鄭迎春,汪 蘭
(廣東藥科大學生命科學與生物制藥學院,廣東廣州 510006)
據(jù)2020 年全球世界癌癥中心數(shù)據(jù)統(tǒng)計顯示,乳腺癌在女性腫瘤中的發(fā)病率居于首位,乳腺癌發(fā)病率一度超過肺癌,成為全球最常見的腫瘤[1]。隨著臨床診斷和治療方法的不斷發(fā)展,早期乳腺癌的治療效果良好,但三陰性乳腺癌(triple-negative breast cancer,TNBC)因易轉(zhuǎn)移和易復發(fā)而難以徹底治愈。探索TNBC的細胞特性有助于為其臨床治療提供理論依據(jù)[2]。
TNBC 占浸潤性乳腺癌的10%~20%,是雌激素受體、孕激素受體和人類表皮生長因子受體2 均不表達的乳腺癌[3]。TNBC 生長迅速且侵襲性較強,易于復發(fā)使得預后較差[4]。目前,有大量針對特定受體或TNBC 靶向治療的臨床試驗正在進行中,例如,聚腺苷二磷酸核糖聚合酶[poly(ADP-ribose)polymerase,PARP]抑制靶向治療的研究發(fā)現(xiàn),PARP 抑制劑對BRCA1/2 缺陷型腫瘤具有顯著的抗腫瘤作用,對BRCA1 突變型腫瘤的抑制作用比無此類突變腫瘤的抗腫瘤效果顯著[5]。雌激素受體α36 在雌激素受體陰性乳腺癌細胞的細胞質(zhì)和細胞膜中表達,參與調(diào)控乳腺癌細胞的惡性進程,存在正反饋環(huán)路,作為一個TNBC 治療的潛在靶點正被深入研究[6]。同時,免疫治療中的PD-L1和CAR-T療法在TNBC 的臨床治療中也已由實驗室研究邁向臨床[7]。綜上可知,找到TNBC的關鍵調(diào)控因子對于乳腺癌的靶向治療和個性化治療至關重要。
高爾基體是細胞內(nèi)一個重要的膜性結構,執(zhí)行多種重要的生物學功能[8]。?;o酶A 結合結構域蛋白3(acyl-CoA binding domain containing protein 3,ACBD3),又稱GCP60、GOCAP1、GOLPH1 和PAP7,作為一個高爾基體銜接蛋白參與高爾基體結構和功能的維持[9]。研究發(fā)現(xiàn),ACBD3 可參與類固醇代謝、細胞凋亡、鐵平衡、胚胎發(fā)育及細胞周期調(diào)控[10-11]。高爾基體蛋白可用于臨床篩查及預后判斷,如膽管上皮細胞高爾基體蛋白73 可用于協(xié)助診斷肝纖維化和肝硬化[12];ACBD3 在非小細胞肺癌中表達上調(diào)預示較差的治療效果。但ACBD3 在TNBC 增殖中的功能及機制尚不清楚。
磷脂酰肌醇3-激酶(phosphoinositide 3-kinase,PI3K)/蛋白激酶B(protein kinase B,PKB/AKT)信號通路調(diào)控細胞增殖及存活,在腫瘤的發(fā)生、發(fā)展過程中至關重要[13-14]。叉頭框蛋白O(forkhead box O,F(xiàn)OXO)轉(zhuǎn)錄因子受PI3K-AKT 信號通路負調(diào)控,經(jīng)AKT 磷酸化后使其活性下降,在細胞增殖中起到負性調(diào)控作用[15]。然而,ACBD3 與增殖關鍵信號通路AKT 的關系尚無研究報道。本研究首次探討了ACBD3通過活化AKT進而調(diào)控TNBC細胞的增殖。
人乳腺癌細胞系MCF-7、ZR-75-30、SK-BR-3、BT549 和MDA-MB-231 及永生化正常乳腺上皮細胞系MCF-10A均為中山大學熱帶病防治研究教育部重點實驗室提供[16]。
DMEM 粉末、胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)和無血清角質(zhì)細胞培養(yǎng)基(keratinocyte serum-free medium,KSFM)均購自Gibco;PCR 及逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(Vazyme);鼠抗人ACBD3 抗體(sc-101277)購自Santa Cruz;鼠抗人GAPDH 抗體(ab8245)和兔抗人p-FOXO4Ser193抗體(ab174849)購自Abcam;MTT 粉末、ECL 發(fā)光液粉末和Hoechst 33342 細胞核染料(Sigma);兔抗人p-AKTSer473抗體(9271S)、p-AKTThr308抗體(4056S)、AKT 抗體(9272S)、FOXO4 抗體(9472S)、p-FOXO3aSer253抗體(9466S)、FOXO3a 抗體(9466S)、p-FOXO1Ser256抗體(9461S)、p-GSK3β(9322S)抗體和GSK3β 抗體(12456S),鼠抗人FOXO1 抗體(14952S)均購自Cell Signaling Technology;細胞周期檢測試劑盒(RiboBio);BCA 蛋白定量試劑盒(Thermo Fisher);ACBD3引物序列由金唯智生物科技有限公司合成。
