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    歐洲型PRRSV競爭ELISA抗體檢測方法的建立及應用

    2022-08-24 12:53:20相麗潤張文立湯艷東龔邦俊李宛生彭金美周國輝冷超糧安同慶蔡雪輝張洪亮田志軍
    中國預防獸醫(yī)學報 2022年6期
    關鍵詞:特異性豬場試劑盒

    許 滸,相麗潤,張文立,湯艷東,趙 靜,李 超,龔邦俊,李宛生,付 軍,彭金美,王 倩,周國輝,冷超糧,安同慶,蔡雪輝*,張洪亮*,田志軍*

    (1.中國農(nóng)業(yè)科學院哈爾濱獸醫(yī)研究所獸醫(yī)生物技術國家重點豬病實驗室,黑龍江 哈爾濱 150069;2.南陽師范學院,河南 南陽 473061)

    豬繁殖與呼吸綜合征(Porcine reproductive and re-spiratory syndrome,PRRS)是由PRRS 病毒(PRRSV)引起的以母豬流產(chǎn)和仔豬呼吸道癥狀為主要特征的高度傳染性疾病[1]。之前,PRRSV 被定義為動脈炎病毒科、動脈炎病毒屬成員,根據(jù)地理分布及遺傳演化分析,PRRSV 被分為2 個基因型:PRRSV-1(歐洲型)和PRRSV-2(美洲型)[2]。2021 年3 月,國際微生物學會聯(lián)合會病毒學組設立的國際病毒分類委員會(ICTV)正式批準將PRRSV 歸于動脈炎病毒科,β-動脈炎病毒屬(Betaarterivirus)。PRRSV-1 是Eurpo-bartevirus亞 屬,Betaarterivirus suid 1種 成 員, 而PRRSV-2 是Ampobartevirus亞屬,Betaarterivirus suid 2種成員。在重新分類后PRRSV-1 和PRRSV-2 不再屬于同一種的兩個基因型,而是屬于不同的亞屬和種。我國于1997 年首次分離到PRRSV-1 株并命名為B1株[3],自2011 年來,中國關于PRRSV-1 的報道逐漸增多,已有廣東、遼寧等6 個省份報道出現(xiàn)了PRRSV-1[4-8]。目前國內對PRRSV-1 的檢測主要是針對病原核酸,缺少特異性針對PRRSV-1 的血清學檢測方法。由于PRRSV-1 和PRRSV-2 不再屬于同一亞屬,因此建立針對PRRSV-1 的特異性血清學檢測方法,對了解PRRSV-1 在我國的流行情況和有效防控該病具有重要的意義。

    在眾多血清學檢測方法中,酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)具有操作簡便、試驗時間短、易于標準化的特點,適合用于大范圍流行病學調查。目前市場上常見的商品化抗體檢測試劑盒主要是PRRSV N 蛋白和膜蛋白(M 蛋白、GP2、GP3、GP4、GP5)間接ELISA 試劑盒[9]。大多數(shù)試劑盒均可檢測PRRSV-1 和PRRSV-2的抗體,僅有兩個未獲生產(chǎn)批號的PRRSV-1抗體試劑盒,它們分別以體外表達PRRSV-1 的GP5(試劑盒1)和部分膜蛋白(試劑盒2)為包被抗原,對試劑盒1 檢測PRRSV-1 的抗體情況尚未報道,而國外多篇報道均證實了試劑盒2 并不能特異性檢測PRRSV-1 抗體,且敏感性較差[10-11]。

    本研究以特異性識別PRRSV-1 的單克隆抗體(MAb,EU-1)為競爭抗體,建立了一種快速檢測PRRSV-1 抗體的競爭ELISA(EU-C-ELISA)方法,為我國PRRSV-1 的流行病學調查提供方法。

