流場對MEC生物陰極CO2還原性能與產(chǎn)物的影響

徐沛，賈璇，王勇，亓雪嬌，趙玉嬌，李鳴曉

（1 中國環(huán)境科學(xué)研究院，環(huán)境基準(zhǔn)與風(fēng)險(xiǎn)評估國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，北京 100012；2 北京工商大學(xué)，國家環(huán)境保護(hù)食品鏈污染防治重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，北京 100048）

化石燃料的急劇消耗不僅使得全球能源危機(jī)日益加重，還造成溫室氣體猛增，氣候變化成為全球性問題。根據(jù)國際能源署統(tǒng)計(jì)，2015年全球CO排放量為32.4Gt，其中我國排放量占全球總排放量的28%。2020 年，我國在聯(lián)合國大會上提出“碳達(dá)峰”、“碳中和”的目標(biāo)，成為全球碳減排的動力站，碳捕集、利用與封存（carbon capture,utilization and storage,CCUS）技術(shù)成為研究熱點(diǎn)。目前CCUS技術(shù)主要分為物理法和化學(xué)法，利用物理吸附和化學(xué)吸附等手段對CO進(jìn)行捕集，而微生物電化學(xué)法作為一項(xiàng)新興的CCUS技術(shù)，其有著綠色、環(huán)保和效率高等優(yōu)勢。近年來，有學(xué)者采用微生物電解池（microbial electrolysis cell，MEC）進(jìn)行CO捕集與利用。通過MEC 生物陰極的功能微生物電催化作用將CO轉(zhuǎn)化為低碳能源CH或高附加值的小分子平臺化合物，如甲酸、乙酸和丙酸等。Liu 等研究發(fā)現(xiàn)MEC 可以有效地對生物沼氣中的CO進(jìn)行捕集轉(zhuǎn)化，轉(zhuǎn)化率最高可達(dá)22.7%。

利用MEC進(jìn)行CO捕集和還原的過程發(fā)生在生物陰極上。研究表明，生物陰極的電子和質(zhì)子利用效率是限制MEC 還原CO效率的關(guān)鍵因素。因此，提高生物陰極的電子和質(zhì)子利用效率是提高M(jìn)EC還原CO性能的關(guān)鍵。流場是流體在某時刻的空間分布和連續(xù)介質(zhì)運(yùn)動，有研究表明良好的流場可以改善反應(yīng)器內(nèi)的傳質(zhì)效果，提高微生物活性，增強(qiáng)反應(yīng)器性能，而水力循環(huán)條件是影響反應(yīng)器內(nèi)部流場的重要因素之一。目前，關(guān)于流場的研究主要集中在厭氧消化領(lǐng)域，Chou等研究發(fā)現(xiàn)水力循環(huán)優(yōu)化膨脹顆粒污泥床反應(yīng)器的內(nèi)部流場，進(jìn)而增強(qiáng)了基質(zhì)和污泥之間的傳質(zhì)過程，提高了對苯酚的去除效率。Gao 等采用停留時間分布和計(jì)算流體力學(xué)等方法優(yōu)化MEC 中的內(nèi)部流場，使反應(yīng)器的產(chǎn)甲烷性能和有機(jī)物去除性顯著提高。Tavares等提出在厭氧多相流工況下，水力循環(huán)產(chǎn)生的剪切力有利于物料表面生物膜的形成，從而提高了厭氧發(fā)酵速率。黃如一等進(jìn)一步驗(yàn)證了水力循環(huán)在發(fā)酵啟動階段的加速作用，表明了水力循環(huán)在啟動階段的重要性。綜上所述，流場通過改善傳質(zhì)過程，從而對提高產(chǎn)甲烷性能、加快污染物降解以及加速厭氧發(fā)酵階段有著重要的影響，然而流場對MEC 生物陰極還原CO性能及其產(chǎn)物的影響還未有報(bào)道。

本文旨在探究流場提高M(jìn)EC生物陰極CO還原性能和定向調(diào)控產(chǎn)乙酸的重要作用。通過改變陰極室內(nèi)流場環(huán)境，通過質(zhì)子、電子利用效率計(jì)算及微生物群落演替分析，闡明流場與MEC生物陰極CO還原性能、產(chǎn)物的響應(yīng)規(guī)律，為碳達(dá)峰、碳中和戰(zhàn)略的實(shí)施提供理論依據(jù)和技術(shù)支撐。

