhì)量濃度為200和300 mg/L時(shí),培養(yǎng)10 d的小球藻生物量分別為2.08和1.63 g/L,較對(duì)照分別降低了2.5%和23.3%。這表明,適宜質(zhì)量濃度的MEA可促進(jìn)小球藻在高濃度CO2下的生長(zhǎng),而高質(zhì)量濃度MEA卻會(huì)抑制小球藻的生長(zhǎng)。

    圖2 不同質(zhì)量濃度MEA對(duì)小球藻干重的影響Fig. 2 Effects of different mass concentrations of MEA on the dry weight of Chlorella sp.

    在不同質(zhì)量濃度MEA的作用下,小球藻對(duì)CO2固定效率差異顯著。如表2所示,小球藻在0~100 mg/L的MEA條件下,CO2固定效率顯著上升,MEA質(zhì)量濃度為50 mg/L時(shí),CO2固定效率和CO2利用率達(dá)到最大值,分別為0.55 g/(L·d)和0.27%,比對(duì)照組分別提高了44.7%和42.1%。當(dāng)MEA質(zhì)量濃度提高至200~300 mg/L時(shí),CO2固定效率較對(duì)照組顯著下降,且隨著質(zhì)量濃度的升高呈下降趨勢(shì)。這說(shuō)明,適宜質(zhì)量濃度的MEA在微藻培養(yǎng)體系中可提高小球藻的CO2固定效率和利用率。

    表2 不同質(zhì)量濃度MEA培養(yǎng)的小球藻的最大生物量(Ct)、總生物量生產(chǎn)率(Poverall)、CO2固定率(Fc)和CO2利用率(Ec)Tab. 2 The maximum biomass concentration (Ct), overall biomass productivity (Poverall), CO2 fixation rates (Fc) and CO2 utilization efficiency(Ec) of Chlorella sp. under different MEA mass concentrations

    油脂是微藻重要的代謝產(chǎn)物之一,添加適量質(zhì)量濃度的MEA可顯著增加微藻中的油脂含量,油脂產(chǎn)率也有較為顯著的提升。如圖3所示,當(dāng)MEA質(zhì)量濃度為50 mg/L時(shí),油脂含量達(dá)到最大值23.5%,油脂產(chǎn)率達(dá)到71 mg/(L·d),分別比對(duì)照組高21.7%和77.5%。

    圖3 不同質(zhì)量濃度MEA對(duì)小球藻總脂含量和產(chǎn)率的影響Fig. 3 Effects of different mass concentrations of MEA on the lipid content and productivity of Chlorella sp.

    2.3 不同質(zhì)量濃度MEA對(duì)小球藻色素積累和光合特性的影響

    MEA的添加對(duì)小球藻的色素積累和光合特性也會(huì)產(chǎn)生一定的影響。從圖4可以看出,隨著MEA質(zhì)量濃度的升高,小球藻的色素積累呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì)。從色素質(zhì)量濃度來(lái)看,在50 mg/L的MEA質(zhì)量濃度下色素積累最多,葉綠素a、葉綠素b、類(lèi)胡蘿卜素的質(zhì)量濃度分別為23.6、9.2和6.9 mg/L,分別是對(duì)照組的1.42、1.51和1.35倍。當(dāng)MEA質(zhì)量濃度繼續(xù)增加時(shí),色素積累呈現(xiàn)下降趨勢(shì),在200和300 mg/L MEA質(zhì)量濃度下,色素積累量相比對(duì)照組明顯下降,當(dāng)MEA質(zhì)量濃度為300 mg/L時(shí),葉綠素a、葉綠素b和類(lèi)胡蘿卜素的含量分別比對(duì)照組下降了40.0%、37.8%和46.9%。從色素含量來(lái)看,在50 mg/L的MEA質(zhì)量濃度下色素含量最多,葉綠素a、葉綠素b、類(lèi)胡蘿卜素的含量分別為7.7、3.3和2.4 mg/g,分別是對(duì)照組的1.11、1.18和1.04倍,當(dāng)MEA質(zhì)量濃度為300 mg/L時(shí),葉綠素a、葉綠素b和類(lèi)胡蘿卜素的含量分別比對(duì)照組下降了18.8%、15.7%和30.8%。

    圖4 不同質(zhì)量濃度MEA對(duì)小球藻色素質(zhì)量濃度的影響Fig. 4 Effects of different mass concentrations of MEA on pigment content of Chlorella sp.

