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    基于恒溫隔絕式熒光RT-PCR技術(shù)現(xiàn)場檢測牛紐布病毒方法的建立及應(yīng)用

    2022-04-24 02:52:04崔雨晨
    畜牧獸醫(yī)學報 2022年4期
    關(guān)鍵詞:毒株犢牛基因型

    崔雨晨,岳 華,湯 承

    (西南民族大學畜牧獸醫(yī)學院,成都 610041)

    紐布病毒(nebovirus, NeV)可引起小牛的腸道損傷和嚴重水樣腹瀉,是導致犢牛腹瀉的重要病原[1-2]。迄今為止,已有13個國家報道了NeV的存在和流行,地域上涵蓋美洲、亞洲、歐洲和非洲[3-10]。作者實驗室于前期已在四川、新疆、遼寧和陜西等多地檢出NeV,檢出率為12%~55%,證實NeV在國內(nèi)奶牛和牦牛廣泛存在,屬于國內(nèi)新發(fā)致牛腹瀉病毒,且具備遺傳多樣性[10-12]。

    NeV是嵌杯病毒科(Caliciviridaefamily)紐布病毒屬(Nebovirusgenus)的唯一成員,為無囊膜的單股正鏈RNA病毒,基因組全長7 453~7 460 bp[13],具有兩個開放閱讀框(ORFs):ORF1和ORF2,兩個非編碼區(qū)(5′-UTR和3′-UTR)和一個多聚腺苷酸尾(ployA)。由于RdRp基因3′端相較其他基因更不易突變,多作為檢測引物的設(shè)計靶點[14]。根據(jù)目前GenBank數(shù)據(jù)庫中僅有的8條完整的NeV RdRp核苷酸序列的系統(tǒng)發(fā)育樹可分為4個基因型:NB-like基因型(4條),NA1-like基因型(1條),SC-yak基因型(2條),和SC-yak-like 1基因型(1條)[13-14],4條NB-like型間的核苷酸相似性86.2%~88.0%、2條SC-yak型間的毒株核苷酸相似性90.2%;NB-like型與NA1-like型之間的毒株核苷酸相似性78.9%~85.0%,NB-like型與SC-yak型間的核苷酸相似性68.0%~68.7%,NB-like型與SC-yak-like 1型之間的核苷酸相似性69.0%~69.6%。其中,NB-like型毒株是世界范圍內(nèi)奶牛、肉牛和牦牛中主要流行基因型;NA1-like型毒株在我國未檢出;SC-yak型和SC-yak-like 1型毒株僅在中國牦牛中檢出[13,15]。

    目前,有7個檢測NeV的RT-PCR方法報道:4種常規(guī)RT-PCR、2種熒光定量RT-PCR和1種巢式RT-PCR[9-11,16-19],迄今尚未見基于探針法檢測NeV的方法報道。由于我國NeV毒株顯示出獨特的進化趨勢,且有新型毒株的出現(xiàn),使得國外報道的檢測方法對國內(nèi)NeV毒株的檢出效果不佳[11,19]。恒溫隔絕式RT-PCR(insulated isothermal RT-PCR, iiRT-PCR)是一種基于熒光探針水解的絕緣等溫RT-PCR技術(shù),配套使用PetNAD試劑盒和POCKITTM系列手持式核酸分析儀,已廣泛用于多種動物疫病的現(xiàn)場檢測[20-26]。由于SC-yak型與其他型的核苷酸相似性只有61.8%~68.7%,因此無法和其他型毒株建立通用引物,本研究旨在建立檢測NB-like和NA1-like及SC-yak-like 1基因型NeV的iiRT-PCR方法,為國內(nèi)NeV的快速檢測提供新的工具。

    1 材料與方法

    1.1 病毒(菌)株與臨床樣本

    NeV陽性核酸由本實驗室保存;進行特異性檢驗的陽性樣本:牛冠狀病毒(bovine coronavirus, NeV, SWUN-7907)、牛諾如病毒(norovirus, NoV)、牛病毒性腹瀉病毒(bovine viral diarrhea virus, BVDV, SWUN-2011)、牛A群輪狀病毒(bovine rotavirus A, BRVA, SWUN-6554)、牛凸隆病毒(bovine torovirus, BToV);牛大腸埃希菌(SWUN-4007)、牛都柏林沙門菌(SWUN-4790)、牛產(chǎn)氣莢膜梭菌(SWUN-1103);牛瑞氏隱孢子蟲、牛艾美爾球蟲均保存于本實驗室。

