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    吡啶-2,6-二羧酸處理對(duì)梨果采后黑斑病控制作用及其抑菌機(jī)理

    2022-07-02 03:49:28楊陽(yáng)陽(yáng)劉志恬李永才盧玉慧謝鵬東
    食品科學(xué) 2022年11期
    關(guān)鍵詞:酥梨麥角甾醇

    楊陽(yáng)陽(yáng),劉志恬,李永才*,畢 陽(yáng),盧玉慧,謝鵬東

    (甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅 蘭州 730070)

    早酥梨是中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院果樹(shù)研究所將蘋(píng)果與梨進(jìn)行雜交得到的一種新的梨品種,該品種皮薄肉多、果肉白細(xì)、酥脆爽口、汁多味甜,可溶性固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)達(dá)12.1%~15.1%,可食用率高達(dá)95%。除此以外,該品種連續(xù)結(jié)果能力強(qiáng),豐產(chǎn)、穩(wěn)產(chǎn),所以成為眾多梨品種當(dāng)中的最佳栽培對(duì)象之一。早酥梨的采收期為每年的7ü8月,氣溫較高,這對(duì)后續(xù)早酥梨的銷(xiāo)售非常不利。微生物侵染會(huì)嚴(yán)重影響早酥梨的品質(zhì),商業(yè)價(jià)值迅速降低,給果農(nóng)造成經(jīng)濟(jì)損失。其中由互隔交鏈孢()引起的黑斑病是早酥梨采后主要的病害之一,在室溫環(huán)境下會(huì)快速生長(zhǎng)繁殖產(chǎn)生毒素,不僅會(huì)使果實(shí)腐敗,還會(huì)對(duì)人類(lèi)和動(dòng)物健康造成潛在安全風(fēng)險(xiǎn)。目前常用人工合成化學(xué)殺菌劑控制梨果采后病害,但因長(zhǎng)期使用化學(xué)殺菌劑會(huì)產(chǎn)生農(nóng)用殘留、造成環(huán)境污染,也會(huì)使病原物產(chǎn)生抗藥性。因此,尋求和開(kāi)發(fā)對(duì)全球環(huán)境以及人類(lèi)健康無(wú)危害的天然殺菌防腐劑來(lái)抑制采后病害成為大勢(shì)所趨。

    枯草芽孢桿菌()是一種有益的生防細(xì)菌,具有較強(qiáng)的生防作用,其作用機(jī)制包括競(jìng)爭(zhēng)作用和拮抗作用。競(jìng)爭(zhēng)作用主要是對(duì)空間以及營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的爭(zhēng)奪,拮抗作用是指微生物自身在正常的生命活動(dòng)過(guò)程中產(chǎn)生的部分代謝產(chǎn)物會(huì)作用于致病菌的細(xì)胞器,影響致病菌正常生命活動(dòng),導(dǎo)致致病菌不能正常生長(zhǎng)繁殖??莶菅挎邨U菌屬的部分代謝物已被證明具有抗真菌活性,在各種芽孢桿菌中,枯草芽孢桿菌已被徹底開(kāi)發(fā)作為許多植物疾病的生物防治劑。胡陳云等研究發(fā)現(xiàn)枯草芽孢桿菌ge25分泌的抑菌脂肽嚴(yán)重影響人參黑斑菌和人參銹腐菌菌絲體的正常生長(zhǎng),導(dǎo)致菌絲體形態(tài)異常、發(fā)育畸形。Ren Jianjun等研究發(fā)現(xiàn)枯草芽孢桿菌代謝產(chǎn)物XB-1對(duì)桃褐腐病菌有明顯的抑制作用。吡啶-2,6-二羧酸(pyridine-2,6-dipicolinic acid,DPA)是從枯草芽孢桿菌168的分泌物中分離出的一種新的抗真菌化合物,其作為細(xì)菌芽孢特有的化合物而成為生物標(biāo)志物,廣泛存在于芽孢中,占芽孢干質(zhì)量的5%~15%。吡啶二羧酸有5種結(jié)構(gòu)不同代謝產(chǎn)物,其中,吡啶-2,3-二羧酸和DPA是芽孢桿菌分泌物中的常見(jiàn)代謝產(chǎn)物,課題組前期預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明DPA的抑菌效果最佳。從結(jié)構(gòu)上看,吡啶二羧酸屬于吡啶類(lèi)雜環(huán)化合物。這種化合物具有高效、毒性低等優(yōu)異的生物活性,從而成為綠色抑菌劑研制的新方向。另外,在生產(chǎn)生活中這類(lèi)化合物應(yīng)用廣泛,農(nóng)業(yè)上可用于殺菌、除草、殺蟲(chóng);用于醫(yī)藥上,具有抗癌、消炎、降低血糖等優(yōu)點(diǎn)。Song Xuege等研究發(fā)現(xiàn)5 mmol/L的DPA在pH 5.6時(shí),通過(guò)抑制幾丁質(zhì)的合成而顯著抑制生長(zhǎng),在預(yù)防性應(yīng)用中,DPA可將梨樹(shù)的潰瘍病發(fā)病率減少90%。目前吡啶二羧酸的相關(guān)研究較少,且DPA在果蔬采后病害控制中的應(yīng)用鮮有報(bào)道。因此本實(shí)驗(yàn)使用DPA來(lái)處理黑斑病菌,研究DPA對(duì)生長(zhǎng)的抑制作用,并進(jìn)一步深入探討其可能的抑菌機(jī)理,同時(shí)還用DPA對(duì)早酥梨果實(shí)進(jìn)行處理,探究DPA對(duì)黑斑病的控制作用,以期拓寬DPA適用范圍,為DPA投入市場(chǎng)實(shí)際生產(chǎn)應(yīng)用提供理論依據(jù),同時(shí)為控制早酥梨采后病害提供一種新的天然防腐殺菌劑。

