趙 晶,施開創(chuàng),劉惠心,尹彥文,龍 鳳,陸文俊,屈素潔,司紅彬*
(1.廣西大學(xué) 動(dòng)物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,廣西 南寧 530005;2.廣西動(dòng)物疫病預(yù)防控制中心,廣西 南寧 530001)
豬圓環(huán)病毒(porcine circovirus,PCV)是一種無(wú)囊膜單鏈環(huán)狀DNA病毒,屬于圓環(huán)病毒科圓環(huán)病毒屬成員,是目前已知最小的動(dòng)物病毒,迄今已發(fā)現(xiàn)PCV1、PCV2、PCV3和PCV4四種病毒[1-2]。PCV1于1974年首次在豬腎細(xì)胞系(PK-15)培養(yǎng)物中發(fā)現(xiàn),是非致病性病毒[3],但最近的研究發(fā)現(xiàn)PCV1能在55日齡的豬胎兒肺中有效復(fù)制并產(chǎn)生病理變化,對(duì)豬肺泡巨噬細(xì)胞有一定的影響[4]。PCV2最早是在20世紀(jì)90年代初從患有斷奶仔豬多系統(tǒng)衰竭綜合征(PMWS)的豬中分離到,可以引起PCV相關(guān)疾病(PCVAD),包括PMWS、豬皮炎與腎病綜合征(PDNS)和母豬繁殖障礙等[5]。PCV3是2016年報(bào)道的一種新型PCV,可以引起母豬繁殖障礙、PDNS等[6]。PCV4作為新近發(fā)現(xiàn)的一種病毒,其潛在影響尚待驗(yàn)證[2]。當(dāng)前,PCV2、PCV3在世界各主要養(yǎng)豬國(guó)家普遍流行,造成巨大的經(jīng)濟(jì)損失。迄今,PCV2、PCV3在我國(guó)大多數(shù)省份均有報(bào)道[7],部分省份也有報(bào)道PCV1在豬群中的存在[2,8]。
當(dāng)前,PCV1、PCV2、PCV3在世界各國(guó)的豬群中普遍存在[9-10],并且在病豬的臨床組織樣品中發(fā)現(xiàn)PCV2與PCV3存在混合感染現(xiàn)象[11-12]。由于PCV2、PCV3均可以導(dǎo)致母豬繁殖障礙、PDNS、PMWS等,其臨床癥狀和病理變化難以區(qū)分,須經(jīng)實(shí)驗(yàn)室病原檢測(cè)和診斷。迄今,已報(bào)道有鑒別檢測(cè)PCV1+PCV2的多重PCR[13]和多重?zé)晒釶CR[14],PCV2+PCV3的多重PCR[15-16]、多重?zé)晒釶CR[17-18]、多重?cái)?shù)字PCR[19],PCV1+PCV2+PCV3的多重PCR[20],PCV1+PCV2+PCV3+PCV4的多重?zé)晒釶CR[21]。但是,迄今鑒別檢測(cè)PCV1、PCV2、PCV3的多重PCR和多重?zé)晒釶CR的報(bào)道仍然很少。本研究目的是針對(duì)PCV1、PCV2、PCV3設(shè)計(jì)特異性引物,建立同時(shí)檢測(cè)并區(qū)分PCV1、PCV2和PCV3的三重PCR方法,并應(yīng)用于臨床流行病學(xué)調(diào)查以掌握當(dāng)前廣西省PCV的流行狀況,為有效防控該疾病提供技術(shù)方法和基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。
1.1 病毒株與臨床樣品PCV2疫苗株(SX07株)、豬瘟病毒(CSFV)疫苗株(C株)、豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)疫苗株(TJM-F92株)、偽狂犬病病毒(PRV)疫苗株(Bartha-K61株)、豬口蹄疫病毒(FMDV)O型疫苗株(O/Mya98/XJ/2010株)、豬細(xì)小病毒(PPV)疫苗株(N株)、豬流行性腹瀉病毒(PEDV)疫苗株(CV777株)、豬傳染性胃腸炎(TGEV)疫苗株(H株)、PCV1和PCV3臨床陽(yáng)性樣品,均來(lái)自于廣西動(dòng)物疫病預(yù)防控制中心實(shí)驗(yàn)室,保存在-80℃?zhèn)溆?。從廣西各地采集的來(lái)自2018—2020年1 312頭豬的病料,每頭豬均包括脾臟、肺臟、肝臟、腎臟、扁桃體和淋巴結(jié)等組織樣品,-40℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2 主要試劑核酸提取試劑盒、Premix Taq、DNA Marker、膠回收試劑盒、pMD18-T載體、DH5α感受態(tài)細(xì)胞、質(zhì)粒抽提試劑盒均購(gòu)自寶生物工程(大連)有限公司;Solar Red 核酸染料購(gòu)自北京索萊寶科技有限公司。