3.1 細胞培養(yǎng) MCF-7、ZR-75-30、SK-BR-3、BT-549 和MDA-MB-231 細胞均使用含10% FBS 的完全培養(yǎng)基進行培養(yǎng),MCF-10A 細胞使用KSFM 培養(yǎng)基進行培養(yǎng),將所有細胞置于37 ℃、5% CO2的培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng)。
3.2 qPCR 和Western blot 驗證乳腺癌細胞中ACBD3 的表達 胰酶消化接種于6 孔板中的MDAMB-231、BT-549 及MCF-10A 細胞,分別提取各組細胞的RNA 及蛋白,使用qPCR 及Western blot 法分別檢測ACBD3 在各組細胞中的mRNA 和蛋白表達。ACBD3 上游引物序列為5'-ACAGTATCCAGGGAACTACGAA-3',下游引物序列為5'-GTTTCTGTAATGCTGCCGTTG-3';內(nèi)參照GAPDH 的上游引物序列為5'-GGAGCGAGATCCCTCCAAAAT-3',下游引 物序列為5'-GGCTGTTGTCATACTTCTCATGG-3'。
3.3 構建沉默ACBD3的TNBC 細胞系模型 選取TNBC 細胞系MDA-MB-231 和BT-549,分為2 組:(1)對照(RNAi-Vector)組:轉(zhuǎn)染RNAi-Vector 質(zhì)粒,轉(zhuǎn)染濃度為1 g/L,構建為MDA-MB-231-RNAi-Vector 細胞和BT-549-RNAi-Vector細胞;(2)ACBD3沉默(ACBD3-RNAi)組:轉(zhuǎn)染ACBD3-RNAi 質(zhì)粒,轉(zhuǎn)染濃度為1 g/L,構建為MDA-MB-231-ACBD3-RNAi 細胞和BT-549-ACBD3-RNAi 細胞。ACBD3-RNAi 的序列為5'-AUUGAUGGCUGCCAGCAUACACCUC-3',所使用質(zhì)粒載體為pSUPER.retro.puro(Oligoengine)[17]。本文中所使用的載體制備及實驗技術均按Oligoengine 公司pSUPER載體實驗指南操作。
3.4 MTT 法檢測ACBD3 對乳腺癌細胞活力的影響 取對數(shù)生長期的MDA-MB-231和BT-549細胞及其構建成功的ACBD3-RNAi 細胞,分別以每孔2×103個接種于96孔板中,每組設置3個復孔,分別培養(yǎng)0、24、48、72 和96 h 后,每孔加入18μL MTT 溶液(濃度為5 g/L),放置于37 ℃孵育4~6 h,棄去上清,每孔加入160 μL 的DMSO 溶液,避光震蕩使孔板底部藍紫色結晶充分溶解,490 nm 波長處檢測吸光度,使用GraphPad Prism繪制細胞生長曲線。
3.5 平板集落形成實驗 取MDA-MB-231 和BT-549 細胞及其構建成功的ACBD3-RNAi 細胞,分別以每孔500 個接種于12 孔板中,置于37 ℃孵箱培養(yǎng)14 d,棄去上清,每孔加入500μL甲醇固定30 min,使用PBS 清洗2 次,加入1%的結晶紫溶液染色10 min,回收結晶紫溶液,并使用流動水沖洗孔板,直至清水無色后,室溫晾干孔板,進行集落數(shù)目統(tǒng)計。
3.6 EdU 染色檢測ACBD3 對乳腺癌細胞增殖的影響 取MDA-MB-231 和BT-549 細胞及其ACBD3-RNAi細胞,分別以每孔2×104個接種于12孔板中,細胞放置于37 ℃孵箱培養(yǎng)24 h,每孔加入200μL EdU標記物孵育2 h;使用PBS 清洗3 次,加入250 μL 的4%多聚甲醛固定30 min;使用PBS 清洗2 次,每孔加入300 μL 的5% Triton X-100,孵育10 min;使用PBS清洗2 次,加入250μL 的Apollo 熒光染料,避光孵育30 min;每孔加入250μL 的5%Triton X-100,孵育10 min,重復2 次;使用PBS 清洗1 次,每孔加入250 μL的Hoechst 33342染色液孵育30 min,使用PBS清洗2次;晾干細胞爬片,使用防淬滅封片劑進行封片,熒光顯微鏡20倍鏡進行拍照。