    1 材料與方法

    1.1 菌株、材料與試劑

    供試菌株為課題組前期研究分離得到,現(xiàn)保藏于本實(shí)驗(yàn)室。

    早酥梨采摘于甘肅省景泰縣條山農(nóng)場(chǎng),挑選大小相近(質(zhì)量約200~250 g)、無(wú)機(jī)械損傷、無(wú)病蟲(chóng)害的果實(shí),采摘當(dāng)天運(yùn)至實(shí)驗(yàn)室,靜置24 h散去田間熱后,于冷庫(kù)((3f2)℃、相對(duì)濕度85%)中貯藏待用。

    DPA購(gòu)于上海麥克林生化科技有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    1510型酶標(biāo)儀 美國(guó)賽默飛世爾儀器有限公司;H-1850R型臺(tái)式高速冷凍離心機(jī) 長(zhǎng)沙湘儀離心機(jī)有限公司;DDS-370微型電導(dǎo)儀 上海儀電科學(xué)儀器股份有限公司;BX51型熒光顯微鏡 日本Olympus公司;CentriVap真空離心濃縮儀 美國(guó)Labconco公司;ACQUITY Arc四元梯度超快速液相色譜儀 美國(guó)Waters公司。

    1.3 方法

    1.3.1孢子懸浮液的配制

    參照文獻(xiàn)[17]的方法并略作修改,在超凈工作臺(tái)中向培養(yǎng)5 d的培養(yǎng)皿中倒入少量含有體積分?jǐn)?shù)0.01% Tween-80的無(wú)菌水,用已滅菌的涂布器輕刮菌絲,將所得溶液通過(guò)4 層無(wú)菌紗布過(guò)濾到三角瓶中,并配制成1h10個(gè)/mL孢子懸浮液待用。

    1.3.2菌絲的收集

    取1 mL 1.3.1節(jié)孢子懸浮液(濃度為1h10個(gè)/mL)接種至100 mL馬鈴薯葡萄糖肉湯(potato dextrose broth,PDB)液體培養(yǎng)基中,在28 ℃、150 r/min條件下恒溫振蕩培養(yǎng)36 h后,用布氏漏斗過(guò)濾收集菌絲備用,菌絲用無(wú)菌水洗滌3 次,以除去培養(yǎng)液。