    不同質(zhì)量濃度的MEA對(duì)小球藻光合特性的影響如圖5所示,在培養(yǎng)的第0天(通入CO2后),Y(Ⅱ)和qP趨近于0,F(xiàn)v/Fm值為0.50左右,低于正常值0.65,而NPQ值較高。這是因?yàn)楦邼舛菴O2對(duì)小球藻的生長(zhǎng)有抑制作用。小球藻通過(guò)提高熱耗散保護(hù)處于脅迫下的光合作用系統(tǒng),經(jīng)過(guò)2 d的延滯期后,其光合活性逐漸恢復(fù)。第4天小球藻的葉綠素?zé)晒鈪?shù)和ETR達(dá)到最高,隨后逐漸降低。就整體趨勢(shì)而言,添加50和100 mg/L MEA的小球藻光合活性要高于對(duì)照組,而添加200和300 mg/L MEA的小球藻葉綠素?zé)晒鈪?shù)低于對(duì)照組。MEA質(zhì)量濃度為50 mg/L時(shí),小球藻的光合活性最強(qiáng),固碳的電子傳遞速率最快,F(xiàn)v/Fm、Y(Ⅱ)、qP和ETR值達(dá)到最大,說(shuō)明適量質(zhì)量濃度的MEA可以提高小球藻的光合活性。

    圖5 不同質(zhì)量濃度MEA對(duì)小球藻葉綠素?zé)晒鈪?shù)的影響Fig. 5 Effects of different mass concentrations of MEA on chlorophyll fluorescence parameters of Chlorella sp.

    3 討論

    3.1 MEA對(duì)藻液pH的影響

    pH是影響微藻生長(zhǎng)和CO2生物固定的重要生理參數(shù),這是因?yàn)閜H決定了培養(yǎng)基中用于微藻生長(zhǎng)碳源的形態(tài)比例分布和濃度[12-13],其中和 CO2是微藻代謝優(yōu)先吸收的碳源[14]。小球藻培養(yǎng)的理想pH接近中性(7.00~8.00),而本試驗(yàn)對(duì)照組的pH值在5.20左右時(shí)(圖1),小球藻依然可以正常生長(zhǎng)。從大同電廠附近水域分離得到的小球藻Chlorellasp.比其他小球藻更耐高濃度CO2,即使在酸性更高的培養(yǎng)基中也能保持生長(zhǎng),這可能是因?yàn)樵撛逯晔菑呐欧潘嵝詮U氣廢水的電廠附近分離出來(lái)的,生境的特殊性決定了其對(duì)高濃度CO2和酸性環(huán)境具有更強(qiáng)的適應(yīng)性。pH還會(huì)調(diào)控培養(yǎng)基中營(yíng)養(yǎng)元素(如磷酸鹽、鐵和銨等)的形態(tài),這同樣是影響微藻生長(zhǎng)代謝的原因之一[15-16]。圖1的pH變化趨勢(shì)表明,添加50 mg/L MEA的處理組pH值維持在5.7左右,因此,添加適當(dāng)質(zhì)量濃度的MEA可使培養(yǎng)液具有pH緩沖能力,使培養(yǎng)液pH維持在適宜微藻生長(zhǎng)的范圍內(nèi),為微藻創(chuàng)造有利的生長(zhǎng)環(huán)境。