1.3 引物設(shè)計(jì)根據(jù)GenBank登錄的PCV1、PCV2和PCV3基因組序列,通過(guò)多序列比對(duì),選擇PCV1 BJ-1株(登錄號(hào):FJ475129)、PCV2 HX株(登錄號(hào):KC860786)和PCV3 PCV3-US/MO2015株(登錄號(hào):KX778720)作為參考序列,針對(duì)保守區(qū)域設(shè)計(jì)3對(duì)特異性引物(表1),用于檢測(cè)PCV1、PCV2和PCV3。
表1 引物信息
1.4 重組質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品的構(gòu)建以核酸提取試劑盒提取PCV2疫苗毒和PCV1、PCV3陽(yáng)性樣品的總DNA為模板,利用設(shè)計(jì)的特異性引物擴(kuò)增目的基因片段。PCR反應(yīng)體系25 μL:Premix Taq 12.5 μL,上、下游引物(25 μmol/L)0.4 μL,模板2.5 μL,滅菌雙蒸水補(bǔ)足25 μL。PCR反應(yīng)程序:95℃ 3 min;94℃ 30 s,56℃ 30 s,72℃ 40 s,共35個(gè)循環(huán);72℃ 10 min。經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳鑒定后,通過(guò)膠回收試劑盒回收、純化PCR產(chǎn)物,連接到pMD18-T載體中,轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細(xì)胞,涂板,篩選陽(yáng)性重組克隆菌,經(jīng)PCR鑒定后抽提質(zhì)粒并測(cè)序鑒定。
通過(guò)分光光度計(jì)在260 nm和280 nm處測(cè)定D值,計(jì)算質(zhì)粒濃度,并通過(guò)如下公式換算成拷貝數(shù):拷貝數(shù)/μL=6.02×1023×質(zhì)粒濃度×10-9/(660×質(zhì)粒總堿基數(shù))。
1.5 三重PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化為了獲得最佳的反應(yīng)條件,利用構(gòu)建的重組質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品,采取排列組合方法,在保持其他條件不變的情況下,通過(guò)改變單一反應(yīng)條件,分別對(duì)反應(yīng)體系的引物終濃度(0.20,0.25,0.30,0.35,0.40,0.45,0.50,0.55 μmol/L)、退火溫度(51 ~60℃)和循環(huán)次數(shù)(20,25,30,35,40個(gè)循環(huán))進(jìn)行優(yōu)化,以獲得最佳的反應(yīng)條件。
1.6 敏感性試驗(yàn)將質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品p-PCV1、p-PCV2和p-PCV3等比例混合后進(jìn)行10倍倍比稀釋,使3種質(zhì)粒濃度均為1010~100拷貝/μL,作為模板,對(duì)所建立的三重PCR進(jìn)行敏感性試驗(yàn)。
1.7 特異性試驗(yàn)以PCV1、PCV2、PCV3 DNA以及CSFV、PRRSV、PRV、FMDV、PPV、TGEV、PEDV的DNA或cDNA為模板,對(duì)所建立的三重PCR進(jìn)行特異性試驗(yàn)。
1.8 重復(fù)性試驗(yàn)選取質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品p-PCV1、p-PCV2和p-PCV3濃度為1.09×107拷貝/μL的等比例混合物作為模板,對(duì)所建立的三重PCR進(jìn)行重復(fù)性試驗(yàn)。進(jìn)行5次重復(fù)試驗(yàn),每次間隔1周。