    1.3.3 DPA處理及相關(guān)指標(biāo)的測(cè)定

    1.3.3.1 DPA處理及菌落生長(zhǎng)評(píng)價(jià)

    參照文獻(xiàn)[18]的方法并稍作修改。分別稱取8.3、16.7、33.4、66.8 mg DPA并溶解于100 mL融化的馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基中,得到含0.5、1.0、2.0、4.0 mmol/L DPA的PDA培養(yǎng)基,以未添加DPA的PDA培養(yǎng)基作為對(duì)照組,待培養(yǎng)基凝固后,在培養(yǎng)基中心分別接種2 μL 1.3.1節(jié)孢子懸浮液(濃度為1h10個(gè)/mL),28 ℃避光培養(yǎng),分別在培養(yǎng)3、5、7、9 d時(shí)觀察菌落形態(tài)并采用十字交叉法測(cè)量菌落直徑。

    1.3.3.2孢子萌發(fā)率和芽管長(zhǎng)度的測(cè)定

    參考文獻(xiàn)[19]的方法并稍作修改。取1 mL 1.3.1節(jié)孢子懸浮液(濃度為1h10個(gè)/mL),8 000 r/min離心2 min,棄去上清液,向沉淀中分別加入1 mL不同濃度(0(對(duì)照組)、0.5、1.0、2.0、4.0 mmol/L)的DPA溶液,振蕩搖勻。將PDA培養(yǎng)基裁成圓形(=0.5 mm)放置于滅過(guò)菌的載玻片上,培養(yǎng)基中央滴加20 μL上述含有不同濃度DPA的孢子懸浮液,分別于28 ℃孵育2、4、6、8 h后,在光學(xué)顯微鏡下觀察孢子萌發(fā)情況,同時(shí)通過(guò)IS Capture軟件測(cè)量芽管長(zhǎng)度。每次觀察,孢子總數(shù)為100個(gè),重復(fù)3 次。按式(1)計(jì)算孢子萌發(fā)率。

    1.3.4 DPA處理早酥梨及病斑直徑的測(cè)定

    參照文獻(xiàn)[20]的方法并稍作修改。將挑選好的早酥梨果實(shí)用2%(體積分?jǐn)?shù))的NaClO溶液浸泡2 min,然后用蒸餾水沖洗除去果實(shí)表面NaClO溶液,果實(shí)晾干后用75%(體積分?jǐn)?shù))乙醇溶液擦拭果實(shí)表皮。隨后用鐵釘在果實(shí)赤道部位均勻地打3個(gè)孔,每孔接種20 μL 1.3.1節(jié)孢子懸浮液(濃度為1h10個(gè)/mL),室溫晾干后分別向每個(gè)孔中加入20 μL濃度為0(即對(duì)照組)、5.0、10.0、20.0 mmol/L的DPA溶液,每組9個(gè)果實(shí),各組處理好的果實(shí)放入分別放入紙箱(60 cmh60 cmh90 cm)中,在每個(gè)紙箱中放入一張濕潤(rùn)的濾紙,以提供果實(shí)發(fā)病所需的濕度,于室溫條件下避光貯藏。在貯藏3、5、7、9、11 d觀察果實(shí)病斑并采用十字交叉法測(cè)量果實(shí)的病斑直徑。

    1.3.5細(xì)胞膜完整性的測(cè)定

    測(cè)定方法參考文獻(xiàn)[21]并稍作修改。將1 mL 1.3.1節(jié)孢子懸浮液(濃度為1h10個(gè)/mL)置于2 mL無(wú)菌離心管中,8 000 r/min離心2 min,棄去上清液,在沉淀中加入1 mL濃度分別為0(即對(duì)照組)、0.5、1.0、2.0、4.0 mmol/L的DPA溶液,在28 ℃培養(yǎng)箱溫育2 h,8 000 r/min離心2 min,棄去上清液,孢子沉淀中加入1 mL磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)(0.01 mol/L、pH 7.0,后同),室溫下避光靜置30 min,然后8 000 r/min離心2 min,棄去上清液,向孢子沉淀中加入1 mL PBS和10 μL碘化丙啶染液(propidium iodide,PI)(1 mg/mL),避光靜置20 min,然后8 000 r/min離心2 min,棄去上清液。最后加入1 mL PBS洗滌(8 000 r/min離心2 min),洗滌3 次后在熒光顯微鏡下觀察細(xì)胞膜完整性并按式(2)計(jì)算PI染色率。