    3.2 MEA對(duì)小球藻生長(zhǎng)、固碳效應(yīng)及油脂積累的影響

    醇胺類(lèi)化合物作為一類(lèi)具有優(yōu)異的吸收活性和高效的CO2脫除效率的化學(xué)吸收劑頗受關(guān)注[17],在微藻固碳領(lǐng)域也被廣泛應(yīng)用。王兆印等[18]和Cardias等[19]研究發(fā)現(xiàn),添加適當(dāng)濃度的二乙醇胺(diethanolamine,DEA)可以提高培養(yǎng)液的氣液傳質(zhì)系數(shù),增大CO2氣液傳質(zhì)速率,從而使藻細(xì)胞生物量和CO2固定效率較未添加DEA的對(duì)照組提高25.6%和41.2%。孫中亮[20]研究了MEA、DEA、三乙醇胺(triethanolamine,TEA)、N-甲基二乙醇胺(N-methyldiethanolamine,MDEA)對(duì)二形柵藻(Scenedesmus dimorphus)生長(zhǎng)的影響,結(jié)果表明,添加MEA、DEA、TEA、MDEA與對(duì)照(0.62 d-1)相比,生長(zhǎng)速率均有提高,分別為0.65、0.63、0.66和0.65 d-1。與其他醇胺類(lèi)吸收劑相比,MEA與培養(yǎng)基中的CO2發(fā)生反應(yīng)更有利于碳酸氫鹽離子的穩(wěn)定生成[21],從而進(jìn)一步促進(jìn)微藻的生長(zhǎng)。本研究結(jié)果顯示,添加適宜質(zhì)量濃度的MEA對(duì)小球藻的生長(zhǎng)有促進(jìn)作用,且CO2固定效率和CO2利用率均得到顯著的提升。但高質(zhì)量濃度的MEA對(duì)小球藻的生長(zhǎng)卻產(chǎn)生抑制作用(圖2),這與Rosa等[8]的研究結(jié)果相似。其研究結(jié)果顯示:添加100和200 mg/L的MEA對(duì)ChlorellafuscaLEB 111生長(zhǎng)有抑制作用 ;在300 mg/L MEA的條件下,生物量質(zhì)量濃度在培養(yǎng)1 d后就開(kāi)始下降。這可能是由于培養(yǎng)體系中高質(zhì)量濃度MEA會(huì)與CO2反應(yīng)生成過(guò)量的有毒中間體氨基甲酸酯及MEA本身的胺腐蝕效應(yīng)所致,其反應(yīng)原理如下所示。反應(yīng)(1)是MEA與CO2在物質(zhì)的量的比為2∶1的條件下反應(yīng)生成氨基甲酸酯的步驟,反應(yīng)(2)是氨基甲酸酯中間體的水解步驟,生成碳酸氫鹽離子

    碳向微藻生物質(zhì)組分的轉(zhuǎn)化取決于培養(yǎng)環(huán)境和條件,如CO2濃度、溫度、光照強(qiáng)度和營(yíng)養(yǎng)元素濃度等。通常情況下,微藻在營(yíng)養(yǎng)缺乏等不利環(huán)境條件脅迫下,其細(xì)胞傾向于將具有更高能量密度的脂質(zhì)作為一種長(zhǎng)期的能量?jī)?chǔ)存形式[23-24]。本研究結(jié)果顯示,在 CO2體積分?jǐn)?shù)為20%的條件下,添加50和100 mg/L的MEA時(shí),小球藻的油脂含量都要高于對(duì)照,高碳環(huán)境和化學(xué)吸收劑的聯(lián)合作用可能會(huì)對(duì)微藻培養(yǎng)體系造成一定程度的脅迫,從而改變微藻細(xì)胞內(nèi)油脂代謝途徑,使其積累更多的油脂。有研究表明:在高碳條件脅迫下,參與合成油脂的丙酮酸脫氫酶(pyruvate dehydrogenase complex,PDHC)和乙酰輔酶A羧化酶(acetyl coA carboxylase,ACC)相關(guān)的基因表達(dá)均有所上調(diào);中間產(chǎn)物丙酮酸鹽能更多地轉(zhuǎn)移到丙二酰輔酶A和丙二酰載體蛋白上,與短碳鏈反應(yīng)生成長(zhǎng)碳鏈,強(qiáng)化了脂肪酸合成途徑,從而使微藻中油脂含量增加[25]。Zhu等[26]研究了在15% CO2下聚乙二醇200(polyethylene glycol 200,PEG200)對(duì)微擬球藻積累油脂的影響,結(jié)果表明,1 mmol/L PEG200濃度下脂質(zhì)產(chǎn)量達(dá)到最大值0.44 g/L。PEG200的加入會(huì)提高微藻生長(zhǎng)前期的比生長(zhǎng)速率,導(dǎo)致培養(yǎng)液氮缺乏,氮饑餓脅迫環(huán)境會(huì)促進(jìn)微藻細(xì)胞油脂的積累。

