鐘文華,劉 云,溫俊威,吳 超,洪 云,王 林,李 曙
(1.皖南醫(yī)學(xué)院 病理生理學(xué)教研室,安徽 蕪湖 241002;2.皖南醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院 弋磯山醫(yī)院 超聲醫(yī)學(xué)科,安徽 蕪湖 241001)
當(dāng)缺血的組織血液供應(yīng)恢復(fù),產(chǎn)生大量的自由基等所造成的損傷稱為缺血再灌注損傷(ischemical reperfusion injury,IRI)[1-2]。機(jī)體中血管內(nèi)皮細(xì)胞是IRI的前沿細(xì)胞,體外缺氧/復(fù)氧(hypoxia/reoxygenation,H/R)損傷誘導(dǎo)人臍靜脈血管內(nèi)皮細(xì)胞(human umbilical rein endothelial cells,HUVECs)損傷模擬體內(nèi)IRI。本研究擬采用自制的簡(jiǎn)易密封盒構(gòu)建缺氧環(huán)境,建立HUVECs H/R損傷模型,并探討該建模方法的可行性與可重復(fù)性[3]。
1.1 細(xì)胞系 HUVECs細(xì)胞系,購(gòu)于上海酶研生物科技有限公司。
1.2 試劑 FPS、DMEM培養(yǎng)基(含1.0、4.5 g/L D-Glucose)購(gòu)于Gibco公司(美國(guó));蜂蠟購(gòu)于Solarbio公司(中國(guó));密封盒購(gòu)于安扣旗艦店(中國(guó));Hoechest 33258試劑、QuickBlockTMWestern封閉液和DCFH-DA試劑盒購(gòu)于碧云天(中國(guó))。
1.3 儀器 二氧化碳培養(yǎng)箱(THERMO,美國(guó));熒光倒置顯微鏡(Olympus IX51,日本);全自動(dòng)酶標(biāo)儀(瑞士);測(cè)氧儀CY-12C(佳長(zhǎng)電子科技,中國(guó))。
1.4 H/R模型建立及分組 參照文獻(xiàn)[4]HUVECs消化,75%細(xì)胞變圓,滴加完全培養(yǎng)基,吹打混勻,種于6孔板內(nèi),當(dāng)細(xì)胞長(zhǎng)滿約80%后,實(shí)驗(yàn)組更換低糖無血清培養(yǎng)基,放到自制的密封盒里,再將密封盒放到CO2培養(yǎng)箱里,根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求分別缺氧3、6、9、12 h。缺氧處理結(jié)束后,洗凈,滴加完全培養(yǎng)基,放于培養(yǎng)箱培養(yǎng)2 h。對(duì)照組(Control組)細(xì)胞正常培養(yǎng)、換液,不進(jìn)行其他處理。
本實(shí)驗(yàn)缺氧環(huán)境使用的是奶粉盒、氧氣檢測(cè)儀共同構(gòu)建的,奶粉盒本身具有較好的密封性。在盒子的對(duì)立側(cè)上下鉆孔,用硅膠將輸液皮條管道與孔連接緊密,把實(shí)驗(yàn)組的6孔板放進(jìn)奶粉盒內(nèi),覆蓋一層保鮮膜,扣上蓋子,蓋子與盒身四周處涂抹蜂蠟,待干。一側(cè)管道充入94%N2、5%CO2、1%O2混合氣體,另一側(cè)管道接測(cè)氧儀探測(cè)自制密封盒內(nèi)是否達(dá)到缺氧,當(dāng)測(cè)氧儀指示<1%,關(guān)閉輸液管道調(diào)節(jié)器,再折疊輸液管道用鑷子夾閉,則自制的密封盒處于無氣體對(duì)流的狀態(tài)即缺氧狀態(tài)。
1.5 觀察及測(cè)定指標(biāo)
1.5.1 血管內(nèi)皮細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察 顯微鏡觀察各組的細(xì)胞形態(tài)及數(shù)目改變。