    1.3.6細(xì)胞膜通透性的測(cè)定

    1.3.6.1菌絲電導(dǎo)率的測(cè)定

    參考文獻(xiàn)[22]的方法并進(jìn)行一定的修改。分別測(cè)定濃度為0(即對(duì)照組)、0.5、1.0、2.0 mmol/L DPA溶液的電導(dǎo)率;稱取1 g 1.3.2節(jié)所得的菌絲,分別添加至10 mL上述濃度的DPA溶液中,室溫下靜置,測(cè)定處理0、0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0 h時(shí)相應(yīng)的電導(dǎo)率。按式(3)計(jì)算菌絲電導(dǎo)率。

    1.3.6.2核酸滲漏量的測(cè)定

    參考文獻(xiàn)[23]的方法并進(jìn)行一定的修改。分別測(cè)定濃度為0(即對(duì)照組)、0.5、1.0、2.0、4.0 mmol/L DPA溶液在260 nm波長(zhǎng)處的吸光度;稱取1 g 1.3.2節(jié)所得的菌絲,分別加入到2 mL上述不同濃度的DPA溶液中,分別在室溫下放置0、1、2、3、4 h取樣,8 000 r/min離心5 min后收集上清液,測(cè)定260 nm波長(zhǎng)處吸光度。按式(4)計(jì)算核酸滲漏量。

    1.3.6.3蛋白質(zhì)滲漏量測(cè)定

    參考文獻(xiàn)[24]的方法并進(jìn)行一定的修改。分別測(cè)定濃度為0(即對(duì)照組)、0.5、1.0、2.0、4.0 mmol/L DPA溶液在280 nm波長(zhǎng)處的吸光度;稱取1 g 1.3.2節(jié)所得的菌絲,分別加入到2 mL上述不同濃度的DPA溶液中,分別在室溫下放置0、1、2、3、4 h后取樣,8 000 r/min離心5 min收集上清液,在280 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度。按式(5)計(jì)算蛋白質(zhì)滲漏量。

    1.3.7細(xì)胞膜麥角甾醇質(zhì)量濃度的測(cè)定

    參照文獻(xiàn)[25]的方法并稍作修改。菌絲的培養(yǎng):分別配制含不同濃度(0(即對(duì)照組)、1.0、2.0 mmol/L)DPA的PDA培養(yǎng)基各100 mL,在培養(yǎng)基的中央分別接種2 μL 1.3.1節(jié)孢子懸浮液(濃度為1h10個(gè)/mL),28 ℃避光培養(yǎng);培養(yǎng)至第5天,用已滅菌的取樣勺輕輕刮取PDA培養(yǎng)基上的菌絲(盡量不要刮到培養(yǎng)基),將菌絲置于研缽中,加液氮研磨得到菌粉。麥角甾醇的提?。悍Q取0.1 g研磨后的菌粉,加入3 mL 25%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))氫氧化鉀-醇溶液(甲醇與乙醇體積比為3∶2),渦旋振蕩1 min,然后85 ℃水浴1 h;室溫冷卻后加入1 mL無(wú)菌水和3 mL正戊烷渦旋振蕩3 min,室溫靜置10 min,待其分層后吸取上清液,在真空離心濃縮儀中干燥,將干燥后的產(chǎn)物溶于1 mL甲醇(色譜純)中,用0.45 μm孔徑的濾膜過(guò)濾后置于1.5 mL進(jìn)樣瓶中,-20 ℃保存。采用高效液相色譜法測(cè)定麥角甾醇質(zhì)量濃度,色譜柱為C柱(250 mmh4.6 mm,5 μm);流動(dòng)相為100%甲醇(色譜純);柱溫為30 ℃;進(jìn)樣量為5 μL;流速為1 mL/min;紫外檢測(cè)器檢測(cè);檢測(cè)波長(zhǎng)為282 nm。

