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    槲皮素基于EGFR信號(hào)通路減輕大鼠氣道黏液高分泌①

    2022-07-21 09:08:38鄔勛平陶禹至劉維佳貴州大學(xué)醫(yī)學(xué)院貴陽(yáng)550025
    中國(guó)免疫學(xué)雜志 2022年8期
    關(guān)鍵詞:杯狀槲皮素黏液

    鄔勛平 陶禹至 劉 琳 韓 婧 劉維佳 (貴州大學(xué)醫(yī)學(xué)院,貴陽(yáng) 550025)

    氣道黏液高分泌是慢性阻塞性肺疾?。╟hronic obstructive pulmonary disease,COPD)、支氣管哮喘和囊性纖維化(cystic fibrosis,CF)等氣道炎癥性疾病進(jìn)展過(guò)程中的一個(gè)重要的病理生理特征,是影響COPD、支氣管哮喘及CF 病情和預(yù)后的獨(dú)立危險(xiǎn)因素[1-4]。越來(lái)越多的研究表明表皮生長(zhǎng)因子受體(epithelial growth factor receptor,EGFR)在氣道黏液高分泌的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路中居于中心地位,當(dāng)EGFR被激活時(shí),會(huì)產(chǎn)生過(guò)量的黏液,導(dǎo)致氣道受阻[5]。目前治療氣道黏液高分泌的祛痰藥物眾多,大多為化學(xué)合成類(lèi)藥物,由于其毒副作用在臨床應(yīng)用上受到一定的限制,因此尋找毒副作用小,祛痰效果顯著的天然藥物成為研究重點(diǎn)之一。槲皮素作為一種植物天然來(lái)源的藥物,具有抗炎、抗氧化、抗癌等生物學(xué)活性,但槲皮素是否能夠減輕氣道黏液高分泌及其分子調(diào)控機(jī)制目前仍不清楚。本研究通過(guò)脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)誘導(dǎo)大鼠氣道黏液高分泌模型,探討槲皮素對(duì)氣道黏液高分泌的作用以及對(duì)EGFR信號(hào)通路調(diào)控情況。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 經(jīng)過(guò)貴州省人民醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(審查批號(hào):202019-010),選擇SPF 級(jí)6~8 周齡雄性SD 大鼠36 只,購(gòu)自遼寧省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物質(zhì)量檢測(cè)中心,體質(zhì)量(180±20)g。飼養(yǎng)環(huán)境溫度(25±1)℃,濕度45%~55%;自由進(jìn)食飲水,適應(yīng)性喂養(yǎng)1周。

    1.1.2 主要試劑 槲皮素、LPS 購(gòu)自美國(guó)Sigma 公司;小鼠單克隆抗EGFR、p-EGFR、MUC5AC 抗體購(gòu)自美國(guó)Santa Cruz 公司;小鼠單克隆PI3K抗體、兔多克隆抗PKC 抗體購(gòu)自武漢三鷹;兔多克隆抗NF-κB p65 抗體購(gòu)自北京博奧森公司;兔多克隆抗p-PI3K、p-PKC、AKT、p-AKT 抗體購(gòu)自上海艾比瑪特公司;HRP 標(biāo)記的山羊抗小鼠二抗、HRP 標(biāo)記的山羊抗兔二抗購(gòu)自美國(guó)Abcam;黏蛋白5AC(MUC5AC)ELISA試劑盒購(gòu)自武漢云克??;Trizol 試劑購(gòu)自美國(guó)Invitrogen 公司;逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、熒光定量PCR 試劑盒購(gòu)自日本TaKaRa 公司;HE 染色試劑盒、AB-PAS試劑盒購(gòu)自北京索萊寶公司。

    1.2 方法

    1.2.1 氣道黏液高分泌大鼠模型的建立與分組將SD大鼠隨機(jī)分為6組,每組6只,對(duì)照組(Control)、脂多糖組(LPS)、槲皮素低劑量組(Que-L)、槲皮素中劑量組(Que-M)、槲皮素高劑量組(Que-H)、AG1478組;所有實(shí)驗(yàn)大鼠用4%戊巴比妥(50 mg/kg)腹腔內(nèi)注射麻醉后,在頸部環(huán)狀軟骨下方做皮膚切口,鈍性分離暴露氣管,LPS 組、Que-L 組、Que-M 組、Que-H 組、AG1478 組用2 mg/ml 的LPS 按3 mg/kg 氣管內(nèi)緩慢注入,Control 組用相同體積的0.9%氯化鈉氣管內(nèi)注入。氣管給藥前1 h Que-L、Que-M、Que-H劑量組分別給予50、100、200 mg/kg槲皮素溶液灌胃,AG1478 組氣管給藥前30 min 于腹腔注射AG1478 20 mg/kg,Control 組和LPS 組氣管給藥前1 h 灌胃相應(yīng)體積的0.9%氯化鈉,1次/d,連續(xù)4 d。