1 材料與方法

1.1 反應(yīng)器搭建

實(shí)驗(yàn)采用雙室型MEC，有機(jī)玻璃材質(zhì)，反應(yīng)器尺寸為210mm×210mm×150mm，單室有效容積為0.5L，陰陽極室由Nafion117 質(zhì)子交換膜（PEM）隔開。陰極和陽極材料均為石墨氈（10cm×10cm×0.5cm），且垂直放置在陽極和陰極室中，外加直流電源（Keithley2280S-32-6 型）0.8V，采用數(shù)據(jù)采集系統(tǒng)（Keithley Instruments 2700，USA）記錄電壓值，反應(yīng)器結(jié)構(gòu)如圖1所示。

圖1 MEC反應(yīng)裝置示意圖

1.2 MEC啟動與運(yùn)行

在MEC 啟動和運(yùn)行階段，分別設(shè)置循環(huán)組和對照組。循環(huán)組通過蠕動泵連接陰極室的進(jìn)水口和出水口，陰極液循環(huán)流速為60mL/min；對照組不進(jìn)行陰極液的循環(huán)。循環(huán)組和對照組的陽極均為靜態(tài)放置。MEC 反應(yīng)器均采用間歇式進(jìn)料模式，運(yùn)行周期為4天。在啟動階段開始前，分別取150mL的厭氧顆粒污泥和300mL 的營養(yǎng)液加入MEC 的陰極室和陽極室，接入的第一個周期不施加恒電壓，待第二個周期接入電源后，即為啟動周期的開始。陽極和陰極共同營養(yǎng)液成分為：NaHPO，4.09g/L；NaHPO，2.54g/L；NHCl，0.31g/L；KCl，0.13g/L。陽極室以1.00g/L 的CHCOONa 作為碳源，陰極室以1.50g/L的NaHCO作為碳源，維生素與微量元素溶液配方參照文獻(xiàn)[16]。當(dāng)電流密度和陰極產(chǎn)物消耗電子量連續(xù)3 個周期保持穩(wěn)定后視為啟動成功。MEC 啟動成功后去除陰極和陽極室中的厭氧顆粒污泥，進(jìn)入穩(wěn)定運(yùn)行階段。

1.3 分析方法

乙醇和揮發(fā)性脂肪酸（甲酸、乙酸、丙酸、正丁酸和異丁酸）含量分析，采用高效液相色譜法（HPLC，Agilent 1260 Infinity 型，美國），使用210nm 紫外檢測器和Hi-plexH 色譜柱（安捷倫，尺寸7.7′300mm，粒徑8μm） 測定。流動相為0.005mol/L HSO，流速為0.006mL/min。氣體成分及含量測定使用氣相色譜儀（Shimadzu,GC 2010 Pro,日本），色譜條件為：色譜柱采用填充柱（Shimadzu，Molecular Sieve，60/80 mesh），TCD 熱導(dǎo)檢測器，柱溫50℃，進(jìn)樣口溫度100℃，檢測器溫度110℃，電流30mV，載氣為高純氬氣，進(jìn)樣量1mL。

采用高通量測序技術(shù)對MEC 陰極生物膜、陰極液和接種物進(jìn)行檢測。 使用338F （5′-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3′） 和806R （5′-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3′） 對16SrRNA 基因V3-V4 可變區(qū)進(jìn)行PCR 擴(kuò)增，擴(kuò)增程序如下：95℃預(yù)變性3min，27 個循環(huán)（95℃變性30s，55℃退火30s，72℃延伸30s），然后72℃穩(wěn)定延伸10min，最后在4℃進(jìn)行保存（PCR 儀為ABI GeneAmp?9700 型）。 PCR 反應(yīng)體系為： 5×緩沖液4μL，2.5m mol/L dNTPs 2μL，上游引物（5μmol/L） 0.8μL，下游引物（5μmol/L） 0.8μL，DNA 聚合酶0.4μL，模板DNA 10ng，ddHO補(bǔ)足至20μL。每個樣本3 個重復(fù)。本文中出現(xiàn)的高通量樣品編號為：接種物（A）、循環(huán)組陰極生物膜（C2）、對照組陰極生物膜（C1）、循環(huán)組陰極液（S2）以及對照組陰極液（S1）。