    101份犢牛腹瀉糞便樣本于2020—2021年采自四川省,22份奶牛腹瀉糞便樣本采自西昌市的4個奶牛養(yǎng)殖場,35份肉牛糞便樣本采自閬中市的3個肉牛養(yǎng)殖場,44份牦牛腹瀉糞便樣本采自紅原縣和若爾蓋縣的7個牦牛養(yǎng)殖場,由本實驗室保存。

    1.2 主要試劑

    TrizolTMReagent、Prime scriptTM反轉(zhuǎn)錄試劑盒、Premix ExTaq(Probe qPCR)、DNA Marker等購于寶日醫(yī)生物有限公司;pClone007 載體、EHA105感受態(tài)細胞等購于擎科生物科技有限公司;DEPC試劑購于SIGEMA生物公司;PetNAD 核酸萃取試劑盒購于金瑞鴻捷(廈門)生物科技有限公司。

    1.3 主要儀器

    POCKITTM智能型核酸分析儀(金瑞鴻捷公司,中國廈門);熒光定量PCR儀(博日公司,杭州);cubeeTM小型高速離心機(金瑞鴻捷公司,廈門);各量程移液器(Eppendorf 公司,德國);高速冷凍離心機(長沙湘儀離心機儀器有限公司,湖南);凝膠成像系統(tǒng)(上海天能科技有限公司,上海)。

    1.4 引物、探針的設(shè)計與合成

    下載并篩選出登錄于GenBank的長度≥550 bp的國內(nèi)外全部49條NeVRdRp基因序列,以高度保守的基因序列區(qū)域為基礎(chǔ)設(shè)計了引物和探針,擴增的目的片段位于基因組的4 761―4 850 bp處(Bo/LZB-1/17/CH株)長度為90 bp,引物序列(F:5′-CAGCCYGTCTGGGTGAAT-3′;R:5′-CTGGATRGTTCTGACTTCGG-3′);探針序列:VIC-ACCACGAAGCCCARCCAAT-MGB,位于基因組的4 801―4 819 bp處。引物和探針均由北京擎科生物科技有限公司成都分公司合成。

    1.5 核酸的提取

    1.5.1 RNA的提取及反轉(zhuǎn)錄 采用Trizol法提取RNA,反轉(zhuǎn)錄使用Prime scriptTM反轉(zhuǎn)錄試劑盒(寶日醫(yī)生物有限公司),反轉(zhuǎn)錄后-20 ℃保存?zhèn)溆谩,F(xiàn)場檢測樣本使用PetNAD核酸萃取試劑盒進行提取,反轉(zhuǎn)錄所需的Prime scriptTM反轉(zhuǎn)錄試劑盒中的2號反轉(zhuǎn)錄酶經(jīng)優(yōu)化預混后,于iiRT-PCR反應(yīng)中同步進行。

    1.5.2 DNA的提取 使用酚-氯仿法提取“1.1”中的細菌和寄生蟲DNA,-20 ℃保存。

    1.6 NeV陽性標準品的制備

    將NeV的cDNA作為陽性模板,用“1.4”中設(shè)計的引物進行RT-PCR擴增,得到的產(chǎn)物使用電泳鑒定,送北京擎科生物科技有限公司成都分公司進行經(jīng)測序?qū)Ρ葻o誤并返樣。將返樣的產(chǎn)物用pClone007載體、EHA105感受態(tài)細胞進行克隆轉(zhuǎn)化,送北京擎科生物科技有限公司成都分公司進行測序并返質(zhì)粒,將質(zhì)粒作為陽性標準品。

    1.7 iiRT-PCR反應(yīng)體系的優(yōu)化

    50 μL iiRT-PCR反應(yīng)體系中Premix ExTaq預混酶為25 μL,反應(yīng)體系主要是優(yōu)化探針濃度10 μmol·μL-1(0.05~0.35 μL)、引物濃度10 μmol·μL-1(1~4 μL)、模板量(0.5~3.5 μL),以iiRT-PCR反應(yīng)前后熒光比值在2~3用量為最佳,以控制變量法確定各自最優(yōu)濃度及用量[25]。

    1.8 現(xiàn)場檢測NeV的iiRT-PCR預混試劑的制備

    為了滿足現(xiàn)場檢測,對“1.7”中描述的反應(yīng)體系進行了預混優(yōu)化。在對反應(yīng)體系進行篩選后,將檢測10份樣本需要的檢測試劑按比例分裝預混為一管,然后進行避光保存。反轉(zhuǎn)錄就在該PCR反應(yīng)管中完成,使用時只需加入模板即可開始檢測。-80 ℃避光保存?zhèn)溆?,可保?周以上;使用干冰避光保存運輸至現(xiàn)場,也可保證現(xiàn)場使用效果。