    1.2.2 HE 染色觀察肺組織病理學(xué)變化及肺組織炎癥積分 將大鼠用4%戊巴比妥腹腔麻醉后,暴露心臟,取右中肺組織于4%多聚甲醛進(jìn)行固定24 h,干燥脫水,石蠟包埋后切成3 μm 厚的組織切片。HE 染色觀察肺組織病理學(xué)變化。參照文獻(xiàn)

    [6]采用雙盲法,根據(jù)炎癥浸潤(rùn)累及的支氣管細(xì)支氣管數(shù)量和浸潤(rùn)程度、支氣管細(xì)支氣管管腔滲出的程度、炎癥浸潤(rùn)的血管數(shù)量以及肺實(shí)質(zhì)炎癥的程度等5 個(gè)方面(積分:0~26 分)對(duì)肺組織病理學(xué)改變進(jìn)行評(píng)定,計(jì)算肺組織炎癥積分。

    1.2.3 AB-PAS 染色檢測(cè)杯狀細(xì)胞的增生和黏液的分泌 將3μm厚的肺組織切片常規(guī)脫蠟至水,阿利新蘭染液浸染15 min,水洗3 次,氧化劑氧化8 min,Schiff Reagent 浸染20 min。常規(guī)脫水、透明、封片。利用Image Pro Plus 圖像分析軟件統(tǒng)計(jì)每組的陽(yáng)性著色面積。

    1.2.4 ELISA 檢測(cè)肺組織MUC5AC 含量 稱(chēng)取肺組織30 mg,剪碎,加入1 ml 裂解液,在冰上裂解10 min,10 000 g、4 ℃離心5 min,取上清待用。加樣:分別設(shè)空白孔,標(biāo)準(zhǔn)品孔,待測(cè)樣品孔。依次加入100 μl 樣品,37 ℃孵育1 h;甩干,加檢測(cè)溶液A 100 μl,37 ℃孵育1 h;洗板3 次,加待測(cè)溶液B 100 μl,37 ℃孵育30 min;洗板5 次,加TMB 底物90 μl,37 ℃孵育15 min;加終止液50 μl,立即于450 nm處讀數(shù)。

    1.2.5 IHC檢查MUC5AC、EGFR、PKC、NF-κB的表達(dá) 取3μm 厚的肺組織切片,常規(guī)脫蠟復(fù)水,高壓修復(fù)10 min,3%過(guò)氧化氫阻斷內(nèi)源性過(guò)氧化物酶活性10 min,山羊血清封閉2 h,MUC5AC(1∶200)、EGFR(1∶200)、PKC(1∶100)、NF-κB(1∶100)4 ℃孵育過(guò)夜,二抗(1∶200)37 ℃孵育2 h,DAB 顯色,蘇木素染核2 min,自來(lái)水洗返藍(lán)15 min,常規(guī)脫水,中性樹(shù)膠封片。在光鏡下觀察陽(yáng)性染色呈棕黃色,利用Image Pro Plus 圖像分析軟件統(tǒng)計(jì)每組的平均光密度值。

    1.2.6 實(shí)時(shí)熒光定量PCR 法檢測(cè)肺組織MUC5AC、EGFR mRNA 表達(dá) 使用Trizol 提取總RNA,RNA/DNA 紫外可見(jiàn)光度法檢測(cè)總RNA 的濃度和純度,按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒操作說(shuō)明將RNA 逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,再按擴(kuò)增試劑盒操作說(shuō)明進(jìn)行cDNA 擴(kuò)增。通過(guò)GAPDH 校正并使用公式x=2-ΔΔCt計(jì)算各組基因相對(duì)表達(dá)量。引物由上海生工生物技術(shù)有限公司設(shè)計(jì)合成,引物序列見(jiàn)表1。

    表1 實(shí)時(shí)定量PCR 檢測(cè)的基因引物序列Tab.1 Sequence of gene primers for real-time quantita?tive PCR detection