    3.3 MEA對(duì)小球藻色素積累和光合特性的影響

    微藻培養(yǎng)體系中CO2濃度對(duì)微藻生長(zhǎng)代謝具有重要的影響[27],適當(dāng)?shù)腃O2濃度有利于微藻對(duì)培養(yǎng)體系中無(wú)機(jī)碳的光合同化,從而促進(jìn)微藻生長(zhǎng)和代謝產(chǎn)物的積累,而高濃度的CO2會(huì)抑制小球藻的光合作用。CO2的體積分?jǐn)?shù)超過(guò)10%對(duì)大部分的微藻生長(zhǎng)具有抑制作用[28],這可能是由高濃度CO2導(dǎo)致細(xì)胞質(zhì)酸化造成的。而細(xì)胞內(nèi)的酸化可能是由碳酸酐酶(carbonic anhydrase,CA)失活導(dǎo)致的,CA是微藻CO2濃縮機(jī)制(CO2-concentrating mechanism,CCM)的關(guān)鍵限速酶,具有維持酸堿平衡、CO2及碳酸鹽轉(zhuǎn)運(yùn)等功能[29]。在高濃度CO2條件下,CA活性受到抑制[30],胞內(nèi)酸堿度失衡,進(jìn)而導(dǎo)致卡爾文循環(huán)中碳同化速率降低。

    在微藻生長(zhǎng)過(guò)程中,藻體顏色的變化是其生理變化的宏觀體現(xiàn)。為了探究在高碳環(huán)境下不同MEA質(zhì)量濃度對(duì)小球藻光合作用的影響,本研究首先對(duì)小球藻色素積累進(jìn)行了測(cè)定。色素是植物光合作用的基礎(chǔ),其含量的高低可反映植物光合功能的強(qiáng)弱[31-32]。微藻細(xì)胞體內(nèi)的色素種類(lèi)可依據(jù)在光合作用過(guò)程中的作用分為捕光色素和光保護(hù)色素。葉綠素a、葉綠素b為捕光色素,可以將吸收的光能有效地傳遞到相關(guān)的反應(yīng)中心轉(zhuǎn)化為化學(xué)能,而類(lèi)胡蘿卜素作為光保護(hù)色素可將剩余能量吸收,避免膜體受傷,從而達(dá)到光保護(hù)作用,通過(guò)光合作用產(chǎn)生的色素含量的多少可以判斷藻類(lèi)的生理狀態(tài)[33-34]。本研究結(jié)果表明,不同質(zhì)量濃度的MEA造成了小球藻色素含量產(chǎn)生較大差異,在50和100 mg/L MEA條件下,色素含量較無(wú)MEA處理組有所提高,而200和300 mg/L MEA的添加卻抑制了小球藻色素的積累。

