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    趨化因子CCL26 C端截短肽的抗菌活性及抗生物被膜作用的研究

    2022-08-24 12:53:22張會(huì)會(huì)昝亞楠金明潔梁思宇劉思國(guó)
    關(guān)鍵詞:通透性抗菌肽趨化因子

    張會(huì)會(huì),昝亞楠,金明潔,梁思宇,劉思國(guó),謝 芳

    (中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院哈爾濱獸醫(yī)研究所獸醫(yī)生物技術(shù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/動(dòng)物細(xì)菌病研究創(chuàng)新團(tuán)隊(duì),黑龍江 哈爾濱 150069)

    耐藥性致病菌的流行會(huì)嚴(yán)重影響?zhàn)B殖業(yè)的正常運(yùn)轉(zhuǎn),給食品安全和生態(tài)環(huán)境帶來嚴(yán)重危害,從而威脅人類的健康,制約經(jīng)濟(jì)的可持續(xù)發(fā)展[1-3]。因此,迫切需要研究和開發(fā)出針對(duì)耐藥菌感染的抗菌治療藥物,來對(duì)抗日益流行的細(xì)菌耐藥現(xiàn)象。趨化因子是一類參與多種免疫功能的低分子量蛋白質(zhì)。近年來發(fā)現(xiàn),許多趨化因子具有抗菌活性。趨化因子CXCL9、CXCL10 和CXCL11 能有效地殺死大腸桿菌和單核細(xì)胞增生李斯特菌[4]。隨后,Yang 等對(duì)人源趨化因子進(jìn)行了系統(tǒng)的篩選,發(fā)現(xiàn)45 種人源趨化因子中,有23 種(10 種CXC 型和13 種CC 型趨化因子)表現(xiàn)出抗菌活性[5]。其中趨化因子CCL26 具有抗菌肽在中性pH 中帶正電(pI=10.85)的特性,此外其二級(jí)結(jié)構(gòu)由N 端的無規(guī)則卷曲,反平行的β-鏈和C端的α-螺旋組成,這與抗菌肽中防御素的結(jié)構(gòu)非常相似,甚至其C 末端結(jié)構(gòu)域也與抗菌肽LL-37 具有高度的結(jié)構(gòu)相似性[6]。研究發(fā)現(xiàn),CCL26 在低鹽濃度下對(duì)耐甲氧西林金黃色葡萄球菌(MASA)能夠達(dá)到80%抑菌效果[7]。因此,本研究以人源抗菌趨化因子CCL26 完整序列為模板,合成具有與傳統(tǒng)抗菌肽結(jié)構(gòu)高度相似的C 末端區(qū)域的截短肽26C 作為研究對(duì)象,探究26C 的體外生物學(xué)活性,以期為新型抗菌肽的研發(fā)提供思路,為治療耐藥菌感染的臨床用藥奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 主要實(shí)驗(yàn)材料腸道外致病性大腸桿菌K1 為耐多粘菌素B(PxB)的臨床分離菌株,銅綠假單胞菌ATCC 27853、人表皮角質(zhì)形成細(xì)胞HaCaT 由本實(shí)驗(yàn)室保存;CCL26 C 端截短肽(26C,KKWVQKYISLLK-TPKQL),由上海吉爾生化有限公司合成,經(jīng)過高效液相色譜純化后純度>98%;LB 固體和液體培養(yǎng)基購(gòu)自美國(guó)BD 公司;胰蛋白大豆肉湯培養(yǎng)基(TSB)和胰蛋白大豆瓊脂培養(yǎng)基(TSA)購(gòu)自英國(guó)OXOID 公司;磷酸鹽緩沖液(PBS)購(gòu)自北京Coolaber 公司;MEM 培養(yǎng)基、胰蛋白酶、胎牛血清(FBS)、鏈霉素和青霉素購(gòu)自美國(guó)Gibco 公司;結(jié)晶紫、DMSO、3-(4, 5-二甲基噻唑-2)-2, 5-二苯基四氮唑溴鹽(MTT)購(gòu)自哈爾濱市牧樂生物試劑有限公司;1-N-苯基萘胺(NPN)、PxB 購(gòu)自上海麥克林生化科技有限公司;細(xì)胞凋亡誘導(dǎo)劑(CCCP,50 mmol/L)購(gòu)自北京索萊寶生物科技有限公司;Triton X-100、HEPES、Adenosine 5'-triphosphate(ATP)Bioluminescent Assay Kit 購(gòu) 自 美國(guó)Sigma-Aldrich 公司。