    1.2.7 Western blot 檢測(cè)EGFR 信號(hào)通路相關(guān)蛋白表達(dá) 稱(chēng)取肺組織30 mg,剪碎,加入250 μl RIPA裂解液,在冰上裂解30 min,12 000 r/min,4 ℃離心10 min 取上清凍存于-80 ℃待用,利用BCA 試劑盒檢測(cè)蛋白濃度。將各組蛋白取20 μg 上樣后進(jìn)行SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳,轉(zhuǎn)膜至PVDF膜,5%脫脂奶粉室溫封閉2 h。按照所測(cè)蛋白的分子量裁剪PVDF膜,然后分別孵育相應(yīng)抗體,4 ℃過(guò)夜。TBST洗膜后加辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記山羊抗兔二抗(1∶20 000)及山羊抗小鼠二抗(1∶10 000),冰上孵育2 h,洗膜,顯影。使用圖像分析軟件Image J 測(cè)定目的條帶與內(nèi)參條帶的光密度值(OD 值),以目的條帶OD 值比內(nèi)參條帶的OD值表示目的蛋白的相對(duì)含量。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 使用SPSS22.0軟件對(duì)本實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,正態(tài)分布計(jì)量資料以±s表示。兩組間差異比較采用t檢驗(yàn),多組間差異比較采用單因素方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 各組大鼠情況 在開(kāi)始建模前所有大鼠精神狀態(tài)良好,體質(zhì)量增長(zhǎng)均勻,食欲好,無(wú)任何顯著性差異。大鼠氣管注入LPS后精神狀態(tài)差,活動(dòng)少,呼吸急促,食欲下降,體質(zhì)量減輕。AG1478 及槲皮素Que-L、Que-M、Que-H 劑量組干預(yù)后上述癥狀逐漸減輕。

    2.2 各組大鼠肺組織病理學(xué)檢查 HE 染色在光鏡下觀察對(duì)照組支氣管上皮結(jié)構(gòu)清晰,周?chē)匆?jiàn)或偶見(jiàn)炎癥細(xì)胞;LPS組支氣管上皮增厚,杯狀細(xì)胞及黏膜下腺體增生肥大,支氣管管壁和周?chē)谓M織有大量炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),管腔發(fā)生不完全阻塞,肺組織炎癥積分顯著升高(P<0.05);Que-L、Que-M、Que-H劑量組以及AG1478 干預(yù)后上述病理癥狀改變減輕,肺組織炎癥積分逐漸下降(P<0.05,圖1、表2)。

    表2 肺組織炎癥積分(±s,n=6)Tab.2 Lung inflammation score(±s,n=6)

    表2 肺組織炎癥積分(±s,n=6)Tab.2 Lung inflammation score(±s,n=6)

    Note:Compared with control group,1)P<0.05;compared with LPS group,2)P<0.05;compared with Que-L group,3)P<0.05;com?pared with Que-M group,4)P<0.05.

    Score 2.11±0.83 12.17±2.201)10.22±2.501)8.28±2.121)2)5.00±1.251)2)3)4)3.78±1.062)3)4)Groups Control LPS Que-L Que-M Que-H AG1478

    圖1 各組大鼠肺組織病理變化(×400)Fig.1 Pathological changes of rat lung tissue in each group(×400)

    2.3 各組大鼠肺組織杯狀細(xì)胞增生和黏液的分泌情況 AB-PAS 染色在光鏡下觀察到大鼠氣道上皮的杯狀細(xì)胞增生以及一些黏液物質(zhì)被染成藍(lán)色,陽(yáng)性染色主要見(jiàn)于氣管、支氣管黏膜上皮、管腔和黏膜下腺體。與Control 組相比,LPS 組可見(jiàn)支氣管氣道上皮大量藍(lán)色杯狀細(xì)胞增生,陽(yáng)性著色面積顯著增大,而Que-L、Que-M、Que-H 劑量組干預(yù)后,杯狀細(xì)胞增生逐漸減少,陽(yáng)性染色面積也相應(yīng)減少(P<0.05,圖2、表3)。

    表3 AB-PAS陽(yáng)性著色面積百分比(±s,n=6)Tab.3 AB-PAS staining percentage(±s,n=6)

    表3 AB-PAS陽(yáng)性著色面積百分比(±s,n=6)Tab.3 AB-PAS staining percentage(±s,n=6)

    Note:AB-PAS staining percentage. Compared with control group,1)P<0.05;compared with LPS group,2)P<0.05;compared with Que-L group,3)P<0.05;compared with Que-M group,4)P<0.05.

