H2O2對人晶狀體上皮細(xì)胞AQP1和AQP5表達(dá)影響及其機(jī)制

李璐　彭旭東　林靜　趙桂秋

[摘要]目的探究氧化應(yīng)激對晶狀體上皮細(xì)胞（HLECs）水通道蛋白（AQPs）表達(dá)的影響及其機(jī)制。方法取健康人群和白內(nèi)障病人的晶狀體前囊膜，應(yīng)用實(shí)時(shí)熒光定量PCR（RT-PCR）和免疫組織化學(xué)染色方法檢測兩組AQP1和AQP5表達(dá)與分布情況。應(yīng)用RT-PCR方法檢測不同濃度的H₂O₂作用HLECs不同時(shí)間后AQP1和AQP5 mRNA表達(dá)情況;用400 μmol/L的H₂O₂刺激HLECs不同時(shí)間，Western blot方法檢測AQP1和AQP5蛋白表達(dá)，RT-PCR和Western blot分別檢測絲裂酶原激活的蛋白激酶（MAPK）抑制劑聯(lián)合H₂O₂（400 μmol/L）共同作用于HLECs后AQP1和AQP5的mRNA與蛋白的表達(dá)情況。結(jié)果白內(nèi)障組晶狀體前囊膜中AQP1和AQP5的mRNA表達(dá)與分布明顯低于健康組（t=10.71、5.46，P<0.05）。H₂O₂刺激HLECs引起的AQP1和AQP5 mRNA表達(dá)下調(diào)具有濃度和時(shí)間依賴性（F_濃度=80.38、436.20，F(xiàn)_時(shí)間=46.95、175.00，F(xiàn)_交互=7.99、17.52，P<0.01）。其中以400 μmol/L的H₂O₂作用最為明顯，分別在作用4、24 h時(shí)AQP1和AQP5的mRNA與蛋白表達(dá)降至最低水平（t=3.32～5.31，P<0.05）。p38和細(xì)胞外信號調(diào)節(jié)激酶（ERK）抑制劑可以抑制H₂O₂誘導(dǎo)的AQP1的mRNA和蛋白表達(dá)下調(diào)（t=4.37～7.28，P<0.05），JNK、p38和ERK的抑制劑對AQP5的表達(dá)量無明顯作用（P>0.05）。結(jié)論氧化應(yīng)激使HLECs AQP1和AQP5表達(dá)下降;在氧化應(yīng)激條件下，MAPK（p38和ERK）途徑參與AQP1表達(dá)調(diào)控，但MAPK途徑不參與AQP5的表達(dá)調(diào)控。

[關(guān)鍵詞]晶狀體;上皮細(xì)胞;水孔蛋白質(zhì)類;絲裂原激活蛋白激酶類;過氧化氫

[中圖分類號]R34;R776.1[文獻(xiàn)標(biāo)志碼]A[文章編號]2096-5532（2022）02-0173-05

doi：10.11712/jms.2096-5532.2022.58.049[開放科學(xué)（資源服務(wù)）標(biāo)識(shí)碼（OSID）]

[網(wǎng)絡(luò)出版]https：//kns.cnki.net/kcms/detail/37.1517.R.20220314.0851.001.html;2022-03-1512：03：24

EFFECTS OF H₂O₂ON EXPRESSION OF AQP1 AND AQP5 IN HUMAN LENS EPITHELIAL CELLS AND THE UNDERLYING MECHANISMS? LI Lu， PENG Xudong， LIN Jing， ZHAO Guiqiu? （Department of Ophthalmology， The Affiliated Hospital of Qingdao University， Qingdao 266003， China）