    1.2 26C 對(duì)大腸桿菌K1 的濃度-殺菌曲線的測(cè)定待大腸桿菌K1 株培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期時(shí)收集菌體,用PBS 清洗3 次并調(diào)整為2×105cfu/mL,加入終濃度分別為0、1 μmol/L、2 μmol/L、4 μmol/L 的26C,置于37 ℃孵育3 h。取100 μL 菌液,10 倍倍比稀釋后涂板。待干燥后倒置放入37 ℃孵育24 h 后,參照De Breij 等的方法測(cè)定26C 在不同濃度下對(duì)大腸桿菌K1的殺菌效率[8],繪制濃度-殺菌曲線。

    1.3 26C 對(duì)大腸桿菌外膜通透性影響的測(cè)定將培養(yǎng)至對(duì)數(shù)期的大腸桿菌K1 重懸于含有5 μmol/L CCCP、5 mmol/L 葡萄糖的HEPES 緩沖液中,調(diào)整OD600nm約為0.5 后,于96 孔板中每孔加入100 μL 菌液,然后加入10 μmol/L NPN 平衡30 s,再加入終濃度為2 μmol/L的26C,在37 ℃條件下使用多功能酶標(biāo)儀每隔30 min檢測(cè)一次熒光強(qiáng)度,以相同濃度的PxB 作為陽性對(duì)照,采用NPN 測(cè)定26C 對(duì)細(xì)菌外膜的通透性[9]。試驗(yàn)重復(fù)3次,根據(jù)多功能酶標(biāo)儀測(cè)定的熒光值繪圖。

    1.4 26C對(duì)大腸桿菌ATP泄露影響的測(cè)定取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的大腸桿菌K1,收集菌體后用PBS 和50 mmol/L的HEPES各洗一遍,采用HEPES重懸至OD600nm約為1,加入0.2%的glucose 活化10 min,立即用26C 處理細(xì)菌懸液,每孔加入100 μL的ATP檢測(cè)液,靜置3 min,將80 μL DMSO 透化加入20 μL 上述細(xì)菌懸液,稀釋于4.9 mL 無菌水中,利用ATP Bioluminescent Assay Kit檢測(cè)ATP 總量;同時(shí)將80 μL 無菌水加入20 μL 大腸桿菌K1 細(xì)菌懸液中后稀釋于4.9 mL 無菌水中,利用ATP Bioluminescent Assay Kit 測(cè)定胞外ATP(ATP EC)的含量,通過多功能酶標(biāo)儀讀取熒光值,并計(jì)算胞內(nèi)ATP(ATP IC)的含量,胞內(nèi)ATP=ATP 總量-胞外ATP,通過比較胞外ATP 和胞內(nèi)ATP 的差異繪圖。

    1.5 通過透射電鏡觀察26C 對(duì)大腸桿菌細(xì)胞膜的影響細(xì)菌處理方法如1.2,將重懸菌液與2 μmol/L 的26C 作用,37 ℃孵育1 h 后用PBS 洗滌2 次后離心棄上清,收集菌體,2.5%戊二醛4 ℃靜止過夜。PBS 緩沖液沖洗3 次。2%的四氧化二鋨固定2 h,PBS 緩沖液沖洗2 次。分別利用50%、70%、90%和100%乙醇各脫水10 min。100%丙酮處理20 min,再用丙酮(1:1)樹脂(1:3)混合液處理1 h 后用純樹脂包埋過夜。將其制成超薄切片并用醋酸鈾酰和檸檬酸鉛染色,以不加26C 的大腸桿菌為對(duì)照室溫干燥后采用透射電鏡觀察26C 對(duì)大腸桿菌細(xì)胞膜的影響并拍照。