1.9 臨床樣品檢測(cè)隨機(jī)選取242份臨床樣品,同時(shí)應(yīng)用本研究所建立的三重PCR方法與之前報(bào)道的熒光定量PCR方法[14,17],對(duì)PCV1、PCV2和PCV3進(jìn)行檢測(cè),并計(jì)算兩種方法檢測(cè)結(jié)果的符合率。隨機(jī)選取15個(gè)陽(yáng)性樣品的PCR產(chǎn)物,回收并送英濰捷基(上海)貿(mào)易有限公司進(jìn)行測(cè)序以驗(yàn)證檢測(cè)結(jié)果。
應(yīng)用本研究所建立的三重PCR方法對(duì)2018—2020年采集自廣西各地的1 308份病料樣品進(jìn)行檢測(cè)。通過(guò)凝膠電泳判定檢測(cè)結(jié)果,出現(xiàn)預(yù)期大小183,544,344 bp條帶者判為陽(yáng)性,未出現(xiàn)目的條帶者判為陰性。
1.10 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析針對(duì)不同年度、季節(jié)、地區(qū)和病種,利用卡方檢驗(yàn)計(jì)算器V1.70發(fā)生數(shù)格式和配對(duì)資料對(duì)檢測(cè)結(jié)果計(jì)算卡方進(jìn)行差異性分析,當(dāng)P≤0.05為差異顯著,P>0.05為差異不顯著。
2.1 重組質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品的構(gòu)建以提取的PCV1、PCV2和PCV3總DNA為模板,利用特異性引物PCV1-F/R、PCV2-F/R和PCV3-F/R進(jìn)行擴(kuò)增,獲得與預(yù)期大小一致的183,544,344 bp擴(kuò)增片段。產(chǎn)物經(jīng)回收、連接、轉(zhuǎn)化,陽(yáng)性克隆提取質(zhì)粒,經(jīng)PCR、測(cè)序驗(yàn)證后,重組質(zhì)粒分別命名為p-PCV1、p-PCV2和p-PCV3,作為陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)品。經(jīng)紫外分光光度計(jì)測(cè)定濃度,計(jì)算成拷貝數(shù),獲得p-PCV1、p-PCV2和p-PCV3濃度分別為1.09×1010,2.97×1010,2.36×1010拷貝/μL。將3種質(zhì)粒用雙蒸水稀釋成1.09×1010拷貝/μL,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
2.2 三重PCR反應(yīng)條件的確定經(jīng)過(guò)一系列優(yōu)化反應(yīng)條件后,最終確立三重PCR反應(yīng)條件如下:反應(yīng)體系25 μL:Premix Taq 12.5 μL,上、下游引物(25 μmol/L)0.3 μL,模板2.5 μL,滅菌雙蒸水補(bǔ)足至25 μL。反應(yīng)程序:預(yù)變性95℃ 5 min;變性94℃ 30 s,復(fù)性54.5℃ 30 s,延伸72℃ 40 s,35個(gè)循環(huán)后;72℃ 10 min。應(yīng)用所建立的三重PCR,以標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒p-PCV1、p-PCV2和p-PCV3作為模板進(jìn)行擴(kuò)增的結(jié)果見圖1。
M.DL2000 DNA Marker;1.標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒p-PCV1、p-PCV2和p-PCV3混合物;2.p-PCV1;3.p-PCV2;4.p-PCV3;5.ddH2O
2.3 敏感性試驗(yàn)以10倍倍比稀釋的p-PCV1、p-PCV2和p-PCV3三種質(zhì)粒的混合物作為模板,檢測(cè)三重PCR敏感性。結(jié)果,p-PCV1、p-PCV2和p-PCV3 的檢測(cè)下限分別為1.09×103,1.09×101,1.09×102拷貝/μL(初始質(zhì)粒濃度),具有良好的敏感性(圖2)。
M.DL2000 DNA Marker;1~11.初始質(zhì)粒濃度為1010~100 拷貝/μL;12.ddH2O