[ABSTRACT]ObjectiveTo explore the effects of oxidative stress on the expression of aquaporins （AQPs） in human lens epithelial cells （HLECs） and the underlying mechanisms. MethodsThe anterior lens capsules from healthy people and patients with cataract were collected. RT-PCR and immunohistochemistry were used to determine the expression and distribution of AQP1 and AQP5 in both groups. After stimulating HLECs by different concentrations of H₂O₂for different lengths of time， the mRNA expression of AQP1 and AQP5 was measured by RT-PCR. With H₂O₂at 400 μmol/L stimulating HLECs for different lengths of time， the protein expression of AQP1 and AQP5 was measured by Western blot. After using mitogen-activated protein kinase （MAPK） inhibitors and H₂O₂（400 μmol/L） combined to stimulate HLECs， the mRNA and protein expression of AQP1 and AQP5 was determined by RT-PCR and Western blot， respectively. ResultsThe cataract group showed significantly lower mRNA expression and distribution of AQP1 and AQP5 in the anterior lens capsule compared with the healthy group （t=10.71，5.46;P<0.05）. H₂O₂down-regulated the mRNA expression of AQP1 and AQP5 in a concentration- and time-dependent manner （F_{concentration}=80.38，436.20;F_time=46.95，175.00;F_interaction=7.99，17.52;P<0.01）. H₂O₂showed the greatest effects at 400 μmol/L， with the lowest mRNA and protein expression of AQP1 and AQP5 at 4 h and 24 h， respectively （t=3.32-5.31，P<0.05）. Inhibitors of p38 and extracellular signal-regulated kinase （ERK） could significantly inhibit H₂O₂-induced down-regulation of AQP1 mRNA and protein （t=4.37-7.28，P<0.05）. Inhibitors of c-Jun N-terminal kinase， p38， and ERK had no significant effects on the expression of AQP5 （P>0.05）. ConclusionOxidative stress reduces the expression of AQP1 and AQP5 in HLECs. Under oxidative stress， the MAPK pathways （p38 and ERK） are involved in the regulation of AQP1 expression， but not in the regulation of AQP5 expression.

[KEY WORDS]lens， crystalline;? epithelial cells;? aquaporins; mitogen-activated protein kinases; hydrogen peroxide

目前，由于人口老齡化程度不斷加劇，在成年白內(nèi)障病人中年齡相關(guān)性白內(nèi)障（ARC）明顯多于其他類型，氧化損傷在該類型白內(nèi)障的發(fā)生發(fā)展過程中具有重要作用[1]。隨著年齡的增長，晶狀體內(nèi)抗氧化物質(zhì)逐漸降低，從而導(dǎo)致氧化物積聚在晶狀體中[2]，氧化物的積累使核DNA和蛋白質(zhì)遭到破壞，從而導(dǎo)致晶狀體混濁[3]。氧化應(yīng)激可以使絲裂酶原激活的蛋白激酶（MAPK）通路中的c-Jun N末端激酶（JNK）、p38、細(xì)胞外信號調(diào)節(jié)激酶（ERK）蛋白磷酸化，參與組織氧化損傷的病理過程[4]。水通道蛋白（AQPs）的作用是通過調(diào)節(jié)溶質(zhì)主動(dòng)轉(zhuǎn)運(yùn)，使晶狀體內(nèi)外的滲透壓達(dá)到動(dòng)態(tài)平衡，以維持晶狀體的穩(wěn)態(tài)與透明性[5]。 本研究探討H₂O₂的氧化作用對人晶狀體上皮細(xì)胞（HLECs）AQP1和AQP5表達(dá)的影響，以及MAPK（JNK、p38、ERK）信號通路是否參與調(diào)控該條件下AQP1和AQP5表達(dá)的變化。現(xiàn)將結(jié)果報(bào)告如下。

1材料與方法

1.1實(shí)驗(yàn)材料

人晶狀體囊膜取自青島大學(xué)附屬醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)的健康供體和白內(nèi)障病人。白內(nèi)障組晶狀體前囊膜由白內(nèi)障超聲乳化過程中環(huán)形撕取前囊膜獲得，正常組晶狀體前囊膜從我院低溫醫(yī)學(xué)科提供的供體眼球獲得。將晶狀體前囊膜放入-80 ℃冰箱保存。HLECs（廣州Jennio Biotech公司）;胎牛血清（FBS，美國Hyclone公司）;青霉素G、DMEM培養(yǎng)液（美國Gibco公司）;硫酸鏈霉素、蛋白裂解緩沖液（RIPA∶PMSF=1 000∶1）、EDTA液（北京So-labio公司）;JNK抑制劑（SP600125）、p38抑制劑（SB203580）、ERK抑制劑（U0126）（美國Selleckchem公司）;RNAiso Plus（購自大連TaKaRa公司）;BCA蛋白濃度測定試劑盒（購自武漢Elabscience公司）;Prime Script RT reagent Kit With gDNA Eraser試劑盒（購自南京Vazyme公司）;RM 2025切片機(jī)（德國徠卡公司）;DAB試劑盒（北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司）;光學(xué)顯微鏡（日本Olympus IXSO公司）。