    1.6 26C 對(duì)銅綠假單胞菌生物被膜(BF)形成影響的測(cè)定于96 孔板中分別加入濃度為8 μmol/L、4 μmol/L、2 μmol/L、1 μmol/L、0 的26C 后,各孔分別 加 入50 μL 濃 度 為2×106cfu/mL 銅 綠 假 單 胞 菌 菌液,混勻后置于37 ℃孵育36 h,棄去浮游細(xì)菌,PBS 洗3 遍,甲醇固定晾干后加150 μL 結(jié)晶紫,作用5 min,純水洗3 遍,晾干后加150 μL 33%冰醋酸溶液溶解,輕輕混勻,測(cè)定OD490nm值,參考Rajasek-aran 等的方法測(cè)定26C 對(duì)細(xì)菌BF 形成的影響[10]。

    同時(shí)將500 μL 濃度為2×106cfu/mL 銅綠假單胞菌菌液加入共聚焦小皿,加入26C 使其終濃度為2 μmol/L、1 μmol/L、0,37 ℃靜置培養(yǎng)36 h,PBS 洗滌2 次后,利用細(xì)菌活力檢測(cè)試劑盒染色,通過激光共聚焦顯微鏡觀察26C 對(duì)BF 形成的影響。

    1.7 26C 對(duì)紅細(xì)胞溶血活性影響的測(cè)定靜脈采集人的新鮮血液,制備成4%的人紅細(xì)胞懸液。將200 μL 濃度分別為2 μmol/L、4 μmol/L、8 μmol/L、16 μmol/L、32 μmol/L、64 μmol/L 和128 μmol/L 的26C 或0.2% Triton X-100 與200 μL 的 紅 細(xì) 胞 懸 液 在37 ℃孵育1 h后,室溫800 r/min離心10 min,取100 μL上清測(cè)定OD415nm值。設(shè)等體積的PBS(pH7.4)處理組作為陰性對(duì)照,以0.2% Triton X-100 處理組作為陽性對(duì)照。根據(jù)式(1)計(jì)算溶血率后作圖。

    式(1):%溶血率=100×[(A-A0)]/[(AT-A0)],式中:A 為加肽樣品OD415nm值;A0和AT分別代表陰性值和陽性值。

    1.8 26C對(duì)HaCaT細(xì)胞毒性的測(cè)定HaCaT細(xì)胞采用1 μmol/L、2 μmol/L、4 μmol/L、8 μmol/L、16 μmol/L、32 μmol/L、64 μmol/L 的26C 在MEM 培養(yǎng)基中37 ℃、5%CO2孵育24 h后,采用MTT法評(píng)價(jià)26C的細(xì)胞毒性[9]。試驗(yàn)以無肽處理的細(xì)胞作為空白對(duì)照組,并按式(2)計(jì)算抑制率后作圖。式(2)抑制率(%)=(對(duì)照組OD570nm均值-給藥組OD570nm均值)/對(duì)照組OD570nm均值×100%。

    1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析采用GraphPad Prism 8.0 軟件對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì),采用t檢驗(yàn)法進(jìn)行組間顯著性分析并作圖,P>0.05 為差異不顯著;P≤0.05 為差異顯著。

    2 結(jié) 果

    2.1 26C 濃度-殺菌曲線的測(cè)定結(jié)果為探究26C在不同濃度下的殺菌能力,本研究將不同濃度的26C與大腸桿菌菌株K1 共同孵育3 h,根據(jù)殺菌效果繪制濃度-殺菌曲線。結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,1 μmol/L 的26C 與K1 菌株作用3 h 具有一定的殺菌效果(P<0.05),2 μmol/L 和4 μmol/L 的26C 與K1 菌株作用3 h 后可以有效地殺滅細(xì)菌(P<0.001),抗菌效果呈劑量依賴性,且在4 μmol/L 時(shí)即可完全殺滅細(xì)菌,使得細(xì)菌活菌數(shù)降低4log(圖1)。結(jié)果表明,26C 在不同濃度下均可有效殺滅細(xì)菌。

    圖1 26C對(duì)E.coli 菌株K1的濃度-殺菌曲線Fig.1 Concentration-kill curve of 26C to E.coli K1