1.4 計(jì)算方法

電路電流根據(jù)電阻電壓通過歐姆定律計(jì)算得到，并換算成基于MEC 陽極面積的電流密度。電流密度計(jì)算如式(1)。

式中，為電流密度，mA/m；為數(shù)據(jù)采集器監(jiān)測到的電壓，mV；為外部電阻，Ω；為電極面積，m。

陰極生成產(chǎn)物所消耗的電子量計(jì)算如式(2)。

式中，為產(chǎn)物所消耗的電子量，C；為生成產(chǎn)物的物質(zhì)的量，mol；為1mol 產(chǎn)物所需要的電子數(shù)（8mol e/mol CH，8mol e/mol 乙酸）；是法拉第常數(shù)，96485C/mol。

外電路轉(zhuǎn)移電子量的計(jì)算為式(3)。

式中，為外電路轉(zhuǎn)移電子量，C；為在時間時的電流值，A。

總電子利用效率的計(jì)算如式(4)。

式中，為整體電子利用效率，%；為產(chǎn)物所消耗的電子量，C；為外電路轉(zhuǎn)移電子量，C。

2 結(jié)果與討論

2.1 流場對MEC陰極產(chǎn)物的影響

如圖2(a)所示，未加流場的對照組在啟動和運(yùn)行過程中甲烷產(chǎn)量呈現(xiàn)比較穩(wěn)定的狀態(tài)，甲烷平均產(chǎn)量為0.429mmol。而循環(huán)組在啟動階段甲烷產(chǎn)量逐漸上升，甲烷平均產(chǎn)量達(dá)到0.463mmol且在第四周期達(dá)到最大值（0.800mmol）。這一結(jié)果表明在啟動階段前期通過陰極內(nèi)循環(huán)的方式可以提高M(jìn)EC的產(chǎn)甲烷性能，加快反應(yīng)器的啟動。主要原因可能是當(dāng)反應(yīng)器內(nèi)有足夠的剪切力時，厭氧微生物之間用于代謝物快速運(yùn)輸?shù)臄U(kuò)散距離可以縮短，從而對反應(yīng)器產(chǎn)甲烷性能產(chǎn)生積極影響。然而，在之后的3個周期（第五、第六和第七周期）中，循環(huán)組的甲烷產(chǎn)量顯著降低，陰極開始產(chǎn)乙酸[如圖2(b)所示]，這與啟動階段前3個周期的實(shí)驗(yàn)結(jié)果相反，可能由以下原因?qū)е缕浣Y(jié)果：首先，在啟動階段初期，由于兩組實(shí)驗(yàn)啟動時接種的厭氧顆粒污泥相同，顆粒污泥富含豐富的產(chǎn)甲烷菌；其次，啟動開始的3個周期是陰極生物膜形成階段，此時嗜氫型產(chǎn)甲烷菌利用氫傳遞途徑產(chǎn)甲烷，兩組實(shí)驗(yàn)產(chǎn)甲烷情況相近，循環(huán)組由于流場的影響略高于對照組。隨著反應(yīng)器啟動成功，循環(huán)組陰極生物膜結(jié)構(gòu)在流場作用下發(fā)生改變，由圖6(a)可知，產(chǎn)乙酸菌豐度逐漸提高，同時循環(huán)組陰極也檢測到乙酸的產(chǎn)生。

圖2 陰極甲烷和乙酸產(chǎn)量

圖6 陰極生物膜和陰極液中細(xì)菌在屬水平上的分布

由圖2(b)可知，在整個啟動和運(yùn)行周期內(nèi)，循環(huán)組的平均乙酸產(chǎn)量（0.303mmol）遠(yuǎn)高于對照組（0.0425mmol）。循環(huán)組的乙酸產(chǎn)量總體呈現(xiàn)上升趨勢，并在第7周期達(dá)到最大值（0.630mmol）。而對照組的乙酸產(chǎn)量先上升后下降，且最大值（0.0400mmol）在第4周期取得。據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道，與純產(chǎn)甲烷菌的培養(yǎng)相比，混合接種法可能會產(chǎn)生乙酸等其他副產(chǎn)物。并且在循環(huán)組啟動后期，剪切力可能會破壞產(chǎn)甲烷菌與其他細(xì)菌之間的空間結(jié)構(gòu)，從而削弱了MEC 的產(chǎn)甲烷性能，從而使得陰極產(chǎn)物逐漸由甲烷轉(zhuǎn)變?yōu)橐宜帷?/p>