    Percentage/%4.38±1.20 26.11±8.101)24.46±6.321)18.18±4.421)2)10.60±1.942)3)4)8.54±2.622)3)4)Groups Control LPS Que-L Que-M Que-H AG1478

    圖2 各組大鼠肺組織黏液分泌情況(×400)Fig.2 Mucus secretion in lung tissue of rats in each group(×400)

    2.4 不同濃度的槲皮素對(duì)大鼠肺組織中MUC5AC的影響 IHC結(jié)果顯示MUC5AC、EGFR、PKC、NF-κB的陽(yáng)染顆粒主要見(jiàn)于氣道上皮,部分在黏膜下腺體;與對(duì)照組相比,LPS 組MUC5AC、EGFR、PKC、NF-κB 表達(dá)顯著增多,Que-L、Que-M、Que-H 劑量組干預(yù)后,上述蛋白表達(dá)逐漸減少(P<0.05);ELISA檢測(cè)MUC5AC 的表達(dá)與免疫組化結(jié)果一致,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,圖3、表4)。

    圖3 各組大鼠肺組織中MUC5AC、EGFR、PKC、NF-κB的表達(dá)(×200)Fig.3 Expressions of MUC5AC,EGFR,PKC and NF-κB in lung tissues of rats in each group(×200)

    表4 各組大鼠MUC5AC、EGFR、PKC、NF-κB的表達(dá)(±s,n=6)Tab.4 Expressions of MUC5AC,EGFR,PKC and NF-κB in rats(±s,n=6)

    表4 各組大鼠MUC5AC、EGFR、PKC、NF-κB的表達(dá)(±s,n=6)Tab.4 Expressions of MUC5AC,EGFR,PKC and NF-κB in rats(±s,n=6)

    Note:Compared with control group,1)P<0.05;compared with LPS group,2)P<0.05;compared with Que-L group,3)P<0.05;compared with Que-M group,4)P<0.05.

    MUC5AC/(pg·ml-1)367.1±71.93 826.3±69.461)742.0±45.671)608.8±94.241)2)368.9±64.512)3)4)319.8±55.682)3)4)Groups Control LPS Que-L Que-M Que-H AG1478 MUC5AC 0.56±0.11 2.30±0.801)1.65±0.131)1.32±0.072)0.41±0.152)3)0.38±0.062)3)4)EGFR 0.40±0.01 5.03±0.551)3.87±0.451)2)3.54±0.611)2)1.13±0.262)3)4)0.32±0.082)3)4)PKC 0.70±0.13 2.61±0.361)2.16±0.191)1.85±0.081)1.26±0.382)3)1.30±0.372)3)NF-κB 1.32±0.21 7.50±1.661)4.65±0.771)2)3.94±0.441)2)2.79±0.182)2.40±0.652)

    2.5 各組大鼠肺組織中MUC5AC、EGFR 的mRNA表達(dá)水平 與Control 組相比,LPS 組MUC5AC 及EGFR 的mRNA 水平顯著升高(P<0.05);與LPS 組相比,Que-L、Que-M、Que-H 劑量組干預(yù)后MUC5AC及EGFR 的mRNA 水平逐漸降低;Que-H 劑量組和陽(yáng)性對(duì)照AG1478 組能顯著降低MUC5AC 及EGFR的mRNA水平(P<0.05,表5)。

    表5 肺組織MUC5AC、EGFR mRNA水平(±s,n=6)Tab.5 MUC5AC,EGFR mRNA levels in lung tissue(±s,n=6)

    表5 肺組織MUC5AC、EGFR mRNA水平(±s,n=6)Tab.5 MUC5AC,EGFR mRNA levels in lung tissue(±s,n=6)

    Note:RT-qPCR. Compared with control group,1)P<0.05;compared with LPS group,2)P<0.05;compared with Que-L group,3)P<0.05;compared with Que-M group,4)P<0.05.