2.4 特異性試驗(yàn)應(yīng)用所建立的三重PCR方法對(duì)包括PCV1、PCV2、PCV3以及養(yǎng)豬場(chǎng)常見的重要病毒進(jìn)行檢測(cè)以驗(yàn)證其特異性。結(jié)果顯示,該方法只能擴(kuò)增出PCV1、PCV2和PCV3目的片段,而CSFV、PRRSV、PRV、FMDV、PPV、TGEV、PEDV和ddH2O則未能擴(kuò)增出條帶(圖3),表明所建立的三重PCR方法具有良好的特異性。
M.DL2000 DNA Marker;1.標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒p-PCV1、p-PCV2 和p-PCV3混合物;2.PCV1;3.PCV2;4.PCV3;5.CSFV;6.PRRSV;7.PRV;8.FMDV;9.PPV;10.TGEV;11.PEDV;12.ddH2O
2.5 重復(fù)性試驗(yàn)以濃度均為1.09×107拷貝/μL的p-PCV1、p-PCV2和p-PCV3三種質(zhì)?;旌衔餅槟0?,驗(yàn)證所建立三重PCR方法的重復(fù)性。結(jié)果顯示,5次反應(yīng)均能擴(kuò)增出均勻一致的目的條帶,表明該方法具有良好的重復(fù)性(圖4)。
M.DL2000 DNA Marker;1~5.標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒p-PCV1、p-PCV2和p-PCV3 混合物;6.ddH2O
2.6 臨床樣品檢測(cè)
2.6.1符合率的比較 隨機(jī)選取242份組織病料,同時(shí)應(yīng)用所建立的三重PCR方法與文獻(xiàn)報(bào)道的熒光定量PCR檢測(cè)方法[14,17]進(jìn)行檢測(cè)。結(jié)果顯示,PCV1、PCV2、PCV3的陽(yáng)性率分別為4.55%(11/242),64.46%(156/242),7.02%(17/242),PCV1+PCV2、PCV1+PCV3、PCV2+PCV3混合感染陽(yáng)性率分別3.31%(8/242),0.83%(2/242),6.20%(15/242),兩種方法檢測(cè)結(jié)果的符合率分別為98.70%,95.51%,97.83%(表2)。隨機(jī)抽取15份陽(yáng)性樣品的擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行回收和測(cè)序,證實(shí)為PCV1、PCV2和PCV3的目的片段。
表2 242份臨床樣品檢測(cè)結(jié)果 %
2.6.22018—2020年廣西各地臨床樣品檢測(cè)結(jié)果 應(yīng)用所建立的三重PCR方法,檢測(cè)2018—2020年采集自廣西各地的1 308份組織病料。結(jié)果由表3可見,2018—2020年,PCV1、PCV2和PCV3的陽(yáng)性率分別為2.14%,56.65%,5.58%,病毒間陽(yáng)性率差異顯著(P≤0.05);其間,PCV1陽(yáng)性率分別為2.45%,2.51%,0.00%,2020年顯著下降(P≤0.05);PCV2陽(yáng)性率分別為67.00%,50.00%,32.39%,逐年顯著下降(P≤0.05);PCV3陽(yáng)性率分別5.76%,5.02%,6.25%,各年間差異不顯著(P>0.05)。
表3 1 308份臨床樣品檢測(cè)結(jié)果 %
2.6.3病原時(shí)間分布 將2018—2020年1 308份臨床樣品的檢測(cè)結(jié)果按季度匯總后進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。結(jié)果由表4可見,PCV1在第一、三、四季度陽(yáng)性率差異不顯著(P>0.05),第二季度陽(yáng)性率顯著下降(P≤0.05);PCV2在第一、二季度陽(yáng)性率比第三、四季度陽(yáng)性率顯著下降(P≤0.05),而在第一、二季度之間和第三、四季度之間陽(yáng)性率差異不顯著(P>0.05);PCV3在第一、四季度陽(yáng)性率顯著低于第三季度陽(yáng)性率(P≤0.05),而第一、二、四季度之間陽(yáng)性率差異不顯著(P>0.05)。
表4 1 308份臨床樣品檢測(cè)結(jié)果季度統(tǒng)計(jì)表 %