    1 材料與方法

    1.1 病毒、血清和抗體ZD-1株(PRRSV-1,經(jīng)分子篩 純 化 后 濃 度 為 455 ng/μL)[8]、 HNTZJ1341(NADC34-like)、HNTZJ1714(QYYZ-like)由本實驗室分離并保存;116 份PRRSV-1 陽性血清、10 份陰性 血 清(PRRSV-1 和PRRSV-2 雙 陰 性 血 清)、PRRSV-2 動物實驗陽性血清共273 份,其中170 份為HuN4-F112 免疫及HuN4(HP-PRRSV)攻毒血清;60份SD-R 免疫血清及SD(NADC30-like)攻毒血清;12份WK108(NADC30-like)攻毒血清;6 份DZD32-1901(NADC34-like)攻毒血清;8份SD192(ATCC VR2332-like)攻毒血清;14 份CH-1R(經(jīng)典PRRSV)免疫血清、PRRSV-1(DV 株)、副豬嗜血桿菌(HPS)、豬鏈球菌(SS)、胸膜肺炎放線桿菌(APP)、豬傳染性胃腸炎病毒(TGEV)、豬流行性腹瀉病毒(PEDV)、豬偽狂犬病毒(PRV)、豬瘟病毒(CSFV)、口蹄疫病毒(FMDV)等豬常見病毒和細菌的陽性血清樣品均由哈爾濱獸醫(yī)研究所保存;432 份臨床血清于2020 年采自4 個省(黑龍江、遼寧、河北、山東)10 個豬場;PRRSV-1 MAb EU-1 及2C6、PRRSV-2 MAb 3F7 均由本實驗室制備并保存。

    1.2 主要試劑DMEM 培養(yǎng)基購自GIBCO 公司;胎牛血清購自CLARK 公司;FITC 標記山羊抗小鼠IgG(FITC-IgG)均購自Sigma 公司;山羊抗鼠IgG-HRP購自北京中杉金橋生物技術有限公司;TMB 顯色液購自Sigma 公司;BCA 蛋白濃度定量試劑盒購自碧云天生物技術研究所;ELISA 包被板購自JET Bio star公司;牛血清白蛋白(BSA)購自Sigma 公司;PRRSV抗體檢測試劑盒分別購自北京愛德士(IDEXX)、北京金諾百泰生物技術有限公司(金諾)、世紀元亨生物科技有限公司(試劑盒1)和北京天之泰生物科技有限公司(試劑盒2)。

    1.3 PRRSV-1 MAb EU-1 特異性檢測將野毒株ZD-1、HNTZJ1341、HNTZJ1714 及疫苗株HBL、SD-R、HuN4-F112、CH-1R、RespPRRS MLV 和DV 接種Marc-145 細胞。以500 μL MAb EU-1 上清為一抗, 37 ℃孵育30 min,PBS 洗滌3 次,以300 μL 山羊抗小鼠IgG-FITC(1:200)為二抗,采用間接免疫熒光試驗(IFA)方 法 檢 測MAb EU-1 與 各 類 型PRRSV 的交叉反應性。分別以本實驗室已制備的MAb 2C6(PRRSV-1)和3F7(PRRSV-2)為IFA 方法的陽性對照。

    1.4 EU-C-ELISA 方法的建立及反應條件的優(yōu)化將純化后的ZD-1 株全病毒分別用磷酸鹽緩沖液(pH7.4)、Tris-HCL 緩沖液(pH8.5)和碳酸鹽包被液(pH9.6)稀釋(910 ng/孔、455 ng/孔、227.5 ng/孔),確定最優(yōu)條件后100 μL/孔加樣后置4 ℃包被,利用方陣法,對包被時間(8 h、12 h、15 h),300 μL BSA濃度(1%、2%、3%),37 ℃封閉時間(1 h、2 h、3 h),PRRSV-1 MAb EU-1 稀釋倍數(shù)(1:2~1:16),37 ℃孵育時間(20 min、30 min、60 min),100 μL 山羊抗鼠IgG-HRP 抗稀釋倍數(shù)(1:5 000、1:10 000、1:20 000),顯色時間(10 min、15 min、20 min)進行優(yōu)化。測定OD450nm值,計算抑制率(Percentage inhibition,PI),PI(%)=(陰性血清OD450nm值-陽性血清OD450nm值/陰性血清OD450nm值)×100%,選取PI值最大的反應條件為最優(yōu)。

    1.5 陰陽性臨界值的確定將10 份陰性血清、273份PRRSV-2 陽 性 血 清(PRRSV-1 陰 性)、116 份PRRSV-1 陽性血清,按照優(yōu)化的EU-C-ELISA 方法檢測,測定OD450nm值后按PI(%)=(陰性血清OD450nm值-樣品血清OD450nm值/陰性血清OD450nm值)×100 %轉換為PI,用MedCalcv15.8 軟件進行交互式點圖分析,確定臨界值。