    為了進(jìn)一步探究在高濃度CO2條件下MEA對(duì)小球藻光合作用的影響,我們對(duì)其葉綠素?zé)晒鈪?shù)進(jìn)行了測(cè)定。葉綠素?zé)晒夥治黾夹g(shù)是分析植物光合活性及外界因素對(duì)其產(chǎn)生影響的鑒定技術(shù)[35],能在一定程度上反應(yīng)藻細(xì)胞的光合活性和固碳電子傳遞效率狀況。常見(jiàn)的葉綠素?zé)晒鈪?shù)有Fv/Fm、Y(Ⅱ)、qP、NPQ和ETR等。在正常條件下,F(xiàn)v/Fm值變化幅度較小,且不受物種和生長(zhǎng)條件的影響,受到脅迫時(shí)該值顯著降低[36]。本研究發(fā)現(xiàn),MEA的添加會(huì)影響微藻的光合特性,添加50和100 mg/L MEA可以緩解高濃度CO2對(duì)微藻光合造成的抑制作用。但隨著MEA質(zhì)量濃度的進(jìn)一步升高,微藻的光合活性卻有所下降,F(xiàn)v/Fm、qP、Y(Ⅱ)、ETR值逐漸降低,表明高質(zhì)量濃度的MEA使光系統(tǒng)的開(kāi)放程度和電子傳遞效率降低,吸收、捕獲及傳遞電子的能力減弱。MEA與CO2反應(yīng)生成的氨基甲酸酯是一類(lèi)基于受體結(jié)構(gòu)的光合作用光系統(tǒng)Ⅱ抑制劑,其作用靶標(biāo)是質(zhì)體醌還原前的PSⅡ與PSⅠ之間QA與PQ間的電子傳遞體β蛋白,氨基甲酸酯與其結(jié)合后會(huì)改變蛋白質(zhì)的氨基酸結(jié)構(gòu),抑制電子從束縛性質(zhì)體醌QA向質(zhì)體醌QB傳遞,影響光合電子傳遞,從而影響藻細(xì)胞光合活性[37-38]。而NPQ值逐漸增大,微藻吸收的能量一部分用于光合作用,一部分多余的能量以熱能的形式耗散掉[39],此現(xiàn)象利于保護(hù)光合結(jié)構(gòu),使得藻細(xì)胞對(duì)脅迫環(huán)境做出了一定的自我保護(hù),增加對(duì)脅迫環(huán)境的適應(yīng)性[40]。

    利用微藻固定并轉(zhuǎn)化CO2是控制煙氣碳排放和緩解溫室效應(yīng)的一項(xiàng)非常有前景的技術(shù)。選育可耐受高濃度CO2的藻種是實(shí)現(xiàn)微藻固碳產(chǎn)業(yè)的首要前提,在此基礎(chǔ)上,進(jìn)一步提高微藻固碳效率和高效積累微藻碳代謝產(chǎn)物是推動(dòng)微藻固碳聯(lián)產(chǎn)高附加值產(chǎn)品產(chǎn)業(yè)化應(yīng)用的關(guān)鍵。本試驗(yàn)以在火力發(fā)電電廠附件自然水域中篩選獲得的一株可耐高濃度CO2的小球藻(Chlorellasp.)為研究對(duì)象,研究了添加不同質(zhì)量濃度化學(xué)吸收劑MEA對(duì)小球藻生長(zhǎng)、生理和油脂積累的影響。研究結(jié)果表明,添加MEA可以緩解因高濃度CO2造成的培養(yǎng)基酸化現(xiàn)象,在50 mg/L的MEA處理下,小球藻生物量、油脂含量及產(chǎn)率、固碳效率均顯著升高。因此,基于化學(xué)吸收劑的微藻生長(zhǎng)代謝及固碳性能強(qiáng)化策略是同時(shí)實(shí)現(xiàn)生物能源生產(chǎn)與廢氣資源化利用的有效途徑。但化學(xué)吸收劑在強(qiáng)化微藻固碳方面的具體作用機(jī)制,如化學(xué)吸收劑強(qiáng)化作用下微藻細(xì)胞內(nèi)部固碳代謝途徑變化、微藻固碳動(dòng)力學(xué)研究及不同吸收劑間的協(xié)同作用機(jī)理等尚不清楚,在今后的工作中應(yīng)針對(duì)這些問(wèn)題進(jìn)行多角度逐層揭示。

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