    EGFR mRNA 1.00±0.33 3.82±0.081)2.88±0.251)2)1.76±0.071)2)3)1.29±0.022)3)1.30±0.182)3)Groups Control LPS Que-L Que-M Que-H AG1478 MUC5AC mRNA 1.00±0.21 4.42±0.451)3.16±0.151)2)2.42±0.311)2)1.26±0.272)3)4)1.30±0.182)3)4)

    2.6 EGFR 信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路在肺組織中的表達(dá)情況與Control 組相比,LPS 組p-EGFR/EGFR、p-PI3K/PI3K、p-PKC/PKC、p-AKT/AKT、NF-κB 的表達(dá)顯著增多(P<0.05),與LPS 組相比,槲皮素高劑量組和AG1478 組能夠顯著下調(diào)EGFR、PI3K、PKC、AKT 的磷酸化水平,抑制NF-κB表達(dá)(P<0.05,表6,圖5)。

    表6 不同濃度槲皮素對(duì)EGFR信號(hào)通路的影響(±s,n=6)Tab.6 Effects of different doses of quercetin on EGFR signaling pathway(±s,n=6)

    表6 不同濃度槲皮素對(duì)EGFR信號(hào)通路的影響(±s,n=6)Tab.6 Effects of different doses of quercetin on EGFR signaling pathway(±s,n=6)

    Note:Western blot.Compared with control group,1)P<0.05;compared with LPS group,2)P<0.05;compared with Que-L group,3)P<0.05;compared with Que-M group,4)P<0.05.

    NF-κB 1.00±0.01 1.64±0.181)1.56±0.171)1.29±0.15 1.03±0.212)3)1.08±0.082)3)Groups Control LPS Que-L Que-M Que-H AG1478 p-EGFR/EGFR 1.00±0.02 2.07±0.091)1.97±0.121)1.55±0.071)2)3)1.15±0.142)3)4)0.94±0.172)3)4)p-PI3K/PI3K 1.00±0.010 1.30±0.111)1.17±0.10 1.09±0.082)0.99±0.142)0.87±0.112)3)p-PKC/PKC 1.00±0.00 1.76±0.121)1.74±0.221)1.28±0.102)3)1.24±0.022)3)1.05±0.062)3)p-AKT/AKT 1.00±0.07 1.38±0.131)1.35±0.151)1.11±0.19 0.72±0.092)3)4 0.69±0.082)3)4

    3 討論

    氣道黏液高分泌是慢性氣道炎癥疾病主要的臨床表現(xiàn)和病理特征之一,出現(xiàn)氣道黏液高分泌癥狀的慢性氣道炎癥性疾病患者具有較差的肺功能,因此出現(xiàn)高住院率與病死率[7]。在正常生理?xiàng)l件下,氣道黏液物質(zhì)作為呼吸系統(tǒng)固有免疫的重要組成部分,可黏附吸入的顆粒物,通過(guò)纖毛清除運(yùn)動(dòng)運(yùn)輸至體外,對(duì)機(jī)體起到保護(hù)作用;但在吸煙、細(xì)菌以及病毒等多種致病因素作用下,黏液分泌過(guò)多,氣道纖毛清除功能下降導(dǎo)致黏液清除率下降,可加重細(xì)菌定植,出現(xiàn)慢性肺部感染與急性加重。因此明確氣道黏液高分泌與氣道炎癥性疾病之間的關(guān)系,深入探究氣道黏液高分泌的發(fā)病機(jī)制,對(duì)于氣道黏液高分泌的祛痰治療具有重要作用。

    LPS 作為革蘭氏陰性細(xì)菌細(xì)胞壁外壁的組成成分,當(dāng)進(jìn)入氣道時(shí)會(huì)誘發(fā)氣道炎癥,從而產(chǎn)生過(guò)多的黏液,常被用來(lái)誘導(dǎo)一些氣道炎癥和黏液分泌過(guò)多[8-9]。MUC5AC 是黏液中最主要的蛋白之一,主要由杯狀細(xì)胞產(chǎn)生,MUC5AC mRNA 或MUC5AC 可作為氣道杯狀細(xì)胞增生、化生的標(biāo)志,氣道分泌物中MUC5AC 的含量和氣道上皮MUC5AC 的轉(zhuǎn)錄水平可反映氣道黏液產(chǎn)生分泌的強(qiáng)度。本研究以SD 大鼠為研究對(duì)象,向氣管中滴注LPS,以肺組織病理學(xué)、肺組織炎癥積分、黏液分泌3個(gè)參數(shù)建立氣道黏液高分泌大鼠模型。與對(duì)照組相比,LPS 組大鼠氣道上皮增厚,杯狀細(xì)胞及黏膜下腺體增生肥大,炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),管腔發(fā)生不完全性阻塞,肺炎癥積分和AB-PAS 黏液陽(yáng)性著色面積也明顯增加,并且MUC5AC 的表達(dá)上調(diào)。以上結(jié)果表明,LPS 氣管內(nèi)注入能成功誘導(dǎo)大鼠氣道黏液高分泌。

