陳立偉,翟性友,黃邦清,劉宸箐,張永俠,趙建東,劉明波
1 解放軍總醫(yī)院海南醫(yī)院 耳鼻咽喉頭頸外科,海南三亞 572013;2 解放軍總醫(yī)院第六醫(yī)學(xué)中心 耳鼻咽喉頭頸外科醫(yī)學(xué)部,北京 100048
喉癌是頭頸部常見的惡性腫瘤,96% ~ 98%病理類型為鱗狀細(xì)胞癌。當(dāng)前,手術(shù)是治療喉癌的主要手段,而非手術(shù)治療,如放療、化療和免疫治療,已經(jīng)成為可選擇的重要治療手段[1-2]。一項癌癥統(tǒng)計報告顯示,過去40年中喉癌的5年生存率從66%下降至63%,而造成喉癌患者死亡的主要原因是局部的復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移[3-5]。我們試圖在分子水平尋找調(diào)控喉癌發(fā)生發(fā)展的關(guān)鍵因子,以期推進(jìn)喉癌的早期發(fā)現(xiàn)、早期治療和有效生物治療靶點的研究。我們前期在研究喉癌轉(zhuǎn)移機(jī)制時成功建立喉癌淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移動物模型,應(yīng)用喉鱗癌細(xì)胞系Hep-2細(xì)胞注射裸鼠舌緣黏膜下,待腫瘤形成并發(fā)生淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移后,無菌取裸鼠頸部淋巴結(jié),培養(yǎng)轉(zhuǎn)移到淋巴結(jié)的腫瘤細(xì)胞,經(jīng)反復(fù)接種,獲得高轉(zhuǎn)移性Hep-2細(xì)胞亞系。進(jìn)一步應(yīng)用microRNA微陣列基因表達(dá)實驗(LC Sciences,Houston,TX)對親本Hep-2細(xì)胞和高轉(zhuǎn)移性Hep-2細(xì)胞亞系兩組細(xì)胞microRNA表達(dá)譜進(jìn)行檢測和分析,發(fā)現(xiàn)親本喉癌細(xì)胞和高轉(zhuǎn)移性喉癌細(xì)胞亞系中存在明顯的microRNA差異表達(dá)現(xiàn)象。經(jīng)過生物信息學(xué)分析及臨床患者組織標(biāo)本驗證,我們發(fā)現(xiàn)microRNA-25(miR-25)和miR-100可能對喉癌侵襲轉(zhuǎn)移起到重要的調(diào)控作用[6]。本研究通過增加和抑制喉鱗癌細(xì)胞系Hep-2細(xì)胞中miR-25的表達(dá),驗證miR-25對喉鱗癌細(xì)胞侵襲、遷移和增殖功能的影響。
1 試劑和儀器 RPMI-1640培養(yǎng)基、DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清(美國Gibco公司),LipofectamineTM2000(Lip2000,Invitrogen公司)。
2 細(xì)胞培養(yǎng)和細(xì)胞轉(zhuǎn)染 喉鱗癌Hep-2細(xì)胞系由解放軍總醫(yī)院第六醫(yī)學(xué)中心耳鼻咽喉頭頸外科醫(yī)學(xué)部頭頸外科課題組儲存,細(xì)胞在含10%胎牛血清(Gibco)的DMEM培養(yǎng)基中于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。Hep-2細(xì)胞經(jīng)消化、離心后,采用完全培養(yǎng)基進(jìn)行重懸,調(diào)整細(xì)胞密度為4×105/mL,按照6孔板中每孔2 mL細(xì)胞懸液進(jìn)行接種,常規(guī)培養(yǎng)。待細(xì)胞生長狀態(tài)良好,密度達(dá)80%左右時,更換為無血清培養(yǎng)基。實驗設(shè)置5組:1)空白對照組,細(xì)胞不做任何處理;2)Mimic control組:細(xì)胞轉(zhuǎn)染不會引起任何miRNA表達(dá)改變的mimic序列;3)Inhibitor control組:細(xì)胞轉(zhuǎn)染不會引起任何基因表達(dá)改變的Inhibitor序列;4)miR-25 mimic組:細(xì)胞轉(zhuǎn)染miR-25的mimic,序列可以引起miR-25的高表達(dá);5)miR-25 inhibitor組:細(xì)胞轉(zhuǎn)染miR-25的抑制序列,可以降低miR-25的表達(dá)。轉(zhuǎn)染過程:取4個EP管,分別加入不含F(xiàn)BS的1640培養(yǎng)基200 μL,再各自加入轉(zhuǎn)染試劑Lip2000 5 μL,輕吹混勻;取另4個EP管,均加入不含F(xiàn)BS的RPMI 1640培養(yǎng)基200 μL,再加入分別加入Mimic control、miR-25 mimic、Inhibitor control、miR-25 inhibitor 2 μL,輕吹混勻。8個管分別靜置5 min;將加入Mimic control、miR-25 mimic、Inhibitor control、miR-25 inhibitor管中液體分別吸入裝有Lip2000的管內(nèi),共400 μL的Mix,靜置20 min;將Mix滴入6孔板內(nèi),前后左右搖晃10 ~ 15次;置培養(yǎng)箱內(nèi),孵育6 h后更換為含F(xiàn)BS的RPMI 1640培養(yǎng)基;轉(zhuǎn)染24 h后收集各組細(xì)胞,進(jìn)行后續(xù)檢測。