3.7 流式細胞術檢測細胞周期分布 將MDA-MB-231 和BT-549 細胞及其ACBD3-RNAi 細胞以每孔5×105個接種于6 孔板內(nèi),置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)過夜,次日加入基礎培養(yǎng)基同步化處理24 h 后換為含有10% FBS 的完全培養(yǎng)基處理24 h。使用不含EDTA 的胰酶消化細胞,每組細胞內(nèi)加入1 mL 提前預冷的70%乙醇吹打混勻于4 ℃固定過夜。次日,使用PBS 清洗3 次,加入500 μL 染色液(RNase A 與PI 體積比為1∶9),重懸細胞并使用濾網(wǎng)過濾至流式管中染色30 min,激發(fā)波長488 nm 處上機檢測各個細胞周期的變化。
3.8 構建小鼠荷瘤模型 皮下接種乳腺癌細胞至小鼠乳房墊,構建小鼠異種種植模型,每只接種2×106個MDA-MB-231 細胞及其ACDB3-RNAi 細胞或1×107個BT-549 細胞及其ACDB3-RNAi 細胞,注射體積均為100μL。實驗終點結束后對小鼠進行脫頸處死,并剝離小鼠腫瘤進行拍照、稱重及數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析。
采用GraphPad Prism 5 軟件進行統(tǒng)計分析,所有數(shù)據(jù)結果以均數(shù)±標準差(mean±SD)表示。兩組間的比較在正態(tài)性檢驗之后用獨立樣本t檢驗,多組間比較采用單因素方差分析。以P<0.05為差異具有統(tǒng)計學意義?;蚣患治觯╣ene set enrichment analysis,GSEA;Version 4.0.3;https://www.gsea-msigdb.org/gsea/index.jsp)。
本課題組先前研究通過TCGA(The Cancer Genome Atlas)公共數(shù)據(jù)庫分析ACBD3在乳腺癌組織及正常乳腺上皮組織中的數(shù)據(jù),發(fā)現(xiàn)ACBD3 在乳腺癌組織中的表達水平明顯高于正常乳腺上皮組織[18]。本實驗中,我們對乳腺癌病例中的TNBC和其他類型乳腺癌中的ACBD3 進行了分組對比分析。我們選取正常乳腺上皮細胞(MCF-10A)和5 株乳腺癌細胞系(MCF-7、ZR-75-30、SK-BR-3、BT-549 和MDA-MB-231)并收集其RNA 及蛋白,利用qPCR 和Western blot 法分別檢測ACBD3 的mRNA 及蛋白表達水平。實驗結果表明,在所有乳腺癌細胞系中ACBD3 的mRNA 及蛋白表達水平均顯著高于正常乳腺上皮細胞(P<0.05 或P<0.01),其中TNBC 細胞系MDA-MB-231及BT-549中ACBD3的表達水平比其他類型的乳腺癌細胞更高(P<0.01),見圖1。
通過qPCR 和Western blot 實驗驗證TNBC 細胞系MDA-MB-231 和BT-549 及其ACBD3-RNAi 細胞中ACBD3 的表達水平(P<0.01),見圖2A、B。MTT 實驗結果證明,ACBD3 能夠顯著促進TNBC 細胞系MDA-MB-231 和BT-549 的生長速度,與RNAi-Vector組相比,敲減內(nèi)源性ACBD3的表達能夠顯著抑制TNBC 細胞的生長(P<0.01),見圖2C。平板集落形成實驗結果證明,ACBD3 能夠顯著增加TNBC 細胞系MDA-MB-231 和BT-549 的集落形成能力,與RNAi-Vector 組相比,敲減內(nèi)源性ACBD3的表達則能夠顯著抑制TNBC 細胞的集落形成能力(P<0.01),見圖2D。EdU 細胞增殖檢測結果證明,ACBD3 能夠顯著促進TNBC 細胞系MDA-MB-231 和BT-549 的增殖能力,與RNAi-Vector 組相比,敲減內(nèi)源性ACBD3的表達能夠顯著抑制TNBC 細胞的增殖能力(P<0.01),見圖2E。
Figure 1.The mRNA and protein levels of ACBD3 in normal breast epithelial cells and breast cancer cells were tested by qPCR(A)and Western blot(B).Mean±SD. n=3.*P<0.05,**P<0.01 vs MCF-10A group.圖1 正常乳腺上皮細胞及乳腺癌細胞中ACBD3的mRNA及蛋白表達情況