    近年來(lái),植物來(lái)源的藥物越來(lái)越受重視,在臨床上的應(yīng)用也越來(lái)越廣泛。槲皮素是一種多羥基黃酮類(lèi)化合物,廣泛存在于植物的花、葉、果實(shí),由于含有許多酚類(lèi)羥基,具有較強(qiáng)的抗炎和抗氧化性能,現(xiàn)研究已證實(shí)槲皮素是最有前途的用于預(yù)防和治療炎癥相關(guān)性的慢性疾病的天然藥物之一[10-11]。在肺部疾病的研究中發(fā)現(xiàn),槲皮素能顯著改善肺部炎癥和黏液分泌過(guò)多[12-13]。本研究結(jié)果表明槲皮素能以劑量依賴性方式顯著降低LPS 誘導(dǎo)的炎癥損傷;在槲皮素干預(yù)后,炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)和氣道上皮增厚的病理變化得到改善,杯狀細(xì)胞增生和黏液分泌減少,肺組織炎癥積分以及AB-PAS 陽(yáng)性著色面積降低;并進(jìn)一步分析了肺組織中MUC5AC 的表達(dá),結(jié)果發(fā)現(xiàn)槲皮素能夠明顯抑制MUC5AC 的表達(dá)。提示槲皮素對(duì)LPS誘導(dǎo)的大鼠氣道黏液高分泌具有保護(hù)作用,而其機(jī)制需要進(jìn)一步探討。

    EGFR 屬于ErbB 受體家族的一種,屬于酪氨酸激酶型受體,位于細(xì)胞膜表面,在氣道黏液高分泌的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路中居于中心地位,多種刺激因素均可通過(guò)活化EGFR 及其下游通路誘導(dǎo)杯狀細(xì)胞增生和化生,導(dǎo)致過(guò)量黏蛋白的合成,引起氣道炎癥[14];如吸煙會(huì)誘導(dǎo)大量的活性氧和蛋白酶的產(chǎn)生從而引起EGFR 磷酸化進(jìn)而激活其下游信號(hào)通路,而EGFR 酪氨酸激酶抑制劑AG1478 則可抑制EGFR活化所引起的杯狀細(xì)胞增生和MUC5AC 的表達(dá)增多[15-16]?,F(xiàn)研究較明確EGFR下游通路之一是PI3K/PKC/AKT/NF-κB 信號(hào)通路。有研究發(fā)現(xiàn)槲皮素能夠通過(guò)抑制EGFR/NF-κB 的磷酸化從而減少由香煙所誘導(dǎo)的黏液高分泌[13],據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道,槲皮素等天然黃酮或異黃酮化合物還是EGFR 小分子抑制劑[17-18]。為了進(jìn)一步明確槲皮素對(duì)氣道黏液高分泌作用的機(jī)制,本研究采用AG1478 作為陽(yáng)性對(duì)照藥物,槲皮素進(jìn)行干預(yù),對(duì)EGFR 通路相關(guān)蛋白進(jìn)行研究,結(jié)果發(fā)現(xiàn)給予槲皮素干預(yù)后EGFR 及MUC5AC的mRNA 水平和EGFR 蛋白磷酸化水平劑量依賴性降低,其下游分子PI3K、PKC、AKT 蛋白磷酸化水平也相應(yīng)劑量依賴性降低,NF-κB 蛋白表達(dá)劑量依賴性減少。給予AG1478 后,EGFR 及MUC5AC 的mRNA 水平顯著降低,EGFR 及其相應(yīng)下游蛋白磷酸化水平降低,NF-κB 蛋白表達(dá)下調(diào)。提示槲皮素可能通過(guò)抑制EGFR 信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的激活,下調(diào)MUC5AC的表達(dá)來(lái)發(fā)揮作用的。

    綜上所述,槲皮素具有強(qiáng)大的抗炎作用,對(duì)氣道黏液高分泌治療具有潛在的應(yīng)用價(jià)值,其發(fā)揮作用的途徑可能與調(diào)節(jié)EGFR/PI3K/PKC/AKT/NF-κB信號(hào)通路有關(guān)。但是槲皮素由于其水溶性差在臨床上的應(yīng)用受限,并且其生物學(xué)功能多,在體內(nèi)發(fā)揮功能的信號(hào)通路比較復(fù)雜,需要進(jìn)一步明確其相關(guān)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)機(jī)制并選擇關(guān)鍵靶點(diǎn)分子才能為精準(zhǔn)治療氣道黏液高分泌提供指導(dǎo)。

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