    2.2 26C 對(duì)大腸桿菌外膜通透性影響的測(cè)定結(jié)果疏水探針NPN 在非極性或疏水環(huán)境中會(huì)發(fā)出強(qiáng)烈的熒光,因此常用來檢測(cè)細(xì)胞膜的完整性。本研究通過NPN 攝取量檢測(cè)26C 對(duì)細(xì)菌的損傷程度,并以對(duì)大多數(shù)革蘭氏陰性桿菌具有殺菌作用的多肽分子PxB作為研究細(xì)菌外膜通透性的陽性對(duì)照。結(jié)果顯示,與陽性對(duì)照組相比,26C 作用細(xì)菌30 min 后觀察到熒光強(qiáng)度顯著增加(P<0.01),在作用后60 min~240 min內(nèi)熒光強(qiáng)度極顯著增加(P<0.001),并且隨著26C 作用時(shí)間延長(zhǎng),NPN 的熒光強(qiáng)度逐漸增加,說明細(xì)菌外膜的通透性逐漸變大,且呈現(xiàn)時(shí)間依賴性。陽性對(duì)照PxB 也改變了細(xì)菌外膜通透性,但其效果明顯不如26C(圖2)。結(jié)果表明,隨著作用時(shí)間的延長(zhǎng),26C 可有效改變大腸桿菌細(xì)胞膜的通透性。

    圖2 26C對(duì)大腸桿菌的外膜通透性影響的檢測(cè)結(jié)果Fig.2 The effect of 26C on the permeability of the outer membrane of E.coli

    2.3 26C 對(duì)大腸桿菌ATP 泄露影響的測(cè)定結(jié)果當(dāng)細(xì)菌細(xì)胞膜損傷后,會(huì)導(dǎo)致菌體內(nèi)容物泄露,繼而殺死細(xì)菌。因此,ATP 泄漏分析可用于評(píng)估26C干擾細(xì)菌的能力。本研究利用ATP 泄露實(shí)驗(yàn)測(cè)定了26C對(duì)大腸桿菌的干擾能力,結(jié)果顯示,在2 μmol/L時(shí)大腸桿菌胞外ATP 顯著增加(P<0.05),4 μmol/L 時(shí)胞外ATP 極顯著增加(P<0.001),說明細(xì)胞膜被嚴(yán)重破壞,導(dǎo)致菌體內(nèi)容物及代謝產(chǎn)物泄露;在較低濃度時(shí)(1 μmol/L),觀察到胞外ATP的泄露有限,說明細(xì)胞膜未被完全破壞或存在其他作用靶標(biāo)(圖3)。結(jié)果表明,2 μmol/L 的26C 作用于大腸桿菌即可顯著破壞細(xì)菌細(xì)胞膜,導(dǎo)致菌體內(nèi)ATP外泄,降低細(xì)菌存活率。

    圖3 26C處理細(xì)菌細(xì)胞后細(xì)胞內(nèi)(IC)和細(xì)胞外(EC)ATP的測(cè)定Fig.3 Measurement of intracellular(IC)and extracellular(EC)of level ATP after 26C treatment

    2.4 26C 對(duì)細(xì)菌細(xì)胞膜的損傷作用將2 μmol/L 26C 與大腸桿菌共孵育1 h 后,制成超薄切片并在透射電子顯微鏡下觀察細(xì)菌細(xì)胞膜形態(tài)。結(jié)果顯示,對(duì)照組菌體保持完好的細(xì)胞形態(tài),胞質(zhì)均勻,內(nèi)容物充實(shí),無胞漿外泄現(xiàn)象。經(jīng)26C 作用后,菌體出現(xiàn)明顯的質(zhì)壁分離并伴有不同程度的膜損傷(箭頭所示),導(dǎo)致菌體內(nèi)容物泄露(圖4)。結(jié)果表明,26C可破壞細(xì)菌細(xì)胞膜,從而有效地殺傷細(xì)菌。

    圖4 透射電鏡觀察26C對(duì)細(xì)菌細(xì)胞膜的損傷作用Fig.4 Effects of 26C on bacterial cell membrane by TEM