綜上所述，循環(huán)組在啟動階段的陰極總CO還原產(chǎn)物（甲烷、乙酸）要顯著高于對照組，并且促使MEC生物陰極還原CO產(chǎn)物逐漸由甲烷轉(zhuǎn)變?yōu)橐宜幔砻髁鲌霾粌H提高了生物陰極CO還原能力，還改變了CO轉(zhuǎn)化途徑。

2.2 流場對MEC陰極電子和質(zhì)子利用的影響

圖3(a)顯示的是兩組反應(yīng)器在整個運(yùn)行周期內(nèi)（28 天）電流密度隨時間的變化過程。由圖3(a)可知，在一個運(yùn)行周期內(nèi)，兩組反應(yīng)器的電流密度隨時間呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢。在整個運(yùn)行周期中，循環(huán)組的電流密度逐漸上升，在第四周期達(dá)到峰值（0.350A/m）且在之后保持穩(wěn)定狀態(tài)，此時的甲烷產(chǎn)量也達(dá)到最大（0.800mmol），生成甲烷所消耗的電子量為617.850C。結(jié)合前文以及表1可知，在第七周期，循環(huán)組中的乙酸產(chǎn)量達(dá)到最大值（0.630mmol），此時生成甲烷和乙酸所消耗的電子量為176.430C 和483.950C，該消耗電子總量與第四周期的相近。這說明陽極基質(zhì)氧化產(chǎn)生的質(zhì)子和電子并沒有完全轉(zhuǎn)化為甲烷。對照組的電流密度整體保持穩(wěn)定的水平，峰值為0.260A/m，整體生成甲烷所消耗的電子量約330.900C，該值大約是循環(huán)組的1/2。

圖3 兩組反應(yīng)器在整個運(yùn)行周期內(nèi)電流密度以及pH變化

由表1可以得出，通過積分計(jì)算外電路轉(zhuǎn)移電子量，在第四周期，對照組和循環(huán)組的外電路轉(zhuǎn)移電子量分別為446.470C 和759.380C，此時兩組反應(yīng)器中的陰極產(chǎn)物總量分別為0.580mmol、0.920mmol。再結(jié)合循環(huán)組和對照組的分別為79.33%、89.33%，表明水力循環(huán)方式增大了外電路轉(zhuǎn)移電子量以及相應(yīng)的陰極產(chǎn)物量，并且總電子利用效率也提高了10%。

表1 陰極產(chǎn)物所消耗電子量Q、外電路轉(zhuǎn)移電子量Qw

通過計(jì)算產(chǎn)甲烷和產(chǎn)乙酸所消耗電子量發(fā)現(xiàn)，在對照組中，產(chǎn)甲烷所消耗電子量占比先降后升，波動范圍為72.7%～100%，平均產(chǎn)乙酸所消耗電子量占比為8%。而在循環(huán)組中，產(chǎn)甲烷所消耗電子量占比呈現(xiàn)下降趨勢。第一周期，產(chǎn)甲烷所消耗電子量占比為98%，產(chǎn)乙酸所消耗電子量占比為2%。第七周期，產(chǎn)甲烷所消耗電子量占比為36.4%，產(chǎn)乙酸所消耗電子量占比為63.6%，平均產(chǎn)乙酸所消耗電子量占比為38%，表明隨著運(yùn)行周期的不斷推進(jìn)，電子的利用途徑逐漸從產(chǎn)甲烷過程轉(zhuǎn)變?yōu)楫a(chǎn)乙酸過程。

圖3(b)為兩組反應(yīng)器在整個運(yùn)行周期內(nèi)（28天）pH 隨時間的變化趨勢。由圖3(b)可知，循環(huán)組的pH 范圍為7.09～8.66，該范圍高于對照組（7.05～7.68）。有文獻(xiàn)表明陰極液pH升高可能與陰極生物電催化過程質(zhì)子消耗有關(guān)，pH 隨著產(chǎn)物總量的增大而增大。在第四周期，循環(huán)組的pH 達(dá)到峰值（8.66），此時陰極產(chǎn)物（乙酸、甲烷）總量達(dá)到最大值，表明當(dāng)陰極采取水力循環(huán)的啟動方式時，陰極的質(zhì)子消耗量顯著提高。