3 RT-qPCR驗證miR-25的表達(dá) 采用 Invitrogen公司的Trizol試劑盒及操作方法提取細(xì)胞總RNA,紫外分光光度法定量后,采用GoScriptTM公司逆轉(zhuǎn)錄試劑盒,取2.5 μg總RNA進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng),逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物采用SYBR Green方法進(jìn)行PCR擴(kuò)增。反應(yīng)條件:預(yù)變性,95℃,2 min;變性,95℃,20 s;退火,60℃,20 s;延伸,72℃,30 s;40個循環(huán);熔解曲線分析:95℃,1 min;60℃,1 min;95℃,30 s。反應(yīng)完成后,采用2-△△Ct法作為相對定量差異表達(dá)的度量。所有反應(yīng)都以U6小核RNA用作內(nèi)參對照,以確定相對microRNA表達(dá)水平。
4 Transwell細(xì)胞侵襲實驗 各組細(xì)胞經(jīng)轉(zhuǎn)染處理后制備成細(xì)胞懸液,調(diào)整細(xì)胞濃度為2×105/mL。用Matrigel(1 mg/mL,美國BD公司)膠包被Transwell小室(孔徑8 μm,美國Corning公司)。取細(xì)胞懸液200 μL加入Transwell上室,下室中加入500 μL的DMEM完全培養(yǎng)基,盡量排除兩室之間的氣泡。培養(yǎng)12 h后取出Transwell小室,用蘸有PBS的棉簽擦去小室上層的細(xì)胞,取下Transwell膜,甲醇固定20 min后,PBS清洗3次,Giemsa染液,染色30 min,PBS清洗3次,棄去PBS后晾干,于顯微鏡下隨機(jī)選取5個視野拍照計數(shù),取平均值為最終結(jié)果。
5 細(xì)胞劃痕實驗 將轉(zhuǎn)染后24 h的各組Hep-2細(xì)胞以1×105/孔接種于24孔板中,待細(xì)胞密度達(dá)到80%以上融合時,棄去上清,保證Tip頭垂直進(jìn)行劃痕,各孔劃痕寬度保持基本一致。采用PBS洗滌3次后向各孔中加入無血清培養(yǎng)基,置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng),間隔48 h后觀察細(xì)胞分布并進(jìn)行拍照。細(xì)胞劃痕愈合率=(0 h劃痕寬度-48 h劃痕寬度)/0 h劃痕寬度×100%。
6 MTT細(xì)胞增殖實驗 收集各組細(xì)胞,以1×103/孔接種細(xì)胞于96孔板中,在含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基中培養(yǎng),分別于第1、2、3、4天加入20 μL MTT(5 mg/mL,美國Sigma-Aldrich公司),培養(yǎng)4 h后,加入150 μL DMSO,振蕩10 min ,使結(jié)晶物充分溶解。490 nm酶聯(lián)免疫檢測儀檢測各孔光吸收值。以時間為橫軸,光吸收值為縱軸,繪制細(xì)胞增殖曲線。
7 統(tǒng)計學(xué)分析 采用Stata軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析。計量資料以x±s表示,兩組間比較用t檢驗,三組間比較用單因素方差分析+多重比較LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
1 Hep-2細(xì)胞中miR-25表達(dá)的變化 轉(zhuǎn)染miR-25 mimic 24 h后,RT-qPCR檢測發(fā)現(xiàn)Hep-2細(xì)胞中miR-25的表達(dá)量是正常對照組的2.48倍(P<0.01),而轉(zhuǎn)染miR-25 inhibitor 24 h后,RT-qPCR檢測發(fā)現(xiàn)Hep-2細(xì)胞中miR-25的表達(dá)量較正常對照組下降了35%(P<0.05)。見圖1。