    1.3.8 丙二醛濃度的測(cè)定

    參考文獻(xiàn)[26]的方法并進(jìn)行一定修改。稱取0.1 g 1.3.2節(jié)制得菌絲于2 mL試管中,分別加入1.5 mL濃度為0(即對(duì)照組)、1.0、2.0 mmol/L的DPA溶液,分別在室溫下處理2、4 h后,8 000 r/min離心5 min。取1 mL上清液,再加入1 mL硫代巴比妥酸試劑,沸水浴15 min,待冷卻至室溫后8 000 r/min離心5 min,分別測(cè)定上清液在450、532、600 nm波長(zhǎng)處的吸光度、、。按式(6)計(jì)算丙二醛濃度。

    1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

    數(shù)據(jù)采用Excel 2016軟件處理,實(shí)驗(yàn)設(shè)置3個(gè)平行,結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用OriginPro 8.5軟件作圖,采用SPSS 26.0軟件進(jìn)行單因素方差分析。采用Duncan’s事后檢驗(yàn)進(jìn)行顯著性分析,<0.05表示差異顯著。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 DPA處理對(duì)A.alternata生長(zhǎng)的影響

    2.1.1 DPA處理對(duì)菌落生長(zhǎng)的影響

    如圖1所示,DPA處理能顯著抑制菌落的生長(zhǎng)(<0.05),且抑制效果隨處理濃度的增加而增強(qiáng)。同時(shí)DPA處理使菌絲的顏色變淺(圖1A)。2.0 mmol/L的DPA處理9 d后菌落直徑僅為對(duì)照組的51.76%,當(dāng)DPA濃度為4.0 mmol/L時(shí),菌落生長(zhǎng)完全受到抑制(圖1B)。

    圖1 DPA處理對(duì)A.alternata菌落形態(tài)(A)和菌落直徑(B)的影響Fig.1 Effect of DPA treatment on mycelium morphology (A) and colony diameter (B) of A.alternata

    2.1.2 DPA處理對(duì)孢子萌發(fā)、芽管伸長(zhǎng)的影響

    DPA處理能有效抑制的孢子萌發(fā)和芽管伸長(zhǎng)(圖2),且其抑制效果隨處理濃度的增加而增強(qiáng)。培養(yǎng)6 h,對(duì)照組孢子萌發(fā)率達(dá)90%,芽管長(zhǎng)度已達(dá)494.278 μm。而4.0 mmol/L DPA處理6 h后僅有27.67%的孢子萌發(fā),芽管長(zhǎng)度僅為121.657 μm。

    圖2 DPA處理對(duì)A.alternata孢子萌發(fā)率(A)和芽管長(zhǎng)度(B)的影響Fig.2 Effect of DPA treatment on spore germination rate (A) and germ tube elongation (B) of A.alternata

    2.2 DPA處理對(duì)早酥梨黑斑病的控制效果

    DPA處理對(duì)早酥梨黑斑的擴(kuò)展有抑制作用,且處理濃度越大抑制效果越佳(圖3A)。但與在PDA平板上所用濃度不同,體內(nèi)實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)20.0 mmol/L DPA處理才能有效地控制早酥梨的黑斑病。處理前期(第3、5天),5.0 mmol/L DPA處理組與對(duì)照組病斑直徑差異不顯著。貯存至第11天時(shí),對(duì)照組早酥梨病斑直徑為4.06 cm,而20.0 mmol/L DPA處理組早酥梨病斑直徑(2.24 cm)僅為對(duì)照組的55.17%(圖3B)。

    圖3 DPA處理對(duì)早酥梨病斑外觀(A)和病斑直徑(B)的影響Fig.3 Effect of DPA treatment on the development of black spot disease (A) and lesion diameter (B) on Zaosu pear fruit