    1.9 iiRT-PCR的評價

    1.9.1 特異性評價 用建立的iiRT-PCR方法對“1.1”中的病毒、菌株和寄生蟲進行檢測,以評價本試驗建立方法的特異性。

    1.9.2 靈敏性測定 將“1.6”中制備的陽性質(zhì)粒進行10倍遞增稀釋,遞增稀釋樣品后,使用建立的iiRT-PCR方法檢測,確定該方法檢測下限。

    1.9.3 穩(wěn)定性評價 用本研究建立的方法對陽性標準品的3個連續(xù)稀釋度分別進行3次重復檢測,以評價該方法的穩(wěn)定性。

    1.10 比較4種檢測方法對臨床樣本中NeV的檢出率

    采用本試驗建立的方法和已報道的兩種熒光定量RT-PCR方法[16-17]以及目前國外使用最為廣泛的巢式RT-PCR方法[19],分別對“1.1”中臨床樣本進行檢測并比較檢出率,4種檢測方法信息見表1。如果4種方法所檢出陽性樣本編號有所不同,則對其PCR產(chǎn)物進行測序,以驗證檢測結(jié)果的準確性。

    表1 4種檢測方法信息

    1.11 NeV和其他病原混合感染情況

    檢測“1.1”中的臨床樣本中陽性樣本與BVDV、NoV、BRVA、BCoV、BToV的混合感染情況。

    2 結(jié) 果

    2.1 引物的特異性

    使用本試驗所建立的引物對2個陽性樣本及1個陰性樣本進行RT-PCR檢測(圖1),結(jié)果顯示,3個陽性樣本均檢出,陰性不檢出,將檢出的樣本進行測序證明檢測無誤,說明本試驗的引物特異性好。

    M.DNA相對分子質(zhì)量標準(50~500 bp);+.陽性樣品;-.陰性對照

    2.2 優(yōu)化的反應(yīng)體系

    經(jīng)過篩選優(yōu)化的iiRT-PCR反應(yīng)體系:5 U·μL-1的Taq酶(預混酶)25 μL,10 μmol·μL-1上下游引物各3 μL,10 μmol·μL-1探針0.3 μL,20 U·μL-1反轉(zhuǎn)錄酶0.5 μL,模板1 μL,使用DEPC H2O補足50 μL。

    2.3 iiRT-PCR的特異性評價

    本研究建立的NeV iiRT-PCR方法僅對NeV的陽性核酸樣本結(jié)果為陽性,對“1.1”中的無關(guān)病原不檢出,表明NeV iiRT-PCR方法的特異性良好。

    2.4 iiRT-PCR穩(wěn)定性評價

    用本研究建立的方法對陽性標準品的3個連續(xù)稀釋度分別進行3次重復檢測,批間變異系數(shù)(CV)為3.07%~3.12%,批內(nèi)變異系數(shù)(CV)為2.45%~3.01%,表明本研究建立的NeV iiRT-PCR方法穩(wěn)定良好。

    2.5 iiRT-PCR靈敏性檢測

    本研究制備的陽性質(zhì)??截悢?shù)為5.38×1010copies·μL-1,10倍遞增稀釋樣品后檢測用于靈敏性檢測,結(jié)果顯示,本研究建立的iiRT-PCR方法對NeV的檢測范圍是5.38×1010~5.38 copies·μL-1,核酸最低檢限測為5.38 copies·μL-1。

    2.6 iiRT-PCR對臨床樣本中 NeV 的檢測

    本試驗所建iiRT-PCR檢測方法對“1.1”的糞便樣本中NeV的平均檢出率為64.36%,其中奶牛腹瀉糞便樣本中NeV的檢出率為81.8%、肉牛腹瀉糞便樣本中NeV的檢出率為68.6%、牦牛腹瀉糞便樣本中NeV的檢出率為52.2%,優(yōu)于兩種熒光定量RT-PCR[16-17]和巢式RT-PCR方法[19]檢測結(jié)果,見表2。并且,本試驗所建檢測方法檢出的陽性樣品包含了其他3種方法所檢出的所有陽性樣本。

    表2 4種檢測方法對臨床樣本的檢測結(jié)果

    2.7 NeV和其他病原的混合感染情況

    65個檢出NeV陽性的臨床樣本中有22個僅感染NeV,剩下43個NeV陽性樣本存在與其他4種腸道病原的混合感染,詳細情況見表3。

    表3 NeV與其他腹瀉病毒的混合感染

    2.8 現(xiàn)場檢測結(jié)果

    按照“1.8”中的方法將檢測試劑預混之后,對18份犢牛(≤3月齡)腹瀉糞便樣本進行了現(xiàn)場檢測,結(jié)果顯示,18份檢測樣本中,11份為NeV陽性,7份為NeV陰性,檢出率為61.1%。將這18份臨床樣本帶回實驗室后,使用本試驗建立的iiRT-PCR方法進行檢測,檢測結(jié)果與現(xiàn)場檢測結(jié)果一致,表明本試驗建立的iiRT-PCR方法的檢測試劑預混后可滿足現(xiàn)場檢測的使用。