1.2實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1HLECs培養(yǎng)將HLECs接種于含有體積分?jǐn)?shù)0.10青霉素G（濃度0.1 μg/L）和硫酸鏈霉素（0.1 μg/L）的DMEM培養(yǎng)液中，置于37 ℃、含體積分?jǐn)?shù)0.05 CO₂、90%濕度環(huán)境中培養(yǎng)。 待細(xì)胞生長達(dá)80%融合時(shí)，加入2.5 g/L胰蛋白酶-EDTA液2 mL，調(diào)整HLECs密度為1×10¹¹/L的細(xì)胞懸浮液，接種到12孔或6孔組織培養(yǎng)板上，待細(xì)胞達(dá)到80%融合且生長均勻時(shí)換成不含血清的DMEM培養(yǎng)液。

1.2.2HLECs分組及處理將細(xì)胞隨機(jī)分為空白對照組、H₂O₂刺激組和MAPK抑制劑組?？瞻讓φ战M不做任何處理。H₂O₂刺激組分別加入100、200、400和800 μmol/L的H₂O₂，分別培養(yǎng)1、2、4和6 h收集細(xì)胞用于RT-PCR檢測;H₂O₂刺激組每孔加入400 μmol/L的H₂O₂，分別培養(yǎng)4、8、16、24 h收集細(xì)胞用于Western blot檢測。抑制劑組分別加入JNK抑制劑（2.5×10^-5mol/L）、p38抑制劑（1×10^-5mol/L）、ERK抑制劑（2×10^-5mol/L）預(yù)處理1 h后再加400 μmol/L的H₂O₂，刺激4 h后收集細(xì)胞用于RT-PCR檢測，刺激24 h后收集細(xì)胞用于Western blot檢測。

1.2.3免疫組織化學(xué)染色檢測晶狀體前囊膜上皮細(xì)胞AQP1和AQP5分布情況晶狀體前囊膜經(jīng)常規(guī)固定、脫水、透明、浸潤和包埋處理以后，使用RM 2025切片機(jī)行4 μm厚切片，然后脫蠟和水合，磷酸鹽緩沖液（PBS）沖洗3次。應(yīng)用檸檬酸緩沖液（pH值6.0）高壓修復(fù)抗原2 min后再用PBS洗片3次。37 ℃下與兔抗人AQP1和小鼠抗人AQP5一抗（1∶200稀釋，美國Abcam公司）反應(yīng)2 h，洗片后再與聚過氧化物酶羊抗兔/小鼠IgG二抗（上海Beyotime公司）反應(yīng)30 min。用DAB試劑盒處理切片，光學(xué)顯微鏡下觀察，當(dāng)細(xì)胞膜出現(xiàn)棕色顆粒立即用蒸餾水沖洗，然后用蘇木精復(fù)染1 min，脫水，中性香脂封片后光鏡下觀察并拍片。用Image-proplus軟件分析AQP1和AQP5分布。

1.2.4實(shí)時(shí)熒光定量PCR（RT-PCR）檢測AQP1和AQP5的mRNA表達(dá)用RNAiso Plus提取晶狀體前囊膜上皮細(xì)胞和各組HLECs總RNA，按Prime Script RT reagent Kit With gDNA Eraser試劑盒說明書進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄。以β-actin為內(nèi)參照，應(yīng)用RT-PCR儀獲得循環(huán)數(shù)，計(jì)算AQP1和AQP5的mRNA表達(dá)量。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。PCR引物及其序列由大連TaKaRa公司設(shè)計(jì)與合成。見表1。

1.2.5Western blot檢測AQP1和AQP5蛋白表達(dá)用蛋白裂解緩沖液收集各組HLECs細(xì)胞蛋白[6]，4 ℃、12 000 r/min離心10 min，取上清液。用BCA蛋白濃度測定試劑盒檢測各樣本蛋白濃度

2期李璐，等. H₂O₂對人晶狀體上皮細(xì)胞AQP1和AQP5表達(dá)影響及其機(jī)制175

并計(jì)算上樣量，經(jīng)蛋白煮沸變性、電泳、轉(zhuǎn)膜、PBST漂洗后，用封閉液進(jìn)行2 h封閉，之后加入一抗稀釋液β-actin（1∶2 000）、AQP1（1∶1 000）、AQP5（1∶1 000）（美國Abcam公司）4 ℃孵育16 h。PBST搖洗3次后加入二抗（山羊抗兔二抗1∶5 000、山羊抗鼠二抗1∶500）（美國Millipore公司）室溫孵育2 h。再次用PBST搖洗3次后使用UVP凝膠成像系統(tǒng)顯影并拍照，用Image J軟件定量分析條帶的灰度值，以其表示蛋白的表達(dá)量。