    1.6 特異性試驗按照優(yōu)化的EU-C-ELISA 條件檢測HPS、SS、APP、TGEV、PEDV、PRV、CSFV、FMDV、PRRSV-2 NADC30-like 疫苗候選株SD-R、高致病性株HuN4-F112、NADC30-like 株WK108、ATCC VR2332-like 株SD192、NADC34-like 株DZD32、經(jīng)典株CH-1R、PRRSV-1 株ZD-1、PRRSV-1 株WK14、PRRSV-1 株WG9 陽性血清,根據(jù)臨界值判定檢測血清樣品的陰陽性;利用本研究建立的EU-C-ELISA方法和兩種市售PRRSV-1 抗體試劑盒檢測18 份PRRSV-2 實驗動物血清(在各譜系實驗動物血清中隨機選取)。評估以上方法與PRRSV-2 抗體的交叉反應性。

    1.7 敏感性試驗將PRRSV-1 標準陽性血清2 倍倍比(1:1~1:64)稀釋,按優(yōu)化的EU-C-ELISA 條件進行檢測,根據(jù)臨界值判定陰陽性,評估該方法的敏感性。同時利用4 種試劑盒:IDEXX、金諾及市售兩種PRRSV-1 抗體試劑盒對上述血清進行檢測,比較5 種方法敏感性差異。

    1.8 抗體產(chǎn)生時間檢測將PRRSV-1 ZD-1 株以1×105.0TCID50/mL 感染5 頭PRRSV 抗原抗體雙陰性豬,感染后0、3 d、7 d、10 d、14 d、17 d、21 d采集豬血清樣品,按照建立的EU-C-ELISA 進行檢測,并與IDEXX試劑盒的檢測結果進行比較,分析兩種方法對PRRSV-1 感染豬后血清抗體陽轉時間的差異。

    1.9 重復性試驗按照優(yōu)化的EU-C-ELISA 方法,從同一批次包被的ELISA 板挑取3 塊,分別檢測上述5 份血清樣品,進行批內重復性試驗,對結果進行統(tǒng)計學分析。另外,按照優(yōu)化的EU-C-ELISA 方法,從不同批次包被的ELISA 板中挑取3 塊,分別檢測上述5 份血清樣品,進行批間重復性試驗,對結果進行統(tǒng)計學分析。

    1.10 臨床樣品的檢測 采用本研究建立的EU-CELISA 方法對2020 年我國4 個省份10 個豬場收集的432 份豬血清樣品進行檢測,初步確定PRRSV-1 在我國部分地區(qū)的流行情況。

    2 結 果

    2.1 MAb EU-1 特異性檢測結果EU-1 特異性檢測結果顯示,EU-1 與PRRSV-2 HuN4-F112、CH-1R、SD-R、 RespPRRS MLV、 HNTZJ1714、 HNTZJ1341 株均不反應,與PRRSV-1 ZD-1、DV 和HBL 株均反應良好(圖1)。表明EU-1 僅與PRRSV-1 反應,而不與PRRSV-2 反應,特異性較強。

    圖1 MAb EU-1與各類型PRRSV的IFA結果Fig.1 IFA results between MAb EU-1 agains various types of PRRSV

    2.2 EU-C-ELISA 方法的建立及反應條件的確定經(jīng)方陣滴定法優(yōu)化的EU-C-ELISA 方法的最佳包被液為碳酸鹽緩沖液,其他最佳反應條件見表1。

    表1 EU-C-ELISA 檢測方法反應條件的優(yōu)化結果Table 1 The optimized conditions of EU-C-ELISA

    2.3 EU-C-ELISA 臨界值的確定利用優(yōu)化后的EU-C-ELISA 方法檢測10 份陰性血清、 273 份PRRSV-2陽性血清(PRRSV-1陰性)及116份PRRSV-1陽性血清(PRRSV-2 陰性),經(jīng)MedCalcv15.8 軟件分析結果顯示,當敏感性為97.7%,特異性為100%時,其最優(yōu)的cut-off 值為45(圖2)。因此,當血清樣品的PI ≥45%時,判定結果為陽性,當血清樣品的PI<45%時,判定為陰性。

    圖2 EU-C-ELISA 臨界值確定Fig.2 Determination of the critical value of EU-C-ELISA

    2.4 特異性試驗結果利用該EU-C-ELISA 方法檢測HPS、SS、APP、TGEV、PEDV、PRV、CSFV、FM-DV、PRRSV-2 NADC30-like 疫苗候選株SD-R、高致病性株HuN4-F112、NADC30-like 株WK108、ATCC VR2332-like 株SD192、NADC34-like 株DZD32、經(jīng)典株CH-1R 、PRRSV-1 株ZD-1、PRRSV-1 株WK14、PRRSV-1 株WG9 陽性血清,結果顯示該方法僅能與PRRSV-1 陽性血清特異性競爭包被抗原,PRRSV-2各譜系病毒株及其他豬常見豬病毒和細菌陽性血清PI 值均遠低于臨界值(圖3),結果表明本研究建立的EU-C-ELISA 方法能夠特異性識別PRRSV-1 抗體,特異性較強。

