水楊酸處理對(duì)鮮蓮采后品質(zhì)及抗氧化酶活性的影響

嚴(yán) 銳，韓延超，吳偉杰，陳杭君，郜海燕*

（1 浙江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院食品科學(xué)研究所 杭州 310021 2 農(nóng)業(yè)農(nóng)村部果品產(chǎn)后處理重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 杭州 310021 3 浙江省果蔬保鮮與加工技術(shù)研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 杭州 310021 4 中國輕工業(yè)果蔬保鮮與加工重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 杭州 310021）

蓮（Nelumo nucifera Gaertn.），睡蓮科蓮屬，多年生水生植物，具備觀賞、食用等多種經(jīng)濟(jì)價(jià)值[1]，其種植范圍主要分布在我國湖南、湖北、浙江、江蘇等地區(qū)。蓮子中含有豐富的營養(yǎng)物質(zhì)及功能成分，包括原花青素、生物堿、維生素、水溶性多糖等[2]。新鮮蓮子因口感脆嫩、風(fēng)味獨(dú)特，還具有抗氧化、保肝等功效而受到廣大消費(fèi)者的喜愛[3-4]。

鮮蓮采收多在7～9月的高溫季節(jié)，采后極易發(fā)生褐變、衰老等品質(zhì)劣變。常溫下鮮蓮的貨架期僅為3～5 d，若不經(jīng)保鮮處理4～5 h 后品質(zhì)就將嚴(yán)重下降[5-7]。因此，該產(chǎn)業(yè)急需安全有效的高品質(zhì)保鮮技術(shù)。王建輝等[8]研究表明，4 ℃的貯藏條件與25 ℃的相比能明顯延長鮮蓮的貨架期；朱雁青[9]研究認(rèn)為，在常溫條件（25 ℃）下6-BA 處理可延長鮮蓮的保鮮期。王瑤等[10]研究表明，0.25 mmol/L NO 處理可有效保持鮮蓮及蓮子品質(zhì)，常溫貨架期可延長2～3 d。隋棠等[11]利用氣調(diào)箱結(jié)合低溫，使得鮮蓮貯藏期比常規(guī)包裝延長1 周。Li[12-13]等研究表明0.5 μL/L 1-MCP 處理可維持采后鮮蓮較好的營養(yǎng)品質(zhì)和抗氧化性，且后期發(fā)現(xiàn)1-MCP 結(jié)合漆蠟處理可延緩蓮子細(xì)胞壁的降解，保持細(xì)胞完整性，從而延緩采后衰老。

水楊酸（salicylic acid，SA）是植物體內(nèi)的一種小分子酚類物質(zhì)，被認(rèn)為是一種新的植物激素和內(nèi)源激發(fā)子，可參與植物體內(nèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)并調(diào)節(jié)生理、生化過程[14-15]。大量國內(nèi)外研究表明，SA 可以延緩果實(shí)衰老并延長貨架期，誘導(dǎo)植物提高抗病性，增強(qiáng)抗逆性[16-17]。付云云等[18]研究表明SA 可以顯著抑制子姜采后失重和硬度變化，延緩總酚、姜辣素等含量下降；王云香等[19]研究表明SA 可以保持西葫蘆采后品質(zhì)，并提高其抗氧化能力。亦有研究表明SA 處理有利于延長香蕉[20]、菠蘿[21]、桃[22]等的貯藏期。然而，水楊酸對(duì)鮮蓮的保鮮作用尚未見研究報(bào)道。

本試驗(yàn)以“十里荷一號(hào)”鮮蓮為試驗(yàn)材料，采用不同濃度（0.2，0.4 mmol/L 和0.6 mmol/L）SA 溶液處理，研究其對(duì)鮮蓮采后品質(zhì)及抗氧化酶活性的影響，以期為鮮蓮采后保鮮技術(shù)研發(fā)提供理論參考。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

鮮蓮采摘于浙江省杭州灣里塘蓮藕專業(yè)合作社，采后2 h 內(nèi)運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室。挑選大小均一、無明顯機(jī)械損傷、八成熟的鮮蓮作為試驗(yàn)材料。

水楊酸、碘、碘化鉀、乙醚、硫代巴比妥酸等均為分析純?cè)噭虾Ｔ慈~生物科技有限公司；草酸為分析純?cè)噭?，國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司；氫氧化鈉為分析純?cè)噭?，西隴科學(xué)股份有限公司；磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉、苯酚、濃硫酸、酒石酸鉀鈉、亞硫酸鈉、乙醇、福林酚、三氯乙酸、過氧化氫等均為分析純?cè)噭虾Ａ桎h化學(xué)試劑有限公司；3，5-二硝基水楊酸為分析純?cè)噭ど锕こ坦煞萦邢薰?；碳酸鈉為分析純?cè)噭瑹o錫市晶科化工有限公司；愈木創(chuàng)酚、鄰苯二酚均為分析純?cè)噭虾｛溈肆稚萍加邢薰尽?/p>