    2.3 DPA處理對(duì)A.alternata細(xì)胞膜完整性的影響

    為了進(jìn)一步探索DPA潛在的抗真菌機(jī)理,用PI染液檢測(cè)細(xì)胞膜完整性,PI是一種膜不可滲透的熒光染料,在熒光顯微鏡下,PI染料將失去膜完整性的細(xì)胞染為紅色。對(duì)照組中僅有個(gè)別孢子細(xì)胞膜被破壞,發(fā)出微弱紅光,而DPA處理組孢子隨DPA濃度的增大紅光逐漸增強(qiáng)(圖4A)。4.0 mmol/L DPA處理組孢子PI染色率是對(duì)照組的8.78 倍(圖4B)。

    圖4 DPA處理后PI染色檢測(cè)A.alternata細(xì)胞膜完整性(A)和PI染色率(B)Fig.4 Cell membrane integrity (A) and propidium iodide (PI) staining percentage (B) of A.alternata after DPA treatment

    2.4 DPA處理對(duì)A.alternata細(xì)胞膜透性的影響

    2.4.1 對(duì)菌絲電導(dǎo)率的影響

    如圖5所示,電導(dǎo)率代表溶液中離子強(qiáng)度的大小,所以電導(dǎo)率的改變可以在一定程度上反映細(xì)胞膜透性的改變。DPA處理組菌絲電導(dǎo)率顯著高于對(duì)照組(<0.05),且DPA處理濃度越大,菌絲電導(dǎo)率越大。在處理0.5 h內(nèi)各處理組菌絲電導(dǎo)率均迅速上升,隨后變化趨于平穩(wěn)。處理3 h后,2.0 mmol/L DPA處理組菌絲體電導(dǎo)率為對(duì)照組的6.84 倍。

    圖5 DPA處理對(duì)A.alternata菌絲電導(dǎo)率的影響Fig.5 Effect of DPA treatment on membrane conductivity of A.alternata mycelia

    2.4.2 對(duì)核酸滲漏量的影響

    如圖6所示,DPA處理組菌絲核酸滲漏量顯著高于對(duì)照組(<0.05),且隨著處理濃度增加以及處理時(shí)間的延長(zhǎng)而增大。處理前1 h內(nèi),各處理組核酸滲漏量均迅速升高且差異顯著,4.0 mmol/L DPA處理組菌絲核酸滲漏量為對(duì)照組的6.23 倍。1 h后各處理組核酸滲漏量緩慢上升,處理4 h時(shí),4.0 mmol/L DPA處理組菌絲的核酸滲漏量為對(duì)照組的2.67 倍。

    圖6 DPA處理對(duì)A.alternata核酸滲漏量的影響Fig.6 Effect of DPA treatment on nucleic acid leakage from A.alternata

    2.4.3 對(duì)蛋白質(zhì)滲漏量的影響

    如圖7所示,DPA處理組菌絲蛋白質(zhì)滲漏量顯著高于對(duì)照組(<0.05),且DPA處理濃度越大蛋白質(zhì)滲漏量越大。處理前1 h內(nèi),各處理組蛋白質(zhì)滲漏量均迅速升高且差異顯著,4.0 mmol/L DPA處理菌絲蛋白質(zhì)滲漏量為對(duì)照組的32.06 倍。1 h后各處理組變化趨于平穩(wěn),處理4 h時(shí),4.0 mmol/L DPA處理菌絲蛋白質(zhì)滲漏量為對(duì)照組的8.99 倍。

    圖7 DPA處理對(duì)A.alternata蛋白質(zhì)滲漏量的影響Fig.7 Effect of DPA treatment on protein leakage from A.alternata

    2.5 DPA處理對(duì)A.alternata細(xì)胞膜麥角甾醇質(zhì)量濃度的影響

    在真菌細(xì)胞膜中,麥角甾醇是必不可少的一種成分,其不僅確保了細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)完整性,而且在營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)運(yùn)輸、保證細(xì)胞膜正常流動(dòng)以及確保完成細(xì)胞內(nèi)正常生理代謝活動(dòng)等方面均有重要作用。一旦麥角甾醇不能正常合成,細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)和功能都會(huì)受到一定影響,從而會(huì)直接導(dǎo)致菌體死亡。如圖8所示,隨DPA處理濃度增加,菌絲的細(xì)胞膜麥角甾醇質(zhì)量濃度顯著降低。對(duì)照組菌絲細(xì)胞膜麥角甾醇質(zhì)量濃度為39.90 μg/mL,而1.0、2.0 mmol/L的DPA處理組菌絲細(xì)胞膜麥角甾醇質(zhì)量濃度顯著降低(<0.05),分別為32.56、19.51 μg/mL。

