張小佐,霍海芹,王艷,馮浩洋,林穎,許爭峰(南京醫(yī)科大學(xué)附屬婦產(chǎn)醫(yī)院&南京市婦幼保健院產(chǎn)前診斷中心,南京 210001)
神經(jīng)管畸形,又稱神經(jīng)管缺陷(neural tube de-fects,NTDs),是最常見的先天性畸形之一,主要表現(xiàn)類型有脊柱裂和無腦畸形等[1]。研究表明,NTDs是環(huán)境因素和遺傳因素交互作用所致,其中與NTDs發(fā)生相關(guān)的環(huán)境因素主要包括服藥史、糖尿病、感染和放射線等[2]。丙戊酸鈉(valproic acid,VPA)是一線抗癲癇藥物,然而一項(xiàng)人群數(shù)據(jù)研究提示,孕期服用VPA可增加胎兒患NTDs的風(fēng)險(xiǎn)[3],這使得VPA 在妊娠期的使用陷入兩難的境地[4]。目前關(guān)于NTDs 的研究主要以動物模型為主[5-6],且在上述動物研究中已證實(shí)VPA 具有神經(jīng)致畸性[7],但該研究存在一定的局限性,因?yàn)槟J絼游锱c人類的大腦發(fā)育存在遺傳學(xué)背景差異。
人多能干細(xì)胞(human pluripotent stem cells,hPSCs)是一類具有自我更新能力的多潛能細(xì)胞[8]。本研究通過懸浮培養(yǎng)hPSCs并提供3D培養(yǎng)環(huán)境以改善體外神經(jīng)誘導(dǎo)的條件,分化獲得具有單個lumen的玫瑰花環(huán)樣組織,與體內(nèi)神經(jīng)管相似。在該模型的基礎(chǔ)上,筆者在體外分化培養(yǎng)體系中加入VPA,通過比較VPA加藥組與對照組之間的差異,以期進(jìn)一步探討VPA導(dǎo)致NTDs的可能發(fā)生機(jī)制。
1.1 細(xì)胞系、主要試劑與儀器 人多能干細(xì)胞系RC01001-B(安徽中盛溯源公司)。hPSCs 培養(yǎng)基(北京賽貝公司),Matrigel 基底膜基質(zhì)(美國康寧公司),DMEM/F12 培養(yǎng)基、非必需氨基酸 NEAA、N2、B27、TrypLE、F-actin 染料、山羊抗小鼠 488 熒光二抗、山羊抗兔546 熒光二抗(美國 Thermo 公司),ROCK 抑制劑 Y-27632632(美國 Stem cell 公司),丙戊酸鈉(美國 Sigma 公司),驢血清(美國Millipore 公司),兔抗人 OCT4 單克隆抗體(英國Abcam公司),小鼠抗人OCT4 單克隆抗體(美國Santa Cruz公司),兔抗人PAX6 多克隆抗體、小鼠抗人NCAD 單克隆抗體(美國Biolegend 公司),兔抗人ECAD單克隆抗體(美國Cell Signaling公司),小鼠抗人PKCλ單克隆抗體(美國BD公司),cDNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、qPCR 試劑盒(南京諾唯贊公司)。熒光倒置顯微鏡(德國Leica公司),NanoDrop 紫外分光光度計(jì)(美國Thermo公司)。
1.2 hPSCs的培養(yǎng)與傳代 取上述培養(yǎng)的hPSCs,待細(xì)胞融合度達(dá)90%時,使用1 mL TrypLE(1×)進(jìn)行消化,終止消化后加入hPSCs 培養(yǎng)基,接種于Matrigel鋪底的6 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,置于37 ℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng)箱中常規(guī)培養(yǎng),每日換液。傳代至20代后用于神經(jīng)誘導(dǎo)分化。
1.3 神經(jīng)誘導(dǎo)分化 取上述經(jīng)消化培養(yǎng)的hPSCs,加入 NIM 培養(yǎng)基[N2(1 ∶100 稀釋)+NEAA(1 ∶100稀釋)+DMEM/F12]重懸細(xì)胞,轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)瓶。每日換液,培養(yǎng)瓶傾斜靜置,待細(xì)胞團(tuán)沉降后,棄去上層培養(yǎng)基,加入 NIM 培養(yǎng)基重懸細(xì)胞團(tuán),置于37 ℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng)箱中。通過免疫熒光染色試驗(yàn)檢測hPSCs向神經(jīng)方向分化的指標(biāo),包括多能性標(biāo)志物 Oct-4,神經(jīng)特性標(biāo)志物 PAX6,ECAD,NCAD,F(xiàn)-actin和 PKCλ等的表達(dá),以驗(yàn)證體外神經(jīng)管模型。在此基礎(chǔ)上,從分化第0 天起在培養(yǎng)體系中加入不同濃度 VPA:0(對照組)、0.1、1 和10 μmol/L進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn),每組重復(fù)3次。