    3 討 論

    NeV可引起小牛的腸道損傷和嚴重水樣腹瀉,是導致犢牛腹瀉的重要病原[1,2,27]。本實驗室前期研究證實,NeV在我國多地區(qū)的奶牛和牦牛中廣泛流行,是引起我國牛腹瀉的新發(fā)病原[10-12]。作者分析了GenBank中全部49條NeVRdRp基因序列,以高度保守的基因序列區(qū)域為基礎(chǔ)設(shè)計引物和探針,建立了可以檢測NeV 的iiRT-PCR方法,具有良好的穩(wěn)定性和特異性,靈敏度為5.38 copies·μL-1,為NeV的NB-like基因型、NA-like基因型、SC-yak-like 1基因型檢測提供了新的方法,滿足了主要流行毒株的檢測需求。為滿足現(xiàn)場檢測的需要,作者對檢測試劑進行了預混優(yōu)化,使用時只需將預混試劑轉(zhuǎn)移至iiPCR反應(yīng)管中,再加入需檢測的RNA即可開始檢測,RNA所需要的反轉(zhuǎn)錄步驟同時進行,可減少加樣次數(shù),避免污染;配套使用PetNAD試劑盒與POCKITTM檢測儀,從核酸提取到匯報結(jié)果只需1 h,可節(jié)省時間。

    比較試驗表明,本方法對奶牛、肉牛和牦牛腹瀉糞便樣本中的NeV檢出率都優(yōu)于1.10中其余3種已報道的方法中[16-17,19]。作者選擇4種方法檢出結(jié)果均為陽性的臨床樣本,將其做10倍遞增稀釋,再用4種方法同時進行檢測,結(jié)果表明,本試驗建立的iiRT-PCR靈敏度與TB Green real-time RT-PCR方法[17]的靈敏度為同一數(shù)量級,比文獻[16]報道的熒光定量RT-PCR方法高10倍,比文獻[19]報道的巢式RT-PCR方法高100倍。此外,與GenBank中登錄的國內(nèi)NeV RdRp序列相比,文獻[19]報道的巢式RT-PCR方法和文獻[16]報道的SYBR Green real-time RT-PCR方法的上下游引物擴增位點均存在不同程度的序列不匹配現(xiàn)象,如:文獻[16]報道的熒光定量RT-PCR方法上游引物(18 nt)與國內(nèi)部分毒株的RdRp 序列相比有10個位點存在點突變(G1T、G4A、T7C、A9G、G10A、T13C、C16T、A17G、A19TC、C20T),而其下游引物(20 nt)存在4個位點存在點突變(T1A、T5A、A6G、T18C),這種引物與擴增序列不匹配的現(xiàn)象會影響所建方法的檢出效果。

    本試驗檢測了101份采自四川省的犢牛腹瀉樣本,NeV的平均檢出率為64.36%,在奶牛、牦牛和肉牛中的檢出率分別為81.8%、52.2%及68.6%,進一步證實NeV在四川牛群中廣泛流行,并且NeV與BCoV、BNoV、BRVA和BVDV 4種病毒中的一種或多種的混合感染達到66%(表3),這種混合感染將導致診斷更復雜,并使犢牛腹瀉的臨床治療更加困難。由于NeV是新發(fā)病原,我國在犢牛腹瀉診斷時更多考慮BCoV、BVDV和BRV等幾個常見致牛腹瀉的病毒,對NeV考慮較少。根據(jù)本試驗得到的數(shù)據(jù),建議應(yīng)將NeV納入犢牛腹瀉病原的常規(guī)檢測。盡管已經(jīng)證實NeV是一個重要的新發(fā)犢牛腹瀉病原,但目前尚無病毒分離體系,也無特異性免疫預防和治療制劑,因此,研究基于VP1的亞單位疫苗可能是一個防控NeV的有效途徑。

    4 結(jié) 論

    成功建立了檢測NeV的iiRT-PCR方法,具有穩(wěn)定性好、特異性強和靈敏度高的優(yōu)點,既可用于實驗室檢測NeV,也可配合PetNAD核酸萃取試劑盒和POCKITTM系列手持式核酸檢測儀實現(xiàn)現(xiàn)場檢測,為NeV的快速檢測提供了有力的工具。

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