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    超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法快速測定小麥中黃曲霉毒素B1

    2022-04-15 06:04:54高曉芳胡婷婷弓浩然鄭婷婷董磅礴蘇淼冉
    糧食科技與經(jīng)濟(jì) 2022年1期
    關(guān)鍵詞:工作液黃曲霉串聯(lián)

    高曉芳,胡婷婷,洪 冰,弓浩然,鄭婷婷,董磅礴,蘇淼冉

    (鄭州市糧食科學(xué)研究所,河南 鄭州 450001)

    小麥在儲存過程中因儲存方式不當(dāng)會導(dǎo)致黃曲霉毒素污染[1]。據(jù)報(bào)道[2],溫度30 ℃、相對濕度80%、谷物水分在14% 以上的條件最適合黃曲霉繁殖和生長,并且在24~34 ℃,黃曲霉的產(chǎn)毒量最高。研究表明,黃曲霉毒素具有肝臟毒性[3-4],并且具有免疫抑制作用[5],是一種能夠致癌、致畸、致突變的真菌毒素,被世界衛(wèi)生組織(WHO)癌癥研究機(jī)構(gòu)確定為1A類致癌物,受到了全世界各個(gè)國家的廣泛關(guān)注[6-7]。目前報(bào)道的黃曲霉毒素有20多種,其中黃曲霉毒素B1最為常見。為了保障谷物及其制品的安全,國際食品法典委員會(CAC)、歐盟、美國等均制定了糧食中真菌毒素限量標(biāo)準(zhǔn)[8],我國也在GB 2761—2017《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品中真菌毒素限量》中對黃曲霉毒素的限量標(biāo)準(zhǔn)作了明確的規(guī)定,每1 kg小麥中黃曲霉毒素B1不得超過5 μg[9]。目前,GB 5009.22—2016推薦的黃曲霉檢測方法主要有同位素稀釋液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法、高效液相色譜-柱前衍生法、高效液相色譜-柱后衍生法和酶聯(lián)免疫吸附法。其中,高效液相色譜-熒光檢測法(HPLC-FLD法)是最常用的方法[10-11],但此方法操作比較繁瑣,并且耗時(shí)長。本文采用同位素稀釋液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法對黃曲霉毒素B1進(jìn)行檢測,并且對直接稀釋法和免疫親和柱純化法兩種前處理方法的檢測結(jié)果進(jìn)行比較,以期建立一種快捷、便利的同位素稀釋液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法檢測黃曲霉毒素B1的方法。

    1 材料與方法

    1.1 儀器

    I-Class/XEVO TQ-S型超高液相色譜儀-三重串聯(lián)四級桿質(zhì)譜儀聯(lián)用儀:WATERS公司;MLI104型水分磨:法國Chopin公司;PL-2002型電子天平(1/100):瑞士梅特勒-托利多公司;TGL-10C型高速臺式離心機(jī):上海市安亭電子儀器廠。

    1.2 樣品

    小麥:鄭州市庫存小麥。

    1.3 試劑

    黃曲霉毒素B1標(biāo)準(zhǔn)品(純度≥98%):農(nóng)業(yè)農(nóng)村部環(huán)境保護(hù)科研監(jiān)測所;同位素內(nèi)標(biāo)13C17-黃曲霉毒素B1(純度≥98%):壇墨質(zhì)檢科技股份有限公司;乙腈(色譜純)、甲醇(色譜純):美國默克公司;乙酸銨(色譜純)、甲酸(色譜純):天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司。

    1.4 溶液制備

    1.4.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液配置

    (1)中間標(biāo)準(zhǔn)工作液:取適量黃曲霉毒素B1母液(2 μg/mL),用甲醇稀釋,得到質(zhì)量濃度為100 ng/mL的黃曲霉毒素B1中間標(biāo)準(zhǔn)工作液。

    (2)同位素內(nèi)標(biāo)工作液:取適量同位素內(nèi)標(biāo)13C17-黃曲霉毒素B1(0.5 μg/mL),用甲醇稀釋至100 ng/mL。

    (3)標(biāo)準(zhǔn)系列工作溶液:準(zhǔn)確移取黃曲霉毒素 B1中間標(biāo)準(zhǔn)工作液(100 ng/mL) 10、50、100、200、500、800、1 000 μL至10 mL容量瓶中,加入200 μL 100 ng/mL的同位素內(nèi)標(biāo)工作液,用初始流動相定容至刻度,配制質(zhì)量濃度為0.1、0.5、1.0、2.0、5.0、8.0、10.0 ng/mL的系列標(biāo)準(zhǔn)溶液。

    1.4.2 待測樣品溶液制備

    取樣量1 kg,用高速粉碎機(jī)將其粉碎,過篩(粒徑小于2 mm)。稱取5 g試樣(精確至0.01 g)于50 mL離心管中,加入100 μL同位素內(nèi)標(biāo)工作液,振蕩混合后靜置30 min。加入20.0 mL乙腈—水溶液(84+16),置于渦旋振蕩器中振20 min,6 000 r/min離心10 min,玻璃纖維濾紙過濾,取上清液備用。

    1.5 試樣的凈化

    準(zhǔn)確移取4 mL上清液,加入46 mL水,混勻,上免疫親和柱,用2×10 mL水淋洗柱子,然后用1 mL甲醇洗脫親和柱,收集全部洗脫液至試管中,并在50 ℃下氮吹至近干,加入1.0 mL初始流動相,渦旋1 min溶解殘留物,0.22 μm有機(jī)濾膜過濾后上機(jī)。