1.3統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

使用SPSS 24.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。計(jì)量資料數(shù)據(jù)以x±s表示，兩組數(shù)據(jù)比較使用LSD-t檢驗(yàn);多組數(shù)據(jù)比較使用單因素方差分析（one-way ANOVA）或析因設(shè)計(jì)的方差分析。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2結(jié)果

2.1正常組和白內(nèi)障組晶狀體前囊膜AQP1和AQP5 mRNA表達(dá)和分布比較

正常組前囊膜上皮細(xì)胞中AQP1和AQP5的mRNA表達(dá)明顯高于白內(nèi)障組，差異有顯著性（t=10.71、5.46，P<0.05）。免疫組織化學(xué)染色顯示，與正常組相比，白內(nèi)障組晶狀體前囊膜中的棕色顆粒顯著減少，而且細(xì)胞大小不一、形狀排列不規(guī)則。見圖1和表2。

2.2不同H₂O₂處理組間HLECs AQP1和AQP5 mRNA與蛋白表達(dá)比較

H₂O₂刺激HLECs所引起的AQP1和AQP5 mRNA表達(dá)下調(diào)具有濃度和時(shí)間依賴性（F_濃度=80.38、436.20，F(xiàn)_時(shí)間=46.95、175.00，F(xiàn)_交互=7.99、17.52，P<0.01）。其中以400 μmol/L的H₂O₂作用最為明顯，在4 h時(shí)AQP1和AQP5的mRNA表達(dá)降至最低水平（t=3.32～5.31，P<0.05）。見表3、4。在濃度為400 μmol/L的H₂O₂作用下，AQP1和AQP5蛋白表達(dá)下降呈時(shí)間依賴性，H₂O₂不同作用時(shí)間AQP1和AQP5蛋白表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（F=11.63、8.04，P<0.05），在24 h降至最低水平。見表5。

2.3MAPK抑制劑對AQP1和AQP5 mRNA和蛋白表達(dá)的影響

各組間AQP1、AQP5 mRNA和蛋白表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（F=9.81～45.34，P<0.05），與單純H₂O₂處理組相比，ERK和p38抑制劑預(yù)處理顯著抑制了H₂O₂誘導(dǎo)的AQP1 mRNA和蛋白表達(dá)下調(diào)（t=4.37～7.28，P<0.05），而JNK抑制劑預(yù)處理組AQP1 mRNA與蛋白的表達(dá)與單純H₂O₂處理組相比差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P>0.05）。與單純H₂O₂處理組相比，ERK、p38和JNK抑制劑預(yù)處理組AQP5的mRNA和蛋白表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P>0.05）。見表6。

3討論

白內(nèi)障是一種由于晶狀體混濁而影響視覺功能的疾病，主要是由與年齡有關(guān)的晶狀體變性引起的[7-8]。目前，治療白內(nèi)障最有效的方式是通過手術(shù)摘除混濁晶狀體并植入人工晶體（IOL）[9]。但是，手術(shù)相關(guān)的并發(fā)癥依然給病人視力的恢復(fù)帶來極大的挑戰(zhàn)[10]。因此，有必要對白內(nèi)障的發(fā)病機(jī)制進(jìn)行進(jìn)一步的研究，以期獲得并發(fā)癥較少的治療方式。

目前學(xué)術(shù)界一致認(rèn)為，白內(nèi)障的形成主要是由氧化損傷所導(dǎo)致[11]。構(gòu)成晶狀體蛋白的一些氨基酸對氧化損傷特別敏感，如半胱氨酸、蛋氨酸和色氨酸等，它們的結(jié)構(gòu)變化皆可引起蛋白質(zhì)的變性，造成晶狀體混濁[12]。導(dǎo)致體內(nèi)氧化損傷的主要因素是活性氧（ROS），而H₂O₂是細(xì)胞中含量最豐富、最穩(wěn)定的ROS[13]。