    2.5 26C 對(duì)銅綠假單胞菌BF 形成能力影響的測(cè)定銅綠假單胞菌為適應(yīng)環(huán)境所形成的BF 大大削弱了抗生素的殺菌效果,本研究測(cè)定了不同濃度水平下26C抑制BF形成的能力。通過結(jié)晶紫染色法檢測(cè)發(fā)現(xiàn),26C在1 μmol/L~2 μmol/L 可有效抑制銅綠假單胞菌BF 的形成(P<0.01),在4 μmol/L~8 μmol/L 時(shí)26C 抑制BF 形成的能力極顯著高于對(duì)照組(P<0.001)(圖5A)。采用激光共聚焦顯微鏡觀察發(fā)現(xiàn),26C 在1 μmol/L 濃度下即可顯著抑制銅綠假單胞菌的BF 的形成(圖5B)。結(jié)果表明,26C 在低濃度即可顯著抑制銅綠假單胞菌BF 的形成,且抑制效果呈現(xiàn)劑量依賴性。

    圖5 利用結(jié)晶紫法(A)和激光共聚焦顯微鏡(B)觀察26C抑制細(xì)菌BF形成的能力Fig.5 The antibiofilm ability of 26C was observed by crystal violet method(A)and laser confocal microscope(B)

    2.6 26C 對(duì)人紅細(xì)胞的溶血活性及細(xì)胞毒性測(cè)定結(jié)果天然抗菌肽因易溶解紅細(xì)胞引起全身毒性而限制了其用于臨床治療,為測(cè)定26C對(duì)紅細(xì)胞的溶血活性,本研究將不同濃度的26C 分別與人紅細(xì)胞孵育1 h后測(cè)定上清OD415nm值,計(jì)算抗菌肽對(duì)人紅細(xì)胞的溶血活性(%)。結(jié)果顯示,與陽性對(duì)照相比,在最高濃度下,26C 對(duì)人紅細(xì)胞溶血活性極低(P<0.001),僅為0.85%(圖6)。結(jié)果表明,26C對(duì)人紅細(xì)胞無溶血活性,有作為臨床用藥開發(fā)的潛力。為明確26C對(duì)哺乳動(dòng)物細(xì)胞的毒性,采用MTT 法檢測(cè)26C 對(duì)HaCaT 的細(xì)胞毒性。結(jié)果顯示,與空白對(duì)照組相比,1 μmol/L~16 μmol/L 26C對(duì)HaCaT細(xì)胞無毒性,32 μmol/L~64 μmol/L 26C有較低的細(xì)胞毒性(P<0.05)(圖7)。此時(shí)肽濃度已遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于其殺菌濃度。結(jié)果表明,26C 對(duì)哺乳動(dòng)物細(xì)胞 無毒性,有作為臨床用藥開發(fā)的潛力。

    圖6 26C對(duì)人紅細(xì)胞的溶血活性的測(cè)定Fig.6 Hemolytic activity of 26C on human red blood cells

    圖7 26C對(duì)人表皮角質(zhì)形成細(xì)胞HaCaT的細(xì)胞毒性的測(cè)定Fig.7 The cytotoxicity of 26C to human epidermal keratinocyte cells HaCaT

    3 討 論

    過去幾十年抗生素濫用造成細(xì)菌多重耐藥菌大量出現(xiàn)[11],而養(yǎng)殖業(yè)這種現(xiàn)象尤為嚴(yán)重。據(jù)保守估計(jì),2010 年~2030 年我國(guó)養(yǎng)殖業(yè)抗生素的消耗量至少還將增加一倍,達(dá)到全球總量的近1/3,給公共衛(wèi)生安全帶來極大的威脅[12]。隨著我國(guó)減抗無抗政策的制定和實(shí)施,新型抗菌制劑的研制迫在眉睫。