2.6.4病原地區(qū)分布 將2018—2020年1 308份臨床樣品的檢測(cè)結(jié)果按地區(qū)匯總后進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。結(jié)果由表5可見,PCV1在河池市陽(yáng)性率最高(4.00%),在南寧市、欽州市和玉林市未能檢出(0.00%);PCV2在北海市陽(yáng)性率最高(79.80%),在欽州市陽(yáng)性率最低(22.22%);PCV3在欽州市陽(yáng)性率最高(8.33%),在北海市陽(yáng)性率最低(1.66%)。PCV1、PCV2、PCV3的陽(yáng)性率在部分地區(qū)之間差異顯著(P≤0.05)。
表5 1 308份臨床樣品檢測(cè)結(jié)果地區(qū)統(tǒng)計(jì)表 %
2.6.5混合感染情況 將2018—2020年1 308份臨床樣品的混合感染情況進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。結(jié)果由表6可見,混合感染率達(dá)到5.58%,其中,PCV2+PCV3(3.52%)、PCV1+PCV2(1.83%)以及PCV1+PCV3(0.15%)和PCV1+PCV2+PCV3(0.08%)之間的混合感染率差異顯著(P≤0.05)。
表6 1 308份臨床樣品檢測(cè)結(jié)果混合感染統(tǒng)計(jì)表
由于PCV2、PCV3在世界各國(guó)豬群的普遍流行,其所致豬的多種疾病,給養(yǎng)豬業(yè)造成巨大的損失,而PCV2與PCV3的混合感染更加重了這些疫病的復(fù)雜性和危害性[11-12]。由于PCV2和PCV3所致臨床癥狀和病理變化具有相似性,臨床上難以區(qū)分,加上PCV1在豬群中的普遍存在對(duì)養(yǎng)豬業(yè)具有的潛在危害[4],需要對(duì)3種病毒加以鑒別檢測(cè),以準(zhǔn)確診斷該疫病。為此,本研究試圖建立鑒別檢測(cè)PCV1、PCV2和PCV3的三重PCR方法。
在建立三重PCR過(guò)程中,引物是影響三重PCR擴(kuò)增效率和特異性最重要的因素[22]。為此,本研究先對(duì)大量PCV1、PCV2、PCV3毒株的基因序列進(jìn)行比對(duì),選取病毒基因組的高度保守區(qū)域,設(shè)計(jì)針對(duì)不同保守區(qū)域的3對(duì)特異性引物,且擴(kuò)增PCV1(183 bp)、PCV2(544 bp)、PCV3(344 bp)的片段大小差異在100 bp以上,以便于瓊脂糖凝膠電泳判定時(shí)區(qū)分條帶。另外,需要考慮優(yōu)化反應(yīng)的最佳條件[23]。本研究應(yīng)用的商品化Premix Taq PCR反應(yīng)預(yù)混液,已包括反應(yīng)所需的PCR緩沖液、Taq聚合酶、dNTP和Mg2+,并且是經(jīng)過(guò)優(yōu)化的最適比例,因此只需對(duì)引物濃度、退火溫度和反應(yīng)循環(huán)數(shù)進(jìn)行優(yōu)化。最終,確定3對(duì)引物的最佳終濃度均為0.3 μmol/L,最佳退火溫度為54.5℃,最佳循環(huán)數(shù)為35個(gè)循環(huán),并且PCV1、PCV2、PCV3最低檢出下限分別達(dá)到1.09×103,1.09×101,1.09×102拷貝/μL(初始質(zhì)粒濃度),成功建立了鑒別檢測(cè)PCV1、PCV2和PCV3的三重PCR方法,實(shí)現(xiàn)了在一個(gè)反應(yīng)體系中同時(shí)擴(kuò)增3個(gè)目的片段、鑒別3種病毒的目標(biāo)。
應(yīng)用所建立的PCV1、PCV2和PCV3三重PCR方法,對(duì)2018—2020年采集自廣西各地的1 308 份病料樣品進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果PCV1、PCV2和PCV3陽(yáng)性率分別為2.14%,56.65%,5.58%,表明PCV在廣西豬群中廣泛流行,尤其是PCV2的感染率高達(dá)56.65%。LIU等[7]統(tǒng)計(jì)涉及我國(guó)PCV2流行情況的53篇報(bào)道,2015—2019年21個(gè)省平均陽(yáng)性率46.0%(14 230/29 051),其中上海最低(4.7%)、新疆最高(86.3%);XIA等[24]報(bào)道,2015—2018年從我國(guó)10個(gè)省采集的樣品,PCV2平均陽(yáng)性率為50%;這些結(jié)果表明,PCV2在我國(guó)豬群流行極為嚴(yán)重。