流式細胞術結果證明,ACBD3 能夠促進TNBC細胞系MDA-MB-231和BT-549的細胞周期進展。與RNAi-Vector 組相比,當敲減內(nèi)源性ACBD3表達后,各組細胞中G0/G1期的比例增加,S 期的比例減少。與RNAi-Vector 組相比,MDA-MB-231 細胞的G0/G1期比例由35.05%增加至64.45%,S 期比例由36.80%減少至18.83%;BT-549 細胞的G0/G1期比例由35.82%增加至58.23%,S 期比例由40.63%減少至23.48%(P<0.01),見圖3。
為進一步驗證ACBD3 在小鼠體內(nèi)的生物學功能,通過接種TNBC 細胞待其成瘤,觀察各個細胞系中RNAi-Vector 組與ACBD3-RNAi 組小鼠腫瘤體積大小的變化情況。小鼠腫瘤實驗結果證明,ACBD3能夠促進小鼠體內(nèi)腫瘤的生長。與RNAi-Vector 組相比,敲減內(nèi)源性ACBD3表達能夠顯著抑制腫瘤細胞生長,見圖4A。此外,通過測量記錄小鼠腫瘤體積曲線及腫瘤重量發(fā)現(xiàn),ACBD3 能夠促進小鼠體內(nèi)腫瘤的增殖及成瘤,與RNAi-Vector 組相比,敲減內(nèi)源性ACBD3能夠顯著抑制腫瘤細胞增殖及成瘤(P<0.05或P<0.01),見圖4B、C。
通過GSEA 發(fā)現(xiàn)ACBD3的高表達與AKT活化的基因群相關,與FOXO3 負調(diào)控的富集基因群相關(P<0.05 或P<0.01),見圖5A。此外,Western blot 結果顯示,ACBD3 能夠促進AKT、GSK3β 及FOXOs 等蛋白的磷酸化。與RNAi-Vector 組相比,敲減內(nèi)源性ACBD3的表達能夠顯著降低AKT、GSK3β 及FOXOs等蛋白的磷酸化水平(P<0.01),見圖5B。
高爾基復合體是細胞執(zhí)行生物學功能的重要場所,參與調(diào)節(jié)蛋白質(zhì)和脂質(zhì)的修飾,運輸及分選[19]。ACBD3基因位于人類染色體1q42.12,其蛋白是一個高爾基體銜接蛋白,主要負責維護高爾基體的結構和功能,且在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)輸出蛋白的分選和修飾中起關鍵作用[20-21]。先前研究表明,ACBD3 可以與多種分子相互作用,如PI4KB、Golgin45、TBC1D22、PPM1L、DMT1、PKA、FAPP2、TUG、PARP-1和Numb以及一些細菌和病毒蛋白等[22]。微陣列數(shù)據(jù)顯示,ACBD3 參與調(diào)控細胞周期,已有研究表明ACBD3 可通過調(diào)控不對稱細胞分裂中的Numb信號通路,從而調(diào)控細胞周期[18,23]。除此之外,研究報道ACBD3 在病毒及細菌復制中發(fā)揮重要作用。但ACBD3 在乳腺癌細胞發(fā)生發(fā)展中的具體生物學功能及分子機制研究甚少。
Figure 2.ACBD3 promoted the proliferation of triple-negative breast cancer(TNBC)cells in vitro.A:the mRNA expression of ACBD3 in the indicated TNBC cells transfected with RNAi-Vector and ACBD3-RNAi was detected by qPCR;B:the protein expression of ACBD3 in the indicated TNBC cells transfected with RNAi-Vector and ACBD3-RNAi was detected by Western blot;C:the cell viability was measured by MTT assay;D:the growth of the cells was detected by colony formation assay;E:the proliferation of TNBC cells was detected by EdU staining.Mean±SD. n=3.**P<0.01 vs RNAi-Vector group.圖2 ACBD3可促進三陰性乳腺癌細胞增殖