1.2 儀器與設(shè)備

CR-400 手持色差儀，日本柯尼卡美能達(dá)公司；Cintra404 紫外分光光度計(jì)，澳大利亞GBC 公司；UV 9000 紫外-可見分光光度計(jì)，上海元析儀器有限公司；LB20T 手持糖度計(jì)，廣州市速為電子科技有限公司；Bifugo stratos 高速冷凍離心機(jī)，美國Thermo 公司；XMTD-8222 水浴鍋，上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司；MRC-250B 智能人工氣候箱，上海百典儀器設(shè)備有限公司。

1.3 試驗(yàn)方法

以清水浸泡為對(duì)照（CK），分別將鮮蓮浸入0.2，0.4，0.6 mmol/L 3 個(gè)濃度的水楊酸溶液中，浸泡3 min，自然晾干，將每組樣品裝于PE 保鮮袋中挽口貯藏（20±1 ℃），每袋6 個(gè)鮮蓮，每個(gè)處理重復(fù)3 次。貯藏期間每2 d 取樣1 次，取樣至10 d。每次取樣測(cè)定蓮房及蓮子色澤、呼吸速率后，去除蓮房、蓮子皮、蓮芯并切除蓮子兩端各2～3 mm 后，迅速冷凍于液氮中，于-80 ℃存放，用于測(cè)定后續(xù)相關(guān)指標(biāo)。

1.4 品質(zhì)指標(biāo)測(cè)定

1.4.1 色差的測(cè)定 用全自動(dòng)色差計(jì)測(cè)定，儀器采用標(biāo)準(zhǔn)白板校正。其中，L*表示明度，a*和b*表示色度。將鮮蓮?fù)獗韨?cè)面分為3 等份，每等份測(cè)定1 次。取每個(gè)鮮蓮中間及邊緣蓮子共4 顆進(jìn)行測(cè)定，每個(gè)處理取6 個(gè)鮮蓮，取平均值。

1.4.2 呼吸強(qiáng)度的測(cè)定 參考曹健康等[23]的方法并略有改動(dòng)。取10.0 mL 0.4 mo1/L NaOH 放入培養(yǎng)皿中，將培養(yǎng)皿放到干燥器底部，放置隔板，裝入6 個(gè)鮮蓮，封蓋。密閉0.5 h 后取出培養(yǎng)皿，將堿液移入三角瓶中，加入5.0 mL 飽和BaCl2溶液和2 滴酚酞指示劑，用0.2 mo1/L 草酸溶液滴定，用同樣方法作空白滴定。

1.4.3 褐變度的測(cè)定 參考Sun 等[24]的方法并略有改動(dòng)。稱取1.0 g 蓮子樣品，加入5 mL 0.1 mol/L磷酸緩沖液（pH 6.8）勻漿，4 ℃、10 000 r/min 離心20 min。取上清液于410 nm 處測(cè)定吸光值，計(jì)算褐變度。

褐變度=10×A410nm

1.4.4 可溶性固形物的測(cè)定 稱取1.0 g 蓮子樣品，加入1 mL 蒸餾水，研磨，紗布過濾，濾液于4℃，4 000 r/min 條件下離心15 min，所得上清液用手持糖度計(jì)測(cè)定，讀取數(shù)值。

1.4.5 可溶性糖的測(cè)定 采用苯酚-硫酸法測(cè)定可溶性糖。稱取0.5 g 蓮子樣品，加入5 mL 蒸餾水，沸水浴30 min，冷卻后過濾，將濾液轉(zhuǎn)移至100 mL 容量瓶中，將濾渣重新轉(zhuǎn)入試管中，加5 mL 蒸餾水，繼續(xù)煮沸提取10 min，過濾，濾液合并，定容100 mL，即可溶性糖提取液。在25 mL 刻度試管中加入0.5 mL 提取液，依次加入1.5 mL 蒸餾水，1 mL 90 g/L 苯酚溶液，搖勻，再加入5.0 mL濃硫酸，立即充分振蕩，室溫下靜置30 min。測(cè)定該溶液于波長485 nm 處的吸光值。