AQPs介導(dǎo)水在細(xì)胞膜上的被動(dòng)運(yùn)輸，并參與維持細(xì)胞穩(wěn)態(tài)[14]。既往研究結(jié)果結(jié)果表明，在哺乳動(dòng)物HLECs中表達(dá)的AQPs包括AQP0、AQP1和AQP5[15]，與白內(nèi)障密切相關(guān)[16]。有研究表明，敲除小鼠HLECs AQP1和AQP5雖然晶狀體形態(tài)和透明性沒有改變，但其水滲透性比正常小鼠晶狀體明顯降低，并且在高糖溶液中更容易渾濁[17-18]。為研究白內(nèi)障病人晶狀體前囊膜上皮細(xì)胞中AQP1和AQP5的表達(dá)變化，本文收集了白內(nèi)障病人和健康供體的晶狀體前囊膜，應(yīng)用RT-PCR和免疫組化方法進(jìn)行研究，結(jié)果顯示白內(nèi)障組AQP1和AQP5的mRNA表達(dá)明顯低于正常組，白內(nèi)障組晶狀體前囊膜上皮細(xì)胞的數(shù)量較正常組明顯減少且排列不規(guī)則，AQP1和AQP5的分布明顯低于正常組。說明AQP1和AQP5的表達(dá)下降與白內(nèi)障的發(fā)生發(fā)展關(guān)系密切。

既往有研究證實(shí)，在高氧肺損傷新生小鼠的肺組織中AQP1和AQP5蛋白表達(dá)較對照組明顯降低[19]。為了探討氧化損傷對HLECs AQPs表達(dá)的影響，本研究體外培養(yǎng)了HLECs，并用H₂O₂處理模擬了氧化損傷，結(jié)果顯示，H₂O₂的濃度越高、作用時(shí)間越長，AQP1和AQP5的mRNA和蛋白表達(dá)水平下降越明顯;H₂O₂濃度為400 μmol/L時(shí)作用最為明顯，分別在作用4 h和 24 h 時(shí)AQP1、AQP5的mRNA和蛋白表達(dá)水平降至最低。

目前，關(guān)于氧化損傷引起HLECs的AQP1和AQP5表達(dá)下調(diào)的具體機(jī)制尚不清楚。相關(guān)研究發(fā)現(xiàn)，MAPK通路參與視網(wǎng)膜氧化損傷過程中AQP1表達(dá)的調(diào)控[20]。但是，對于AQP5在晶狀體氧化損傷過程中表達(dá)變化及其具體機(jī)制目前尚未見報(bào)道。MAPK是一組能夠被多種細(xì)胞外刺激物激活、參與調(diào)控細(xì)胞炎癥和死亡過程的絲氨酸-蘇氨酸蛋白激酶。最近的研究結(jié)果表明，氧化應(yīng)激也可以激活MAPK[21]。晶狀體中存在的MAPK途徑包括Raf-Mek-ERK、 SAPK-JNK和p38 MAPK[22]。但是，氧化應(yīng)激下MAPK如何調(diào)節(jié)AQP1和AQP5的表達(dá)目前仍不清楚[23]。本文研究結(jié)果顯示，HLECs經(jīng)ERK和p38抑制劑處理后，H₂O₂介導(dǎo)的AQP1表達(dá)下調(diào)受到抑制，而JNK抑制劑對AQP1表達(dá)無明顯影響;ERK、p38和JNK的抑制劑均對AQP5表達(dá)無顯著作用。這表明在HLECs的氧化損傷過程中，MAPK途徑（ERK和p38）在調(diào)節(jié)AQP1表達(dá)中起重要作用，但MAPK途徑不參與AQP5的表達(dá)調(diào)控。

綜上所述，白內(nèi)障病人晶狀體前囊膜上皮細(xì)胞AQP1和AQP5表達(dá)較正常組減少，H₂O₂刺激可導(dǎo)致HLECs中AQP1和AQP5表達(dá)下調(diào)。MAPK途徑中的ERK和p38途徑均介導(dǎo)H₂O₂刺激引起的HLECs中AQP1表達(dá)下調(diào);MAPK途徑（ERK、p38和JNK）不參與H₂O₂介導(dǎo)的AQP5表達(dá)變化的調(diào)控。

[參考文獻(xiàn)]

[1]LIM J C， CABALLERO ARREDONDO M， BRAAKHUIS A J， et al. Vitamin C and the lens： new insights into delaying the onset of cataract[J].? Nutrients， 2020，12（10）： E3142.

[2]BARNES S， QUINLAN R A. Small molecules， both dietary and endogenous， influence the onset of lens cataracts[J].? Experimental Eye Research， 2017，156：87-94.

[3]JING R H， MA B， QI T T， et al. Long noncoding RNA OIP5-AS1 inhibits cell apoptosis and cataract formation by blocking POLG expression under oxidative stress[J].? Investigative Ophthalmology & Visual Science， 2020，61（12）：3.

[4]TIAN Y， SU Y， YE Q L， et al. Silencing of TXNIP alleviated oxidative stress injury by regulating MAPK-Nrf2 axis in ischemic stroke[J].? Neurochemical Research， 2020，45（2）：428-436.