    趨化因子不僅在調(diào)節(jié)白細(xì)胞遷移方面發(fā)揮關(guān)鍵作用,而且在天然免疫和適應(yīng)性免疫反應(yīng)方面也發(fā)揮重要作用,與趨化因子相關(guān)的新功能之一是其作為抗菌藥物應(yīng)用的能力[7]。許多趨化因子的C 端結(jié)構(gòu)域與陽離子的α-螺旋抗菌肽的相似性較高,可見C末端螺旋區(qū)域是趨化因子抗菌活性的主要區(qū)域。而在某些情況下,分子內(nèi)的相互作用可能會(huì)中和帶正電的C 末端α-螺旋,掩蓋它的的抗菌活性,這表明或許需要對(duì)某些成熟的趨化因子進(jìn)行截短,才能完整的保留其抗菌活性。研究發(fā)現(xiàn),CCL26 在低鹽濃度(10 mmol/L)下對(duì)MASA 具有一定的抗菌活性,而對(duì)其他細(xì)菌的抗菌活性還未報(bào)道[7],因此本研究合成了抗菌趨化因子CCL26 具有α-螺旋結(jié)構(gòu)的C 端截短肽26C,并測(cè)定其對(duì)耐PxB 的大腸桿菌K1 菌株的抗菌活性,發(fā)現(xiàn)其在低濃度下即可有效殺滅大腸桿菌,表明26C 對(duì)耐PxB 的腸道外致病菌具有較強(qiáng)的殺菌活性。

    抗菌肽大多具有陽離子表面和疏水表面的兩親性,這可能促進(jìn)抗菌肽與帶負(fù)電的微生物表面相互作用[13]。這種相互作用可能是通過插入脂膜和破壞細(xì)菌膜而殺死細(xì)菌,本研究NPN 和ATP 的測(cè)定結(jié)果均顯示26C 在2 μmol/L 的濃度下具有顯著干擾細(xì)菌通透性及代謝穩(wěn)定性的能力,這表明26C 可能插入到細(xì)菌細(xì)胞膜中,增加了膜的通透性導(dǎo)致細(xì)菌內(nèi)容物泄露而死亡。為了獲得更多關(guān)于26C 潛在作用機(jī)制的信息,本研究對(duì)肽作用后的細(xì)菌表面進(jìn)行透射電鏡觀察,結(jié)果顯示26C 影響大腸桿菌的表面,可能是通過靜電作用與細(xì)胞膜上帶負(fù)電荷的成分結(jié)合,引起外膜通透性改變,導(dǎo)致細(xì)菌細(xì)胞內(nèi)容物的泄漏而造成損傷,最終導(dǎo)致細(xì)菌死亡,這也印證了上述NPN 和ATP 的測(cè)定結(jié)果。

    BF 內(nèi)細(xì)菌對(duì)抗生素和其他藥物耐受性強(qiáng),并能逃避宿主的免疫殺傷,抗菌肽因其獨(dú)特的膜作用殺菌機(jī)制能抑制BF 的形成或降解BF[8]。為了研究26C對(duì)細(xì)菌BF 的作用,本研究通過結(jié)晶紫染色法檢測(cè)26C 對(duì)銅綠假單胞菌BF 的影響,結(jié)果顯示26C 對(duì)銅綠假單胞菌BF 形成具有顯著抑制作用,并且隨著26C 濃度升高抑制作用也明顯增強(qiáng),這為預(yù)防醫(yī)療器械等醫(yī)源性慢性感染提供了參考。本研究進(jìn)一步通過激光共聚焦顯微鏡觀察,結(jié)果顯示與陽性對(duì)照相比,26C 在低濃度下能夠顯著抑制BF 的形成。該結(jié)果進(jìn)一步支持本研究上述結(jié)論。此外,26C 對(duì)哺乳動(dòng)物無溶血活性,且在1 μmol/L~16 μmol/L 對(duì)哺乳動(dòng)物細(xì)胞無毒性,說明其具有作為新型抗菌肽開發(fā)的潛力。

    綜上所述,本研究中趨化因子CCL26 的C 端截短肽26C 具有顯著的抗菌活性,可以有效地降低耐藥大腸桿菌菌株的存活率;并能干擾細(xì)菌外膜通透性,造成細(xì)菌嚴(yán)重?fù)p傷而死亡;同時(shí)可以抑制銅綠假單胞菌BF 的形成;無溶血活性,對(duì)哺乳動(dòng)物細(xì)胞毒性較低,具備作為臨床藥物開發(fā)的潛力。本研究為新型抗菌肽的研發(fā)提供了思路,也為趨化因子抗菌肽的臨床應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)。

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