1.4.6 還原糖的測(cè)定 采用3，5-二硝基水楊酸法測(cè)定還原糖。稱取0.5 g 蓮子樣品，加入蒸餾水定容25 mL，溶液于80 ℃恒溫浸提30 min。取出冷卻，過濾至100 mL 容量瓶中，蒸餾水反復(fù)沖洗濾渣，定容100 mL，即還原糖提取液。于25 mL 刻度試管中加入2 mL 樣品提取液和1.5 mL 3，5-二硝基水楊酸溶液，混勻，沸水浴5 min，冷卻后，用蒸餾水定容刻度。測(cè)定反應(yīng)液于540 nm 處的吸光度值。

1.4.7 淀粉含量的測(cè)定 采用碘-淀粉比色法測(cè)定淀粉含量。稱取1.0 g 蓮子樣品于燒杯中，用50 mL 乙醚分3～5 次混勻、過濾，濾渣用50 mL 80%乙醇分3～5 次混勻、過濾，將濾渣轉(zhuǎn)移至小燒杯中，加入少量蒸餾水，沸水浴30 min，轉(zhuǎn)移至100 mL 容量瓶中定容，最后在660 nm 處測(cè)定吸光值。

1.4.8 總酚含量的測(cè)定 采用福林酚法測(cè)定總酚含量。稱取1.0 g 蓮子樣品，加入5 mL 60%乙醇溶液，在25 ℃條件下取液浸提2 h，于10 000 r/min、4 ℃條件下離心20 min。于25 mL 具塞試管中加入2 mL 上清液和3 mL 福林酚試劑，搖勻靜置5 min，加入6 mL 7.5%碳酸鈉溶液，用蒸餾水定容25 mL，25 ℃下暗反應(yīng)2 h，于波長760 nm 處測(cè)定其吸光度。

1.4.9 丙二醛含量的測(cè)定 丙二醛（MDA）含量的測(cè)定采用硫代巴比妥酸比色法。稱取1.0 g 蓮子樣品，加入5 mL 10%三氯乙酸溶液，于4 ℃、12 000 r/min 條件下離心20 min，收集上清液。取2 mL 上清液，加入2 mL 6.7 g/L 硫代巴比妥酸溶液，混勻后沸水浴20 min，冷卻后分別測(cè)定450，532 和600 nm 處吸光度值。

式中：C——反應(yīng)混合液中MDA 濃度，mmol/L；V——樣品提取液總體積，mL；Vs——測(cè)定時(shí)所取樣品提取液體積，mL；m——樣品質(zhì)量，g。

1.4.10 POD 活性的測(cè)定 過氧化物酶 （POD）活性測(cè)定參考吳松霞等[25]方法并略有改動(dòng)。稱取1.0 g 蓮子于10 mL 離心管，立即加5 mL 0.1 mol/L 磷酸緩沖液（pH 6.8），于12 000 r/min、4 ℃條件下離心25 min，取上清液，即酶提取液。反應(yīng)體系：0.3 mL 酶液＋0.3 mL 6 mmol/L 愈創(chuàng)木酚+2.4 mL 5 mmol/L H2O2，以蒸餾水作為對(duì)照，測(cè)定混合液反應(yīng)15 s 后在470 nm 處3 min 內(nèi)的吸光度值變化。

1.4.11 PPO 活性的測(cè)定 多酚氧化酶 （PPO）活力測(cè)定參考Zauberman 等[26]的方法并稍作修改。3 mL 反應(yīng)體系：0.2 mL 酶液＋2.8 mL 10 mmol/L 鄰苯二酚，以蒸餾水作為對(duì)照，測(cè)定混合液反應(yīng)15 s后在420 nm 處3 min 內(nèi)的吸光度值變化。

1.4.12 CAT 活性的測(cè)定 稱取1.0 g 蓮子于10 mL 離心管，立即加5 mL 0.1 mol/L 磷酸緩沖液（pH 7.5，含5 mmol/L DTT 和5% PVP），于12 000 r/min、4 ℃條件下離心25 min，取上清液，即酶提取液。3 mL 反應(yīng)體系：2.9 mL 20 mmol/L H2O2+100 μL 酶提取液，以蒸餾水作為對(duì)照，測(cè)定混合液反應(yīng)15 s 后在240 nm 處3 min 內(nèi)的吸光度值變化。

1.4.13 SOD 活性的測(cè)定 采用南京建成生產(chǎn)的SOD 試劑盒測(cè)定，通過預(yù)試驗(yàn)，將SOD 抑制率控制在45%～50%之間，然后按照試劑盒說明書依次加入試劑至測(cè)定管和對(duì)照管中，混勻，37 ℃恒溫水浴40 min，加入顯色劑，室溫放置10 min，于550 nm 處測(cè)吸光度值。

1.5 數(shù)據(jù)處理

所有數(shù)據(jù)測(cè)定3 次，采用Excel 2010 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)，Origin Pro 2017 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)圖表制作，采用SPSS 24.0 軟件的Duncan's 法進(jìn)行數(shù)據(jù)顯著差異分析（P＜0.05）。