    1.6 超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜條件的選擇及優(yōu)化

    1.6.1 液相色譜條件

    色譜柱:Waters ACQUITY UPLC BEH C18(2.1×50 mm,1.7 μm);柱溫:40 ℃;流動相:鹽溶液(A),含0.1%甲酸的4.0 mmol/L乙酸銨溶液,甲醇(B);流速:0.3 mL / min;進(jìn)樣量:5 μL。梯度洗脫程序見表1。

    表1 UPLC梯度洗脫程序

    1.6.2 質(zhì)譜條件

    (1) 離子源控制條件:離子源為電噴霧離子源(ESI);檢測方式為ESI+,MRM多反應(yīng)監(jiān)測模式;毛細(xì)管電壓2.5 kV;錐孔電壓40 V;離子源溫度150 ℃;錐孔反吹氣流量150 L/h;霧化氣溫度450 ℃;質(zhì)譜接口溫度(HSID)280 ℃。

    (2) 離子參數(shù)優(yōu)化:將黃曲霉毒素B1的標(biāo)準(zhǔn)儲備液用甲醇稀釋定容至1 μg/mL,通過色譜柱-質(zhì)譜進(jìn)樣法,分別評估正、負(fù)離子模式下黃曲霉毒素B1的電離情況。結(jié)果顯示,在正離子模式下,黃曲霉毒素B1有較好的響應(yīng),并采用正離子模式優(yōu)化質(zhì)譜條件參數(shù),參數(shù)優(yōu)化結(jié)果見表2。

    表2 離子選擇參數(shù)表

    2 結(jié)果與分析

    2.1 相關(guān)系數(shù)和線性范圍檢測

    配置質(zhì)量濃度為0.1、0.5、1.0、2.0、5.0、8.0、10.0 ng/mL的黃曲霉毒素B1系列標(biāo)準(zhǔn)溶液,在確定的液質(zhì)聯(lián)用檢測條件下進(jìn)行測定,在1.72 min時(shí)檢測到目標(biāo)峰,總離子色譜圖見圖1。以黃曲霉毒素B1色譜峰與13C17-黃曲霉毒素 B1色譜峰的峰面積比值為縱坐標(biāo),黃曲霉毒素 B1質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)進(jìn)行線性回歸。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,黃曲霉毒素B1在0.1~10.0 ng/mL的質(zhì)量濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,線性方程:If=1.777c + 0.005 23,其相關(guān)系數(shù)R2為0.999 7,標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖2。

    圖1 總離子色譜圖

    圖2 標(biāo)準(zhǔn)曲線

    2.2 檢出限和定量限

    將空白小麥樣品獨(dú)立測試10次,樣品空白平均值加上3倍的標(biāo)準(zhǔn)偏差確定方法的檢出限(LOD)為0.004 μg/kg,樣品空白平均值加上10倍的標(biāo)準(zhǔn)偏差確定方法的定量限(LOQ)為0.01 μg/kg。檢出限與定量限均小于標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定的檢出限與定量限要求,能夠滿足小麥中黃曲霉毒素B1的檢測要求[12]。

    2.3 精密度和正確度(回收率)

    選取不含黃曲霉毒素B1的小麥樣品進(jìn)行精密度和加標(biāo)實(shí)驗(yàn),分別在空白樣品中添加不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液,使黃曲霉毒素B1最終濃度分別為0.1、4.5、9.0 μg/kg,在同樣 的 液 質(zhì)聯(lián)用檢測條件下進(jìn)行測定。其相對標(biāo)準(zhǔn)偏差和回收率結(jié)果見表3。由表3可知,3個(gè)濃度水平的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.30%~11.50%,加標(biāo)回收率為91.7%~100.9%,符合GB/T 27404附錄F的要求。

    表3 小麥中黃曲霉毒素B1的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差和加標(biāo)回收率

    2.4 直接稀釋法和免疫親和柱純化法對檢測結(jié)果的影響

    考慮到免疫親和純化法耗時(shí)長、費(fèi)用高,且小麥基質(zhì)中物質(zhì)比較單一,雜質(zhì)少、干擾少的特點(diǎn),在前處理中,采用將提取液直接稀釋后上機(jī)檢測的方法,即準(zhǔn)確轉(zhuǎn)移4 mL提取液于另一15 mL離心管中,加入4 mL水,渦旋混勻后,6 000 r/min離心5 min,吸取上清液過0.22 μm有機(jī)濾膜后上機(jī)檢測,并對兩種前處理方法的結(jié)果進(jìn)行比較,結(jié)果見表4。由此可知,直接稀釋法檢測結(jié)果的精密度為3.49%,回收率為93.8%,免疫親和柱純化法檢測結(jié)果的精密度為3.10%,回收率為92.2%,采用兩種不同前處理方法的檢測結(jié)果均符合GB/T 27404附錄F的要求。

    表4 兩種前處理方法的檢測結(jié)果比較

    直接稀釋法相較于免疫親和柱純化法更節(jié)省時(shí)間,節(jié)約成本,且減少了前處理過程中目標(biāo)化合物的損失,因此直接稀釋法更適合大批量樣品的檢測。

    3 結(jié) 論

    本實(shí)驗(yàn)基于GB 5009.22—2016中黃曲霉毒素B1檢測方法——同位素稀釋液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法,并對樣品的前處理方法、色譜及質(zhì)譜條件作了優(yōu)化,建立了快速準(zhǔn)確定量分析小麥中黃曲霉毒素B1的同位素稀釋液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法。還考察了該方法的相關(guān)系數(shù)和線性范圍,檢測了方法的檢出限和定量限,并通過加標(biāo)回收試驗(yàn)檢測了方法的精密度和準(zhǔn)確度,結(jié)果均符合GB/T 27404附錄F的要求,滿足實(shí)驗(yàn)室快速、準(zhǔn)確定量分析大批量小麥中黃曲霉毒素B1的檢測需求。

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