已有的研究發(fā)現(xiàn),TNBC 中通常伴有PTEN、TP53、PIK3CA、KRAS、BRAF、EGFR、FGFR1、FGFR2、IGFR1、KIT或MET等突變[24]。例如PTEN是10q23染色體上的腫瘤抑制基因,是PI3K-AKT 信號通路激活的關鍵調(diào)控因子之一,而PI3K-AKT 信號通路參與多種腫瘤的發(fā)生發(fā)展過程,其也是乳腺癌預后判斷的重要分子[25]。此外,有研究發(fā)現(xiàn)ACBD3 可通過調(diào)節(jié)PI4Kβ 從而參與調(diào)控細胞自噬[10]。在多種腫瘤中沉默ACBD3或PRKAR1A(protein kinase A regulatory subunit type 1A)表達可誘導腫瘤細胞的生長抑制和凋亡,并伴有絲裂原活化蛋白激酶、PI3K-AKT 和JAK-STAT 等通路信號傳導的減少[26-28]。本研究發(fā)現(xiàn),ACBD3 在TNBC 細胞中的表達水平高于其他類型乳腺癌細胞,通過細胞生物學實驗證明ACBD3 能夠促進TNBC細胞生長及增殖。
FOXO 轉(zhuǎn)錄因子受PI3K-AKT 信號通路負調(diào)控,被認為對細胞增殖有抑制作用[27]。FOXOs 的4 種亞型(FOXO1、FOXO3、FOXO4 和FOXO6)具有較高的蛋白同源性,均受到AKT 蛋白調(diào)控[29]。FOXO1、FOXO3 和FOXO4 轉(zhuǎn)錄因子可被AKT 直接磷酸化并被抑制轉(zhuǎn)錄,在AKT 調(diào)控細胞增殖的過程中發(fā)揮著重要作用[30]。本研究發(fā)現(xiàn)ACBD3 能夠調(diào)控AKTFOXOs 信號通路促進TNBC 細胞的增殖能力,沉默內(nèi)源性ACBD3則能夠抑制其增殖能力。
綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn)ACBD3 在TNBC 細胞中高表達,能夠通過AKT-FOXOs 信號通路調(diào)控TNBC細胞的增殖能力,在TNBC的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮著重要作用。
Figure3.ACBD3 promoted the G1/S phase progression of triple negative breast cancer(TNBC)cells in vitro.The G1/S phase progression of TNBC cells was detected by flow cytometry analysis.Mean±SD. n=3.**P<0.01 vs RNAi-Vector group.圖3 ACDB3促進三陰性乳腺癌細胞G1/S期轉(zhuǎn)變
Figure 4.ACBD3 promoted the proliferation of triple negative breast cancer cells in vivo.A:tumor photos analysed by Canvas;B and C:analysis of tumor volume and weight by GraphPad Prism.Mean±SD. n=6.*P<0.05,**P<0.01 vs RNAi-Vector group.圖4 ACBD3體內(nèi)促進三陰性乳腺癌細胞增殖
Figure 5.The effect of ACBD3 on AKT-FOXOs pathway in triple negative breast cancer cells.A:the results of gene set enrichment analysis(GSEA)showed that ACBD3 expression was positively correlated with proliferation and cell cycle-activated gene signatures(ACBD3-H:high expression of ACBD3;ACBD3-L:low expression of ACBD3);B:the protein levels of AKT,GSK3β and FOXOs were examined by Western blot.Mean±SD. n=3.**P<0.01 vs RNAi-Vector group.圖5 ACBD3對三陰性乳腺癌細胞中AKT-FOXOs信號通路的影響