    圖8 DPA處理對(duì)A.alternata細(xì)胞膜麥角甾醇質(zhì)量濃度的影響Fig.8 Effect of DPA treatment on ergosterol content in A.alternata cell membrane

    2.6 DPA處理對(duì)A.alternata丙二醛濃度的影響

    丙二醛濃度是反映膜脂過(guò)氧化程度的指標(biāo)之一。DPA處理可以使丙二醛濃度增加(圖9),并且隨處理濃度增加以及處理時(shí)間的延長(zhǎng)而增加。處理4 h時(shí),2.0 mmol/L DPA處理組丙二醛濃度為對(duì)照組的1.32 倍。

    圖9 DPA處理對(duì)A.alternata丙二醛濃度的影響Fig.9 Effect of DPA treatment on malondialdehyde content in A.alternata

    3 討 論

    生防菌枯草芽孢桿菌的許多代謝產(chǎn)物已被證實(shí)具有抗真菌活性。Wang Nana等在枯草芽孢桿菌E1R-J發(fā)酵液中發(fā)現(xiàn)代謝產(chǎn)物EP-2。EP-2作為一種抗真菌肽,在100 ℃高溫30 min、pH 1.0~8.0范圍內(nèi),或在金屬離子(如Cu、Zn、Mg)存在條件下表現(xiàn)出穩(wěn)定的抗真菌活性,同時(shí)還發(fā)現(xiàn)EP-2可通過(guò)引起菌絲腫脹、扭曲、異常及原生質(zhì)體外滲來(lái)抑制的生長(zhǎng),從而有效控制蘋(píng)果的腐爛病。劉剛等在枯草芽孢桿菌Loq18的代謝產(chǎn)物中純化出一種新型抗菌蛋白,該抗菌蛋白會(huì)使灰葡萄孢菌絲斷裂或畸形,同時(shí)抑制孢子萌發(fā)。體內(nèi)實(shí)驗(yàn)表明當(dāng)對(duì)照組果實(shí)腐爛率達(dá)到100%時(shí),經(jīng)抗菌蛋白處理組草莓和葡萄果實(shí)的腐爛率分別為60.33%和45.33%。劉雙等將草莓根腐病菌C16-4用枯草芽孢桿菌T4-4、S-30和S-11菌株和代謝產(chǎn)物進(jìn)行相應(yīng)處理,結(jié)果表明處理組病菌分生孢子的產(chǎn)生與萌發(fā)受到了抑制。另外,通過(guò)掃描電子顯微鏡還觀察到處理組菌絲細(xì)胞壁表面粗糙,出現(xiàn)細(xì)胞膨大、扭曲等畸形現(xiàn)象。DPA是枯草芽孢桿菌菌株中168的分泌物,為探究DPA抑菌效果及機(jī)理,Song Xuege等通過(guò)掃描電子顯微鏡觀察發(fā)現(xiàn),在沒(méi)有DPA的情況下,細(xì)胞呈圓形形態(tài);而當(dāng)經(jīng)5 mmol/L DPA處理24 h后,細(xì)胞膜上產(chǎn)生孔,說(shuō)明DPA通過(guò)破壞真菌細(xì)胞膜從而導(dǎo)致細(xì)胞凋亡。另外,實(shí)驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn)3.0 mmol/L DPA處理減少了分生孢子的數(shù)量,但仍有部分孢子萌發(fā),而5.0 mmol/L的DPA在pH 5.6的環(huán)境下時(shí),可完全抑制的菌落生長(zhǎng)和孢子萌發(fā)。同樣本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)4.0 mmol/L DPA處理完全抑制了的菌落生長(zhǎng),且抑制了孢子萌發(fā)和芽管伸長(zhǎng),表明不同病原真菌對(duì)DPA的敏感性存在差異,但體內(nèi)實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)20.0 mmol/L DPA處理才能有效地控制早酥梨的黑斑病,這可能是果實(shí)表皮組織對(duì)藥物作用的影響,因此需進(jìn)一步優(yōu)化和規(guī)范DPA的采后處理方法,提高藥物的作用效果。