    圖3 EU-C-ELISA 特異性試驗結果Fig.3 Specificity test results of EU-C-ELISA

    將建立的EU-C-ELISA 方法與市售兩種PRRSV-1 ELISA 抗體檢測試劑盒進行比較,在273 份PRRSV-2各譜系動物實驗陽性血清中隨機選取18 份檢測,結果顯示兩種市售試劑盒均與PRRSV-2 抗體存在明顯交叉反應,試劑盒1 陽性率為44.4%,試劑盒2 陽性率為27.8%,而本研究建立的EU-C-ELISA 方法檢測均為陰性(圖4),結果表明本研究建立的EU-C-ELI-SA 特異性明顯優(yōu)于其他兩種市售PRRSV-1 ELISA 抗體試劑盒。

    圖4 EU-C-ELISA 與其他PRRSV-1 ELISA抗體檢測方法特異性的比較Fig.4 Specificity comparison between EU-C-ELISA and other PRRSV-1 ELISA antibody detection kits

    2.5 敏感性試驗結果利用建立的EU-C-ELISA 方法檢測2 倍倍比稀釋的PRRSV-1 ZD-1 株陽性血清,結果顯示PRRSV 陽性血清稀釋倍數(shù)為1:16 時PI 仍大于臨界值;市售PRRSV-1 試劑盒1、2 分別能檢出最高4 倍和2 倍稀釋的PRRSV-1 標準陽性血清,IDEXX 試劑盒和金諾試劑盒分別能檢出最高8 倍和2 倍稀釋的PRRSV-1 標準陽性血清(圖5),以上結果表明本研究建立的EU-C-ELISA 方法的敏感性更高。

    圖5 EU-C-ELISA 與其他PRRSV抗體檢測試劑盒敏感性的比較Fig.5 Sensitivity comparison between EU-C-ELISA and other PRRSV antibody detection kits

    2.6 抗體產(chǎn)生時間的檢測結果利用建立的EU-CELISA 方法及IDEXX 試劑盒檢測了ZD-1 株感染后0、3 d、7 d、10 d、14 d、17 d、21 d 的血清,結果顯示,EU-C-ELISA 及IDEXX 試劑盒均在豬感染后10 d檢測出血清陽轉(圖6),因此本研究建立的EU-CELISA 方法可以在豬感染PRRSV-1 早期檢測出抗體陽性,豬抗體的陽轉時間與IDEXX 試劑盒檢測的結果基本一致。

    圖6 EU-C-ELISA 與IDEXX試劑盒檢測PRRSV-1抗體陽轉時間的比較Fig.6 Comparison of PRRSV-1 antibody conversion time between EU-C-ELISA and IDEXX kit

    2.7 重復性試驗結果利用建立的EU-C-ELISA 方法進行重復性試驗,結果顯示批內和批間重復試驗變異系數(shù)均小于5%(表2),表明該方法的重復性較好。

    表2 EU-C-ELISA 方法批內和批間重復性試驗結果(n=5)Table 2 The results of intra-and inter repeatability test by EU-C-ELISA(n=5)

    2.8 臨床樣品的檢測結果利用該EU-C-ELISA 方法對2020 年從黑龍江(3)、遼寧(3)、河北(2)、山東(2)省10 個豬場采集的432 份臨床血清樣品進行檢測,結果顯示共有2 個豬場檢出PRRSV 陽性,豬場陽性率為20%,樣品陽性率為15.0%。其中黑龍江省和河北省各有1 個豬場存在陽性樣品,陽性率分別為45.5%和62.5%,其余8個豬場血清樣品則均為陰性(圖7)。以上結果表明PRRSV-1可能已在我國部分地區(qū)呈現(xiàn)一定的流行。

    圖7 EU-C-ELISA 檢測部分地區(qū)豬場臨床樣品的結果Fig.7 The results of clinical samples in pig farms of some partial regions detected by EU-C-ELISA