1.5.2 CCK-8法測(cè)定細(xì)胞活性 HUVECs細(xì)胞分組及培養(yǎng)同前,加入CCK-8試劑,放于原培養(yǎng)箱內(nèi)孵育2 h,酶標(biāo)儀測(cè)定450 nm吸光度(A值)。
1.5.3 Hoechst 33258法觀察細(xì)胞核形態(tài)變化 HUVECs細(xì)胞分組及培養(yǎng)同前,加入甲醛和冰醋酸1 mL,固定15 min,洗滌,每孔加Hoechest 33258 1 mL,染色5 min后,熒光顯微鏡下觀察。
1.5.4 DCFH-DA對(duì)活性氧(ROS)進(jìn)行染色 HUVECs細(xì)胞分組及培養(yǎng)同前,每個(gè)孔加DCFH-DA混合液1 mL,孵育20 min,洗凈。熒光顯微鏡觀察。
1.5.5 Western blot檢測(cè)HIF-1α的表達(dá)水平 提取蛋白,電泳、轉(zhuǎn)膜、快速封閉、洗膜,滴加缺氧誘導(dǎo)因子-1α(hypoxia inducible factor-1α,HIF-1α)、β-actin蛋白4℃孵育過夜,滴加二抗溶液常溫孵育1 h,曝光。
2.1 血管內(nèi)皮細(xì)胞形態(tài)學(xué)變化 Control組細(xì)胞貼壁,呈梭形或橢圓形,細(xì)胞密度高。而實(shí)驗(yàn)組隨著缺氧時(shí)間的延長(zhǎng),黏附瓶底的細(xì)胞減少,細(xì)胞密度降低,細(xì)胞間隙增大,鏡下可見細(xì)胞碎片和脫落漂浮的細(xì)胞,見圖1。
A.Control組;B.3 h/2 h組;C.6 h/2 h組;D.9 h/2 h組;E.12 h/2 h組(白色箭頭表示貼壁細(xì)胞,黑色箭頭表示漂浮細(xì)胞);×40;標(biāo)尺100 μm。
2.2 CCK-8法細(xì)胞活性水平檢測(cè)結(jié)果 結(jié)果顯示,不同H/R時(shí)間組細(xì)胞活性均低于Control組(P<0.05)。9 h/2 h組和12 h/2 h組細(xì)胞活性低于3 h/2 h組和6 h/2 h組(P<0.05),而6 h/2 h組與3 h/2 h組、12 h/2 h組與9 h/2 h組細(xì)胞活性比較差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見表1。
表1 各組細(xì)胞活性
2.3 Hoechst 33258核染色法觀察細(xì)胞形態(tài)變化情況 Control組HUVECs細(xì)胞核形態(tài)完整,細(xì)胞核內(nèi)染色質(zhì)均一,各實(shí)驗(yàn)組隨著缺氧時(shí)間的延長(zhǎng),細(xì)胞核邊集化、碎裂馬蹄狀逐漸增多,見圖2。
A.Control組;B.3 h/2 h組;C.6 h/2 h組;D.9 h/2 h組;E.12 h/2 h組(白色箭頭表示損傷細(xì)胞核);×40;標(biāo)尺100 μm。
2.4 ROS含量的變化 A組HUVECs無綠色熒光,B、C、D和E組細(xì)胞綠色熒光強(qiáng)度增強(qiáng)。不同H/R時(shí)間組ROS均低于Control組(P<0.05)。9 h/2 h組和12 h/2 h組ROS低于3 h/2 h組和6 h/2 h組(P<0.05),而6 h/2 h組與3 h/2 h組、12 h/2 h組與9 h/2 h組ROS比較差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見圖3、表2。
A.Control組;B.3 h/2 h組;C.6 h/2 h組;D.9 h/2 h組;E.12 h/2 h組;×100;標(biāo)尺100 μm。
表2 各組血管內(nèi)皮細(xì)胞熒光強(qiáng)度