1.4 免疫熒光染色試驗(yàn) 取上述細(xì)胞,用PBS 洗滌1次,4%多聚甲醛固定4 h 后蔗糖脫水,包被后進(jìn)行冰凍切片。PBS 洗滌3 次,10%驢血清+0.2%Triton室溫封閉1 h。分別加入兔抗人OCT4 單克隆抗體,兔抗人PAX6 多克隆抗體,兔抗人ECAD單克隆抗體,小鼠抗人OCT4 單克隆抗體,小鼠抗人NCAD單克隆抗體,小鼠抗人PKCλ單克隆抗體(均為 1 ∶500 稀釋)4 ℃ 過夜。PBS 洗滌 4 次,加入相應(yīng)的山羊抗兔546熒光二抗,山羊抗小鼠488 熒光二抗和細(xì)胞骨架染料 F-actin(1 ∶1 000 稀釋),室溫避光靜置1 h。PBS 洗滌4 次,抗熒光淬滅封片劑封片,于熒光顯微鏡下觀察并拍照。
1.5 逆轉(zhuǎn)錄 PCR(RT-PCR) 用 Trizol 法提取分化第4天細(xì)胞(約1×106個)的RNA樣本。采用Nano-Drop紫外分光光度計(jì)檢測RNA 濃度,選擇RNA 濃度大于 100 ng/μL,吸光度(A260nm/A280nm)值>2.0 的RNA樣本,按照cDNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書操作將1 μg RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,樣本置于-80 ℃保存。
1.6 引物設(shè)計(jì)及實(shí)時熒光定量PCR(qRT-PCR)引物由南京諾唯贊生物科技公司設(shè)計(jì)并合成。GAPDH(GenBank 序列號:NM_001256799)上游引物序列:5′-GGAGCGAGATCCCTCCAAAAT-3′,下游引物序 列:5′-GGCTGTTGTCATACTTCTCATGG-3′,退火溫度61 ℃,產(chǎn)物片段大小為197 bp。OCT4(GenBank 序列號:Z11898)上游引物序列:5′-CTGG GTTGATCCTCGGACCT-3′,下游引物序列:5′-CCAT CGGAGTTGCTCTCCA-3′,退火溫度 61 ℃,產(chǎn)物片段大小為243 bp。PAX6(GenBank序列號NM_001604)上游引物序列:5′-TGGGCAGGTATTACGAGACTG-3′,下游引物序列:5′-ACTCCCGCTTATACTGGGCTA-3′,退火溫度62 ℃,產(chǎn)物片段大小為111 bp。以GAPDH作為內(nèi)參。熒光定量 PCR 反應(yīng)體系為20 μL,包括:ChamQ SYBR qPCR Master Mixure 10 μL,10 μmol/L上、下游引物各 0.4 μL,RNase-free H2O 8.2 μL,cDNA 樣本 1 μL。采用 Step one plus 實(shí)時熒光定量PCR儀檢測,PCR循環(huán)參數(shù):95 ℃預(yù)變性30 s;95 ℃ 10 s,60 ℃ 30 s,共 40 個循環(huán)。使用7500熒光定量PCR系統(tǒng)分析軟件采集熒光信號并進(jìn)行熔解曲線分析,各基因的相對表達(dá)水平以2-ΔΔCt法計(jì)算,公式:ΔΔCt=[(實(shí)驗(yàn)組Ct目的基因-實(shí)驗(yàn)組Ct內(nèi)參基因)-(對照組Ct目的基因-對照組Ct內(nèi)參基因)]。每組設(shè)2個復(fù)孔,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用GraphPad Prism7 軟件進(jìn)行繪圖和統(tǒng)計(jì)分析。對數(shù)據(jù)進(jìn)行正態(tài)性和方差齊性分析,符合正態(tài)分布的數(shù)據(jù)以表示,兩組間比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),多組間比較采用方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 體外神經(jīng)管模型的驗(yàn)證