    3 討 論

    本實驗室多年以來一直對我國PRRSV 進行監(jiān)測,近5 年以來PRRSV-1 的檢出數(shù)量明顯增加[8]。由于抗原檢測樣品多為流產(chǎn)或死亡豬的組織病料,而我國流行的PRRSV-1 致病性普遍較低,抗原檢測可能出現(xiàn)大量漏檢情況。在中和試驗(SN)、免疫過氧化物酶單層試驗(IPMA)、IFA 及多種ELISA 抗體檢測方法中,ELISA 是最為常用的PRRSV 抗體檢測方法。IDEXX 間接ELISA 試劑盒,由于其高靈敏度、特異性和重復性,被作為檢測抗PRRSV 抗體的行業(yè)標準[12],但其不能區(qū)分PRRSV-1 和PRRSV-2 的抗體。因此,為了了解PRRSV-1 在我國的流行情況,有必要建立一種能夠特異性識別PRRSV-1 抗體的ELISA 試劑盒。

    本研究通過超離純化獲得的PRRSV-1 型ZD-1 株全病毒作為包被抗原,相比于人工表達的抗原蛋白,其保留了抗原表位的天然構象,提高了抗體的結合準確度;以PRRSV-1 型MAb EU-1 為競爭抗體,特異性的PRRSV MAb 與陽性豬血清中PRRSV-1 抗體競爭結合抗原蛋白,比阻斷ELISA 方法更簡便省時,相比于市售大多數(shù)間接ELISA 方法可以明顯減少假陽性的出現(xiàn)。該方法與我國流行的各譜系PRRSV-2陽性血清均無交叉反應,結果明顯優(yōu)于兩種市售PRRSV-1 間接ELISA 試劑盒,特異性可以達到100%。 也印證了現(xiàn)有市售ELISA 方法無法對PRRSV-1 抗體進行鑒別檢測的事實。通常間接ELI-SA 方法相比于C-ELISA 的敏感性更高,但在敏感性試驗中,該方法能檢測出16 倍稀釋的標準陽性血清,在與4 種市售間接ELISA 比較時,不僅優(yōu)于PRRSV-1 抗體試劑盒的4 倍和2 倍,甚至比檢測N 蛋白抗體的IDEXX 及金諾ELISA 試劑盒敏感性更高。同時該方法最早可在豬感染后10 d 檢測到PRRSV-1抗體,結果與IDEXX 方法一致,可以較早的檢測到感染PRRSV-1 豬血清樣品中的抗體。

    采用建立的EU-C-ELISA 方法對我國PRRSV-1進行初步的流行病學調查,對2020 年采自黑龍江(3)、遼寧(3)、河北(2)、山東(2)省10 個豬場采集的432 份臨床血清樣品進行檢測。有2 個豬場檢出PRRSV-1 抗體為陽性,豬場陽性率達20%;兩個陽性豬場的樣品陽性率分別為45.5%和62.5%;10 豬場樣品總陽性率為15.0%。同時利用本實驗室建立的PRRSV-2 M 蛋白抗體C-ELISA 方法對65 份PRRSV-1陽性臨床樣品進行了檢測[9],該方法可以特異性檢測PRRSV-2 抗體,其中PRRSV-2 陽性樣品為61 份,陽性率高達93.8%,這可能與部分豬場免疫PRRSV-2疫苗有關,也可能與PRRSV-2 在我國流行范圍較廣相關。雖然本研究中血清樣品數(shù)量和采集范圍有限,但現(xiàn)有結果表明我國部分地區(qū)的豬群中已存在PRRSV-1 抗體。下一步本研究室將增大對被檢臨床樣品的數(shù)量及樣品具體背景信息的了解,以便進一步明確PRRSV-1 在我國的具體流行狀況。

    綜上所述,本研究建立了一種快速檢測PRRSV-1 抗體的EU-C-ELISA 方法,具有良好的特異性、敏感性和重復性。為PRRSV-1 的流行病學調查供了一種簡便、快速、特異的血清學抗體檢測方法,初步流行病學調查顯示,PRRSV-1 抗體已經(jīng)存在于我國部分地區(qū)豬群中。長期以來PRRSV-1 和PRRSV-2 被視為同一種病原,無法了解兩種病原在我國具體流行狀況,導致我國對PRRSV-1的檢測手段十分匱乏,也不利于針對性防控,面對PRRSV-1 與PRRSV-2 分為不同亞屬的新局勢,加大對我國豬場PRRSV-1 抗體的監(jiān)測已十分必要。

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