    為進(jìn)一步探討DPA對(duì)的抑菌機(jī)制,本實(shí)驗(yàn)用PI染液測(cè)定了細(xì)胞膜的完整性,PI染液可以通過(guò)受損的細(xì)胞膜進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)部,與胞內(nèi)核酸等物質(zhì)結(jié)合,使其發(fā)出紅光。PI染色結(jié)果表明DPA處理組PI染色率遠(yuǎn)高于對(duì)照組,說(shuō)明DPA破壞了細(xì)胞膜的完整性。一些吡啶類(lèi)環(huán)狀化合物也有類(lèi)似破壞細(xì)胞膜的抑菌機(jī)理,如氟啶酰菌胺能夠與病原菌的細(xì)胞膜和細(xì)胞骨架間特異性蛋白結(jié)合,導(dǎo)致細(xì)胞結(jié)構(gòu)被破壞,進(jìn)而表現(xiàn)出殺菌活性。同時(shí)DPA處理組菌絲電導(dǎo)率、核酸和蛋白質(zhì)的外滲量均顯著增加,表明DPA處理提高了細(xì)胞膜的通透性,造成細(xì)胞膜跨膜電勢(shì)紊亂,導(dǎo)致離子外流,致使電導(dǎo)率提高。這與枯草芽孢桿菌21代謝物引起大豆茄鐮孢菌菌液電導(dǎo)率升高,顯示出膜透性改變這一相似結(jié)果。同時(shí)胞內(nèi)一些物質(zhì)如核酸、蛋白質(zhì)等也因細(xì)胞膜通透性增加而外流,使一定波長(zhǎng)處的吸光度增大。麥角甾醇是真菌細(xì)胞膜重要組成部分,其能保證細(xì)胞膜流動(dòng)性、細(xì)胞活力以及營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的正常運(yùn)輸,結(jié)果表明,DPA處理導(dǎo)致細(xì)胞膜麥角甾醇質(zhì)量濃度顯著降低,這也是其導(dǎo)致細(xì)胞膜通透性增加的原因。DPA抑制細(xì)胞膜上麥角甾醇合成可能是因其具有雜環(huán)結(jié)構(gòu)。趙圣印等研究發(fā)現(xiàn)雜環(huán)上的氮原子可通過(guò)形成配位鍵與甾醇14-脫甲基酶P450的血紅素-鐵活性中心連接,酶的活性受到抑制。而該酶又正是合成麥角甾醇的關(guān)鍵酶,當(dāng)它活性受到抑制后,麥角甾醇將不能正常地合成,病原菌細(xì)胞膜完整性遭到破壞,不能進(jìn)行正常生命活動(dòng),從而導(dǎo)致病原菌死亡。同時(shí)本研究還發(fā)現(xiàn)DPA處理可促使膜脂發(fā)生過(guò)氧化,丙二醛濃度增加,引起細(xì)胞膜氧化損傷,從而抑制了病原菌的生長(zhǎng)。另外Song Xuege等研究還發(fā)現(xiàn)3.0 mmol/L的DPA處理3 d后會(huì)抑制細(xì)胞壁中幾丁質(zhì)的合成,表明DPA對(duì)真菌細(xì)胞壁也具有一定的影響,可見(jiàn)DPA的抑菌機(jī)理具有復(fù)雜性和多樣性,具體作用機(jī)理有待進(jìn)一步揭示。

    綜上,DPA處理可以有效抑制的菌落生長(zhǎng)、孢子萌發(fā)和芽管伸長(zhǎng),且能有效控制早酥梨黑斑病的擴(kuò)展,其作用效果存在濃度依賴性。進(jìn)一步研究表明DPA可通過(guò)破壞細(xì)胞膜的完整性、提高膜通透性、抑制膜組分麥角甾醇的合成和促使膜質(zhì)氧化進(jìn)而顯著抑制的生長(zhǎng)。

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