可見，水力循環(huán)方式不僅提高了MEC 生物陰極的總電子利用效率（10%），還提高了質(zhì)子的消耗量，增加了MEC 陰極乙酸產(chǎn)量，提高了MEC 生物陰極產(chǎn)乙酸性能。

2.3 流場對MEC陰極微生物群落的影響

2.3.1 MEC陰極微生物群落多樣性

表2列舉了兩組反應(yīng)器陰極和陰極液的微生物群落Alpha 多樣性統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù)。由表2 可知，無論是對照組還是循環(huán)組，微生物群落的豐度和多樣性都比接種物有所提高，表明MEC 陰極的馴化過程對微生物群落結(jié)構(gòu)有著重要的影響。相比于對照組，循環(huán)組中陰極和陰極液的Ace 指數(shù)和Chao 指數(shù)均有所下降，表明流場導(dǎo)致MEC 陰極和陰極液的微生物群落豐度明顯降低。循環(huán)組和對照組的陰極Shannon指數(shù)分別為4.141和3.637，陰極Simpson指數(shù)分別為0.0350和0.0680，表明循環(huán)組的陰極微生物多樣性要低于對照組。而兩組中的陰極液微生物多樣性呈現(xiàn)相反的趨勢，與圖4中陰極和陰極液中的古菌分布趨勢相吻合。這表明陰極水力學(xué)條件會影響到其優(yōu)勢菌群的富集，但是同時也會導(dǎo)致其微生物多樣性和豐度有所下降。

圖4 陰極生物膜和陰極液中古菌在屬水平上的分布（豐度≤0.2%都被歸類于“其他”）

表2 微生物群落Alpha多樣性比較

2.3.2 MEC陰極微生物群落結(jié)構(gòu)演替

接種物（厭氧顆粒污泥）、不同反應(yīng)器陰極生物膜以及陰極液中古菌在屬水平上的分布如圖4所示。由圖4 可知，接種物中的嗜氫型產(chǎn)甲烷菌（）和嗜乙酸型產(chǎn)甲烷菌（）相對豐度分別達(dá)到62.8%、35.7%。將厭氧顆粒污泥接種到MEC 中后，陰極生物膜和陰極液中的古菌相對豐度均發(fā)生了顯著的變化，類似現(xiàn)象也在還原CO產(chǎn)甲烷BES 中被發(fā)現(xiàn)。對照組中陰極生物膜上的嗜氫型產(chǎn)甲烷菌相對豐度最大（59%），其次是嗜乙酸產(chǎn)甲烷菌（39%），這一趨勢與其陰極液中的產(chǎn)甲烷菌豐度變化保持一致。但是在循環(huán)組的陰極生物膜上，嗜乙酸型產(chǎn)甲烷菌的豐度最大，其占比達(dá)到了76%，而嗜氫型產(chǎn)甲烷菌豐度為24%。這一趨勢與其陰極液中的優(yōu)勢產(chǎn)甲烷菌豐度（9.9%、86.1%） 有著顯著的差別。并且相比于接種物，循環(huán)組生物陰極上的嗜乙酸型產(chǎn)甲烷菌豐度提高了大約2倍，其原因可能是嗜乙酸型產(chǎn)甲烷菌的耐剪切能力較強(qiáng)。這一現(xiàn)象與Hoffmann等的研究結(jié)果一致，甲烷絲菌屬（）在厭氧生物膜中是以長絲狀生長，可以在高剪切力的厭氧反應(yīng)器中生長。并且結(jié)合前文內(nèi)容，循環(huán)組后期出現(xiàn)了MEC 陰極產(chǎn)乙酸的現(xiàn)象，產(chǎn)乙酸環(huán)境也有可能導(dǎo)致嗜乙酸型產(chǎn)甲烷菌的富集。度發(fā)生了明顯的變化。在循環(huán)組中，陰極生物膜上的菌群豐度（59.3%）占絕對優(yōu)勢，而陰極液中的相對豐度只占到20.4%，其豐度與（20.1%）相當(dāng)。相反的是，對照組中豐度（35.4%） 大約是陰極液（11%）的3倍?？梢?，流場的變化對生物陰極細(xì)菌豐度有顯著影響。Guo 等研究表明，、和會參與產(chǎn)酸過程，這可能是MEC陰極CO還原過程產(chǎn)乙酸的原因。