2.5 HIF-1α蛋白表達(dá)水平 不同H/R時(shí)間組HIF-1α蛋白表達(dá)均高于Control組(P<0.05)。9 h/2 h和12 h/2 h組HIF-1α蛋白表達(dá)水平高于3 h/2 h組和6 h/2 h組(P<0.05),而6 h/2 h組與3 h/2 h組、12 h/2 h組與9 h/2 h組HIF-1α蛋白表達(dá)比較差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見圖4、表3。
圖4 各組血管內(nèi)皮細(xì)胞HIF-1α蛋白的表達(dá)情況
表3 各組血管內(nèi)皮細(xì)胞HIF-1α表達(dá)
心梗和腦梗是心腦血管系統(tǒng)疾病中常見且嚴(yán)重的疾病[5],遠(yuǎn)超于其他疾病而高居榜首[6-7]。臨床上最常見的治療方法是使用藥物進(jìn)行溶栓、抗凝,以盡快恢復(fù)血流,但在恢復(fù)血流的同時(shí)也會(huì)帶來嚴(yán)重的IRI,有可能導(dǎo)致病情的進(jìn)一步惡化[8-9],產(chǎn)生不可逆損傷。所以,深入了解和研究IRI機(jī)制對(duì)心、腦血管疾病患者康復(fù)具有重要臨床價(jià)值。體外誘導(dǎo)細(xì)胞H/R可作為探究心、腦血管IRI的模型[10]。
目前國(guó)內(nèi)外H/R模型主要有物理方法和化學(xué)方法[11]。最常見的是物理模型三氣箱,但是該儀器昂貴、難普及,有的實(shí)驗(yàn)室雖然具備該儀器,但后期使用時(shí)需要不斷充入氣體,成本投入很大。化學(xué)模型常用的有連二亞硫酸鈉[12]、氯化鈷[13]、氰化物[14]等,這些藥品都是劇毒的,對(duì)細(xì)胞本身有影響,并且對(duì)研究人員身體健康有危害。所以尋求一種簡(jiǎn)易、低成本、易操作、安全的建模方法是非常有意義和必要的。本研究利用奶粉盒、蜂蠟建立密封盒,然后通入94%N2、5%CO2、1%O2混合氣體,測(cè)氧儀測(cè)的氧濃度<1%,即構(gòu)建缺氧環(huán)境。
現(xiàn)有的模型建立沒有統(tǒng)一的標(biāo)準(zhǔn),主要的衡量水平是引起穩(wěn)定的細(xì)胞損傷,例如細(xì)胞結(jié)構(gòu)、細(xì)胞凋亡率等[15]。缺氧時(shí)間各不同[16-17],本研究中發(fā)現(xiàn)缺氧12 h以后,細(xì)胞大量變圓,漂浮,易造成較大誤差。所以本研究設(shè)置缺氧時(shí)間組別均在12 h之內(nèi)。
有研究表明ROS機(jī)制是造成H/R損傷的重要標(biāo)志,DCFH-DA被細(xì)胞內(nèi)產(chǎn)生的ROS氧化生成DCF,呈現(xiàn)綠色熒光。本研究結(jié)果表明隨著缺氧的延長(zhǎng),綠色的熒光顯著增加,說明自制密封盒法創(chuàng)建的缺氧環(huán)境可以誘導(dǎo)細(xì)胞內(nèi)釋放大量的ROS,模擬體內(nèi)IRI過程。同時(shí)隨著缺氧時(shí)間的延長(zhǎng),貼壁的細(xì)胞減少,CCK-8檢測(cè)各組細(xì)胞活性,實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞活性降低顯著。研究表明缺氧環(huán)境下,最常見的一種氧敏感的轉(zhuǎn)錄因子——HIF-1α就會(huì)被激活,能夠使細(xì)胞適應(yīng)短暫的缺氧[18]。一定缺氧時(shí)間范圍內(nèi),HIF-1α與缺氧時(shí)間呈正比例關(guān)系。值得注意的是,組織缺血造成細(xì)胞損傷包括氧氣的缺乏和營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的阻斷,所以氧糖剝奪時(shí)培養(yǎng)液換成無糖無血清培養(yǎng)基,復(fù)氧時(shí)換成完全培養(yǎng)基,這樣才更貼近臨床上IRI狀態(tài)。
本研究結(jié)果證明自制的簡(jiǎn)易密封盒能夠構(gòu)建有效的細(xì)胞H/R模型,為臨床研究IRI的機(jī)制提供輔助作用。