由于PCV2感染可以抑制機(jī)體的免疫功能[25],除了PCV2相關(guān)疫病的損失外,還會(huì)降低其他疫病的疫苗免疫效果[26-27],導(dǎo)致混合感染、繼發(fā)感染其他疫病,造成更大的經(jīng)濟(jì)損失[11-12],應(yīng)加強(qiáng)PCV2的疫苗免疫和綜合防控措施,減少PCV2所致的各種危害和損失。值得注意的是,PCV3作為2016年才發(fā)現(xiàn)的新病原,QI等[28]報(bào)道2015—2017年我國(guó)21個(gè)省174個(gè)豬場(chǎng)中豬場(chǎng)水平的陽(yáng)性率為24.1%(42/174)、樣品水平的陽(yáng)性率為12.2%,HA等[29]報(bào)道2016—2019年我國(guó)10個(gè)省271個(gè)豬場(chǎng)中豬場(chǎng)水平的陽(yáng)性率達(dá)到74.2%(201/271)、樣品水平的陽(yáng)性率高達(dá)29.3%(1 200/4 094),對(duì)養(yǎng)豬業(yè)的危害日益顯現(xiàn)。本研究發(fā)現(xiàn)2018—2020年P(guān)CV3在廣西病料樣品的平均陽(yáng)性率達(dá)5.58%,略低于其他省份,但PCV3的危害仍然不可輕視。至于PCV1、PCV2、PCV3的混合感染,國(guó)內(nèi)外均有報(bào)道[10,20],而本研究發(fā)現(xiàn)2018—2020年廣西各地PCV1+PCV2、PCV1+PCV3和PCV2+PCV3混合感染的陽(yáng)性率分別為1.83%,0.15%,3.51%,其危害有待進(jìn)一步評(píng)估。
對(duì)PCV1、PCV2、PCV3的時(shí)間、空間分布進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),首先,PCV1、PCV2的陽(yáng)性率逐年下降,PCV3則穩(wěn)定控制。尤其是PCV2在2018—2020年間陽(yáng)性率顯著下降(P≤0.05),這可能與2018年非洲豬瘟在我國(guó)暴發(fā)后,散戶比例明顯下降,而各規(guī)模豬場(chǎng)高度重視動(dòng)物疫病的綜合防控,大力加強(qiáng)生物安全體系構(gòu)建與運(yùn)行管理,豬場(chǎng)的整體衛(wèi)生條件和健康水平大大提高有關(guān)。其次,不同季節(jié)PCV1、PCV2、PCV3的陽(yáng)性率也有差異,第三、四季度的病原陽(yáng)性率顯著提高,可能與廣西秋冬季節(jié)天氣持續(xù)陰冷、潮濕,致使豬群應(yīng)激較大,且此季節(jié)豬群飼養(yǎng)量較大、豬群密度大有關(guān)。再次,PCV1、PCV2、PCV3的陽(yáng)性率在不同地市之間也有差異,可能與各地區(qū)養(yǎng)豬業(yè)規(guī)模化程度、管理水平有關(guān)。值得注意的是,PCV2陽(yáng)性率逐年下降,對(duì)提高豬群整體健康和免疫水平極為重要,可以提高豬群的疫苗免疫效果和降低豬群感染其他疫病的幾率。最后,PCV3在2016年被發(fā)現(xiàn)以來(lái),許多國(guó)家均有報(bào)道[9-10],國(guó)內(nèi)多數(shù)省份已有報(bào)道[7]。本研究中,廣西各地PCV3在2018—2020年的陽(yáng)性率分別為5.76%,5.02% 和6.25%,處于穩(wěn)定控制狀態(tài),低于上述報(bào)道的國(guó)內(nèi)其他省份陽(yáng)性率[28-29],但仍需持續(xù)關(guān)注并做好各項(xiàng)綜合防控措施。
綜上所述,本研究建立了一種快速、特異、靈敏、便利的PCV1、PCV2和PCV3三重PCR方法,可用于鑒別檢測(cè)3種PCV,為臨床樣品的檢測(cè)和流行病學(xué)調(diào)查提供了有效的技術(shù)方法。流行病學(xué)調(diào)查結(jié)果表明,PCV2、PCV3在廣西各地豬群廣泛流行,應(yīng)該加強(qiáng)PCV2的疫苗免疫和豬圓環(huán)病毒病的綜合防控,減少PCV對(duì)我國(guó)養(yǎng)豬業(yè)的危害和損失。