2.1.1 體外神經(jīng)管模型的建立 鏡下可見hPSCs呈貼壁生長,細(xì)胞克隆邊界清晰;分化第0天hPSCs呈單細(xì)胞懸浮狀態(tài);分化第2天懸浮培養(yǎng)的hPSCs形成細(xì)胞聚集體(擬胚體);擬胚體在第4天發(fā)育為含有中央空腔的三維結(jié)構(gòu)體,即玫瑰花環(huán)樣組織(圖1A)。
2.1.2 多能性向神經(jīng)特性的細(xì)胞命運(yùn)特化 免疫熒光染色結(jié)果顯示,擬胚體中絕大部分細(xì)胞OCT4表達(dá)呈陽性;玫瑰花環(huán)樣組織中OCT4+細(xì)胞明顯減少;分化第6天幾乎沒有細(xì)胞表達(dá)OCT4(圖1B)。qRT-PCR 結(jié)果顯示,OCT4 在分化第 2、4、6 天的相對表達(dá)量分別為 0.89±0.07、0.75±0.08 和 0.38±0.13,且分化第2天與第6 天相對表達(dá)量的差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),證實(shí)分化過程中 OCT4 表達(dá)逐漸減少(圖1C)。擬胚體PAX6 表達(dá)呈陰性;玫瑰花環(huán)樣組織中大部分細(xì)胞PAX6 表達(dá)呈陽性;分化第6 天PAX6 表達(dá)陽性的細(xì)胞增多(圖1D)。qRT-PCR結(jié)果顯示,分化過程中PAX6表達(dá)逐漸增加(圖1E)。
圖1 多能性向神經(jīng)特性的細(xì)胞命運(yùn)特化
2.1.3 細(xì)胞命運(yùn)特化中鈣黏蛋白的轉(zhuǎn)變 免疫熒光染色結(jié)果發(fā)現(xiàn),擬胚體中ECAD主要表達(dá)于細(xì)胞表面;玫瑰花環(huán)樣組織中ECAD表達(dá)陽性區(qū)域減少(圖2A)。擬胚體中NCAD 表達(dá)呈陰性;玫瑰花環(huán)樣組織中NCAD集中表達(dá)于細(xì)胞的頂部區(qū)域,在組織中央形成閉合的環(huán)狀結(jié)構(gòu)(圖2B)。OCT4 與ECAD共同染色結(jié)果發(fā)現(xiàn),擬胚體中 ECAD 與OCT4表達(dá)均呈陽性(圖2C),玫瑰花環(huán)樣組織中NCAD與PAX6均呈陽性表達(dá)(圖2D)。
圖2 分化過程中鈣黏蛋白的轉(zhuǎn)變
2.1.4 lumen 的形成結(jié)果 免疫熒光染色結(jié)果顯示,玫瑰花環(huán)樣組織中F-actin 主要表達(dá)于細(xì)胞的頂部區(qū)域,在組織中央形成神經(jīng)管樣的空腔結(jié)構(gòu)(圖3A)。F-actin熒光強(qiáng)度曲線圖呈雙峰狀,雙峰間的低信號區(qū)域即為lumen(圖3B)。玫瑰花環(huán)樣組織中PKCλ主要分布在組織的頂部,形成神經(jīng)管樣的極化環(huán)(圖3C)。
圖3 lumen的形成示意圖
2.2 VPA對體外神經(jīng)管的致畸性
2.2.1 VPA的濃度篩選 體外神經(jīng)管的直徑統(tǒng)計(jì)結(jié)果顯示,對照組、VPA 0.1 μmol/L、VPA 1 μmol/L和 VPA 10 μmol/L 組的 直 徑 分 別 為 (90.81 ±0.88)μm、(87.14±1.35)μm、(77.19±1.34)μm 和(75.63±0.86)μm(圖 4A)。VPA 10 μmol/L 組以及VPA 1 μmol/L組與對照組比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P 均<0.05);而 VPA 0.1 μmol/L 組與對照組比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P =0.050)。