[5]DONALDSON P J， MUSIL L S， MATHIAS R T. Point： a critical appraisal of the lens circulation model： an experimental paradigm for understanding the maintenance of lens transpa-rency[J]？? Investigative Ophthalmology & Visual Science， 2010，51（5）：2303-2306.

[6]JIANG N， ZHAO G Q， LIN J， et al. Indoleamine 2，3-dioxygenase is involved in the inflammation response of corneal epithelial cells to Aspergillus fumigatus infections[J].? PLoS One， 2015，10（9）： e0137423.

[7]ABDELKADER H， ALANY R G， PIERSCIONEK B. Age-related cataract and drug therapy： opportunities and challenges for topical antioxidant delivery to the lens[J].? Journal of Pharmacy and Pharmacology， 2015，67（4）：537-550.

[8]WEIKEL K A， GARBER C， BABURINS A， et al. Nutritional modulation of cataract[J].? Nutrition Reviews， 2014，72（1）：30-47.

[9]THOMPSON J， LAKHANI N. Cataracts[J].? Primary Care， 2015，42（3）：409-423.

[10]CETINEL S， MONTEMAGNO C. Nanotechnology for the prevention and treatment of cataract[J].? Asia-Pacific Journal of Ophthalmology （Philadelphia， Pa）， 2015，4（6）：381-387.

[11]EROL TINAZTEPE ?， AY M， ESER E. Nuclear and mitochondrial DNA of age-related cataract patients are susceptible to oxidative damage[J].? Current Eye Research， 2017，42（4）：583-588.

[12]HAINS P G， TRUSCOTT R J. Proteome analysis of human foetal， aged and advanced nuclear cataract lenses[J].? Proteomics Clinical Applications， 2008，2（12）：1611-1619.

[13]PAULSEN C E， CARROLL K S. Orchestrating redox signaling networks through regulatory cysteine switches[J].? ACS Chemical Biology， 2010，5（1）：47-62.

[14]VERKMAN A S， ANDERSON M O， PAPADOPOULOS M C. Aquaporins： important but elusive drug targets[J].? Nature Reviews Drug Discovery， 2014，13（4）：259-277.

[15]BOGNER B， SCHROEDL F， TROST A， et al. Aquaporin expression and localization in the rabbit eye[J].? Experimental Eye Research， 2016，147：20-30.

[16]VARADARAJ K， KUMARI S S. Lens aquaporins function as peroxiporins to facilitate membrane transport of hydrogen pe-roxide[J].? Biochemical and Biophysical Research Communications， 2020，524（4）：1025-1029.

[17]RUIZ-EDERRA J， VERKMAN A S. Accelerated cataract formation and reduced lens epithelial water permeability in aquaporin-1-deficient mice[J].? Investigative Ophthalmology & Vi-sual Science， 2006，47（9）：3960-3967.

[18]SINDHU KUMARI S， VARADARAJ K. Aquaporin 5 knoc-kout mouse lens develops hyperglycemic cataract[J].? Bioche-mical and Biophysical Research Communications， 2013，441（2）：333-338.

[19]岳冬梅，佟雅潔，薛辛東. 高氧致慢性肺疾病新生鼠肺組織水通道蛋白1、5的表達(dá)及其調(diào)控作用的研究[J].? 中國現(xiàn)代醫(yī)學(xué)雜志， 2012，22（2）：10-14，19.

[20]JIANG Q， CAO C， LU S， et al. MEK/ERK pathway me-diates UVB-induced AQP1 downregulation and water permeability impairment in human retinal pigment epithelial cells[J].? International Journal of Molecular Medicine， 2009，23（6）：771-777.

[21]LIU X F， HAO J L， XIE T， et al. Nrf2 as a target for prevention of age-related and diabetic cataracts by against oxidative stress[J].? Aging Cell， 2017，16（5）：934-942.

[22]HUANG W R， ZHANG Y， TANG X. Shikonin inhibits the proliferation of human lens epithelial cells by inducing apoptosis through ROS and caspase-dependent pathway[J].? Molecules （Basel， Switzerland）， 2014，19（6）：7785-7797.

[23]PAN X Y， GUO H， HAN J， et al. Ginsenoside Rg3 atte-nuates cell migration via inhibition of aquaporin 1 expression in PC-3M prostate cancer cells[J].? European Journal of Pharmacology， 2012，683（1-3）：27-34.

（本文編輯黃建鄉(xiāng)）