圖5 陰極生物膜和陰極液中細(xì)菌在門水平上的分布（豐度≤0.2%都被歸類于“其他”）

如圖6所示，在屬水平上，按照微生物的主要功能，將細(xì)菌菌群分為三大類：與乙酸代謝相關(guān)類、與氫氣相關(guān)類和其他具有重要功能種群。第一類（乙酸相關(guān)類）主要指的是具備產(chǎn)酸或酸降解的細(xì)菌；第二類（氫氣類）主要指的是具備嗜氫或產(chǎn)氫功能的細(xì)菌；第三類（其他類）主要指的是在MEC 還原CO中具有重要功能的種群。從圖6(a)可知，循環(huán)組陰極生物膜上（Cathode2） 的和相對豐度分別達(dá)到11.1%和20.1%，總占比達(dá)到31.2%，遠(yuǎn)遠(yuǎn)大于對照組和接種物中的豐度。和為均可利用有機(jī)碳和氮的化學(xué)自養(yǎng)型微生物，這兩種細(xì)菌的富集可能是因?yàn)檠h(huán)組陰極室大量乙酸的積累。循環(huán)組和對照組中主要的產(chǎn)酸菌是和，總相對豐度分別為11.3% 和7.5%。這兩種菌都是在厭氧條件下產(chǎn)酸的功能微生物。循環(huán)組中的總占比為6.6%，高于對照組（5.9%）。是與產(chǎn)甲烷古菌互養(yǎng)的細(xì)菌，參與種間直接電子傳遞。

由圖6(b)可知，接種物中（3.1%）為優(yōu)勢菌，經(jīng)過馴化后，循環(huán)組和對照組中相對豐度顯著提高，成為優(yōu)勢菌，分別達(dá)到7.5%和17.3%。是一種以氧化H作為能源的自養(yǎng)細(xì)菌，對體系中的質(zhì)子和電子利用有著促進(jìn)作用。

由圖6(c)可知，循環(huán)組中陰極生物膜和陰極液中的相對豐度占比分別達(dá)到1.2%和3.5%，而在對照組中，該菌在陰極生物膜和陰極液中的占比（8.2%、3.3%）呈現(xiàn)相反趨勢，表明流場對該菌在MEC 的分布有一定的影響。是一種硫酸鹽還原菌，研究發(fā)現(xiàn)其與氫營養(yǎng)型產(chǎn)甲烷菌存在互養(yǎng)關(guān)系。此外，據(jù)報(bào)道的外膜中含有不同類型的細(xì)胞色素，表明可能參與了電極上的電子傳遞過程。

綜上所述，循環(huán)組陰極室的產(chǎn)酸菌（、）豐度（11.3%）顯著高于對照組（7.5%），乙酸降解菌（、）為循環(huán)組陰極生物膜上的優(yōu)勢菌屬，表明流場促使生物陰極功能微生物群落由產(chǎn)甲烷菌為主向產(chǎn)乙酸菌演替。

3 結(jié)論

（1）流場不僅提高了MEC生物陰極的CO還原能力，還使其CO轉(zhuǎn)化途徑由啟動階段的產(chǎn)甲烷為主轉(zhuǎn)變?yōu)檫\(yùn)行階段的產(chǎn)乙酸為主。

（2）流場促使循環(huán)組中生物陰極上的優(yōu)勢產(chǎn)甲烷菌由嗜氫型產(chǎn)甲烷菌轉(zhuǎn)變?yōu)槭纫宜嵝彤a(chǎn)甲烷菌，并且產(chǎn)酸菌（、）豐度相較于對照組提高了1.5 倍，表明流場顯著影響生物陰極以及陰極液的微生物群落結(jié)構(gòu)。

（3）該研究進(jìn)一步驗(yàn)證了流場對MEC還原CO生物陰極有著重要的影響，可為MEC還原CO產(chǎn)乙酸的定向調(diào)控研究提供理論和技術(shù)支撐。