圖1 RT-qPCR檢測Hep-2細(xì)胞轉(zhuǎn)染miR-25 mimic和miR-25 inhibitor后miR-25表達(dá)變化(aP<0.05,bP<0.01,vs Control)Fig.1 RT-qPCR detection of miR-25 expression after transfection of miR-25 mimic and miR-25 inhibitor (aP<0.05, bP<0.01, vs control)
2 細(xì)胞侵襲能力觀察 Transwell細(xì)胞侵襲實驗顯示,miR-25 mimic轉(zhuǎn)染Hep-2細(xì)胞24 h后,Hep-2細(xì)胞穿過Transwell小室的腫瘤細(xì)胞數(shù)量顯著低于對照組(P<0.01),證明miR-25的高表達(dá)顯著抑制了喉癌Hep-2細(xì)胞的體外侵襲能力。抑制miR-25表達(dá)后,得到了與過表達(dá)miR-25表達(dá)相反的實驗結(jié)果,即Hep-2細(xì)胞的侵襲能力出現(xiàn)顯著增加(P<0.01)。見圖2。
圖2 Hep-2細(xì)胞Transwell侵襲實驗(bP<0.01,vs Control)Fig.2 Transwell cell migration test of Hep-2 cells (bP<0.01, vs control)
3 細(xì)胞遷移能力觀察 Hep-2細(xì)胞中miR-25過表達(dá)后,Hep-2細(xì)胞劃痕愈合率(32.4%±3.05%)顯著低于正常對照組(47.2%±4.324%);而抑制miR-25的表達(dá)后Hep-2細(xì)胞劃痕愈合率(87.2%±5.45%)顯著高于正常對照組。見圖3。
圖3 Hep-2細(xì)胞劃痕實驗(bP<0.01,vs Control)Fig.3 Cell scratch test of Hep-2 cells (bP<0.01, vs control)
4 細(xì)胞增殖能力觀察 MTT細(xì)胞增殖實驗結(jié)果顯示,喉鱗癌Hep-2細(xì)胞轉(zhuǎn)染miR-25 inhibitor、miR-25 mimic后,與正常對照組比,miR-25低表達(dá)組在第3天時腫瘤活細(xì)胞數(shù)量顯著增加,第4天時由于96孔板內(nèi)細(xì)胞覆蓋度達(dá)到100%,導(dǎo)致差異消失。miR-25過表達(dá)組腫瘤活細(xì)胞數(shù)量顯著減少,Hep-2細(xì)胞增殖能力在第3、4天均表現(xiàn)為顯著降低。見圖4。
圖4 Hep-2細(xì)胞MTT增殖實驗 (aP<0.05, bP<0.01,vs Control)Fig.4 MTT cell proliferation test of Hep-2 cells (aP<0.05, bP<0.01,vs control)
MicroRNA是單鏈小型非編碼RNA,含有大約22個核苷酸。MicroRNA通過與mRNA3'端的非翻譯區(qū)結(jié)合,抑制mRNA的翻譯或降解mRNA。大量研究表明,microRNA可以通過調(diào)節(jié)癌細(xì)胞增殖、分化、侵襲、遷移和細(xì)胞凋亡在癌癥中起著關(guān)鍵作用[7-9]。
在所有 microRNA 中,miR-25 是在人類不同癌癥中研究最多、描述最充分的microRNA之一。miR-25在不同癌癥中的作用報道不一,在前列腺癌和結(jié)腸癌中,miR-25表達(dá)降低起到腫瘤抑制劑作用[10]。而在乳腺癌、卵巢癌、胃癌、肝細(xì)胞癌及肺癌中miR-25表達(dá)顯著增加,起到促進(jìn)腫瘤細(xì)胞生長和增殖的致癌作用[11-17]。一項結(jié)腸癌的研究報道,人類結(jié)腸癌組織中的miR-25與匹配的非腫瘤黏膜組織相比,處于低調(diào)節(jié)。有研究表明,miR-25可抑制腫瘤細(xì)胞增殖和遷移,而且是通過調(diào)節(jié)Smad7起作用[18]。miR-25在喉癌中的作用目前仍未明確。我們前期研究發(fā)現(xiàn),在高轉(zhuǎn)移性喉癌細(xì)胞中miR-25的表達(dá)顯著降低,且在喉癌患者腫瘤標(biāo)本中得到驗證[6]。
本研究中,通過轉(zhuǎn)染miR-25 mimic和miR-25 inhibitor分別過表達(dá)和抑制喉鱗癌Hep-2細(xì)胞中的miR-25,發(fā)現(xiàn)miR-25表達(dá)量的下降顯著增加了Hep-2細(xì)胞的體外侵襲遷移能力,并且Hep-2細(xì)胞的體外增殖能力也顯著增加。而miR-25的表達(dá)上調(diào)后,喉癌細(xì)胞的惡性能力顯著下降。提示miR-25在喉鱗癌中起到抑癌作用,與我們前期研究發(fā)現(xiàn)在轉(zhuǎn)移性喉癌組織中miR-25表達(dá)量下降的結(jié)果一致。研究結(jié)果高度提示miR-25作為抑癌因子在喉鱗癌的惡性進(jìn)展中起到至關(guān)重要的作用,進(jìn)一步研究其作用機(jī)制具有較大的臨床價值,可幫助我們尋找喉癌治療的靶點基因。