2.2.2 VPA 對 lumen 形成的影響 VPA 濃度篩選結(jié)果顯示,VPA 1 μmol/L為最低的致畸濃度,故而選擇此濃度進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。免疫熒光染色結(jié)果顯示,VPA 1 μmol/L 組中 F-actin 表達(dá)呈雜亂分布的狀態(tài),未能在神經(jīng)管內(nèi)的頂部區(qū)域聚集形成lumen(圖 4B)。VPA 1 μmol/L 組中 F-actin 的熒光強(qiáng)度曲線與對照組的雙峰形狀不同(圖4C),無明顯低谷樣的低信號區(qū)域(圖4D)。對照組中PKCλ集中分布于神經(jīng)管的中央部位形成極化環(huán),與對照組相比,VPA 1 μmol/L 組中 PKCλ 呈現(xiàn)散亂分布的狀態(tài),其中央的空腔結(jié)構(gòu)失去頂部極性(圖4E)。
圖4 VPA對體外神經(jīng)管的影響
近年來,隨著hPSCs被廣泛應(yīng)用于人類胚胎發(fā)育學(xué)的研究[9-10],有學(xué)者已成功誘導(dǎo)獲得具有l(wèi)umen的玫瑰花環(huán)樣組織,也稱類神經(jīng)管結(jié)構(gòu)[11],表現(xiàn)為多個玫瑰花環(huán)樣組織的聚集狀態(tài)。本研究通過改變體外神經(jīng)誘導(dǎo)的條件,發(fā)現(xiàn)多能性標(biāo)志物OCT4表達(dá)減少與神經(jīng)特性標(biāo)志物PAX6 表達(dá)增加,表明hPSCs在體外分化過程中逐漸喪失多能性,特化為具有神經(jīng)特性的玫瑰花環(huán)樣組織。ECAD與NCAD在分化不同階段表達(dá)模式的改變說明細(xì)胞命運(yùn)特化的過程中存在鈣黏蛋白表達(dá)的時空轉(zhuǎn)變。細(xì)胞骨架標(biāo)志物F-actin 與極性標(biāo)志物PKCλ 在組織頂部區(qū)域的聚集表達(dá)標(biāo)志著重要結(jié)構(gòu)lumen 的形成。因此,筆者利用hPSCs分化獲得的具有單個lumen的體外神經(jīng)管模型不僅在細(xì)胞命運(yùn)和形態(tài)結(jié)構(gòu)等方面可模擬體內(nèi)的神經(jīng)管發(fā)育過程,同時避免了傳統(tǒng)類神經(jīng)管結(jié)構(gòu)中多個玫瑰花環(huán)樣組織聚集狀態(tài)帶來的局限性,與人類中樞神經(jīng)系統(tǒng)由體內(nèi)單個神經(jīng)管發(fā)育而來的過程更為相似。另外,改善后的體外神經(jīng)誘導(dǎo)的方法與過程更為簡易,是探索VPA導(dǎo)致NTDs的疾病發(fā)生機(jī)制的有效實(shí)驗(yàn)平臺。
本研究證實(shí),隨著分化體系中VPA 濃度的增加,體外神經(jīng)管的直徑逐漸減小,表明VPA 對體外神經(jīng)管具有生長抑制作用,且呈劑量依賴性。另外,VPA 1 μmol/L 組中 F-actin 以及 PKCλ 的表達(dá)均呈現(xiàn)雜亂分布,未聚集在細(xì)胞的頂部區(qū)域,導(dǎo)致無法形成具有頂部極性的lumen,這說明VPA通過影響分化過程中關(guān)鍵的細(xì)胞骨架功能和改變細(xì)胞的極化過程,誘發(fā)體外神經(jīng)管分化失敗。已有研究表明,神經(jīng)管畸形的重要發(fā)生機(jī)制之一為平面細(xì)胞極性信號通路(planner cell polarity pathway,PCP),該信號通路可控制細(xì)胞的極性運(yùn)動,并且與細(xì)胞骨架功能緊密相關(guān)[12-13]。因此,筆者推測 VPA 通過影響PCP 通路,改變細(xì)胞極性從而導(dǎo)致細(xì)胞骨架重組,這是VPA導(dǎo)致NTDs的潛在疾病發(fā)生機(jī)制。
綜上所述,本研究利用hPSCs成功建立了體外神經(jīng)管模型,該模型可在細(xì)胞命運(yùn)和形態(tài)結(jié)構(gòu)等方面模擬體內(nèi)的神經(jīng)管發(fā)育過程,但在完整重現(xiàn)神經(jīng)管發(fā)育方面仍有許多局限性,本研究中的模型培養(yǎng)
周期較短,無法體現(xiàn)體內(nèi)神經(jīng)管繼續(xù)發(fā)育的過程。筆者發(fā)現(xiàn)VPA通過影響分化過程中的細(xì)胞骨架功能與細(xì)胞極性破壞體外神經(jīng)管中l(wèi)umen 的形成,并推測PCP 信號通路可能是VPA增加神經(jīng)管畸形發(fā)生風(fēng)險(xiǎn)的潛在致畸機(jī)制,為進(jìn)一步探索VPA 導(dǎo)致NTDs的發(fā)生機(jī)制提供了思路,但其具體分子機(jī)制仍需進(jìn)一步的深入研究。