2 結(jié)果與分析

2.1 SA 處理對(duì)蓮蓬及蓮子色澤的影響

如表1所示，L*、a*、b*值分別代表蓮蓬及蓮子的表面明亮、紅綠和黃藍(lán)程度，其中a*、b*值的絕對(duì)值越大顏色越深。貯藏期間蓮蓬的a*絕對(duì)值緩慢下降，與0 d 相比，貯藏末期各處理組分別下降了46.77%（CK），45.57%（0.2 mmol/L），28.51%（0.4 mmol/L），50.12%（0.6 mmol/L），0.4 mmol/L 處理組與其它處理組之間存在顯著性差異 （P<0.05）。鮮蓮的L*值呈下降趨勢(shì)，在貯藏末期，L*值的范圍在41.74～43.44 之間，各處理組間無顯著性差異。鮮蓮的b*值逐漸降低，表明蓮蓬由綠色向黃色轉(zhuǎn)變，在貯藏末期10 d，0.4 mmol/L 處理組與對(duì)照組（CK）、0.2 mmol/L 處理組差異顯著（P<0.05）。蓮子皮的色澤變化與蓮蓬的變化趨勢(shì)類似，在貯藏末期SA 處理組與CK 組的L*值無顯著性差異；貯藏2～10 d，0.4 mmol/L 處理組的a*值與CK 組具有顯著性差異（P<0.05）；在整個(gè)貯藏期間，0.4 mmol/L 處理組b*值與其它處理組有顯著差異（P<0.05）。

表1 水楊酸處理對(duì)采后鮮蓮色澤的影響Table 1 Effect of SA treatment on the color of fresh lotus

2.2 SA 處理對(duì)鮮蓮呼吸速率的影響

如圖1所示，鮮蓮的呼吸速率呈先降后升的趨勢(shì)，CK 和0.2 mmol/L SA 處理組第6 天時(shí)降到最低，隨后迅速上升，而0.4 mmol/L 和0.6 mmol/L處理組則在第4 天降到最低，然后上升。在整個(gè)貯藏期間，0.4 mmol/L SA 處理組的呼吸強(qiáng)度顯著低于CK 組（P<0.05）。

圖1 水楊酸處理對(duì)鮮蓮呼吸速率的影響Fig.1 Effect of SA treatment on respiration rate of lotus pods

2.3 SA 處理對(duì)蓮子褐變度的影響

由圖2可知，整個(gè)貯藏期間蓮子的褐變度呈上升趨勢(shì)，在0～4 d，蓮子的褐變程度變化小，貯藏4 d 時(shí)CK、0.2 mmol/L 處理組褐變度開始快速上升，而0.4 mmol/L 和0.6 mmol/L 處理組緩慢上升；第10 天時(shí)CK、0.2 mmol/L 和0.6 mmol/L 處理 組褐變度分別比0.4 mmol/L 處理組高46.23%，24.68%，27.27%，且0.4 mmol/L 處理組在整個(gè)貯藏期間始終保持較低水平，顯著低于其它處理組（P<0.05）。

圖2 水楊酸處理對(duì)蓮子褐變度的影響Fig.2 Effect of SA treatment on browning degree of lotus seeds

2.4 SA 處理對(duì)蓮子可溶性固形物（SSC）的影響

可溶性固形物是果蔬采后營養(yǎng)物質(zhì)變化的綜合表現(xiàn)，是判斷果蔬品質(zhì)的重要因素之一。如圖3所示，隨著貯藏時(shí)間的延長，蓮子的SSC 含量呈先降后升的趨勢(shì)，在貯藏0～4 d 各處理間無明顯變化；在第4 天時(shí)CK 組迅速上升，而SA 處理組變化較為緩慢，且在貯藏4～10 d，0.4 mmol/L 處理組SSC 含量維持較低水平，顯著低于對(duì)照組（P<0.05）。

圖3 水楊酸處理對(duì)蓮子SSC 含量的影響Fig.3 Effect of SA treatment on SSC content of lotus seeds

2.5 SA 處理對(duì)蓮子還原性糖和可溶性糖的影響

由圖4a 可知，貯藏期間，蓮子還原糖含量總體呈先迅速下降后緩慢上升的趨勢(shì)，其中CK 和0.2 mmol/L 處理組在第2 天分別降低80.47%和72.58%，0.4 mmol/L 和0.6 mmol/L 處理組還原性糖含量則在第4 天分別降低68.24%和72.58%。貯藏10 d，CK、0.2 mmol/L 和0.6 mmol/L 處理組含量分別比0.4 mmol/L 處理組降低46.75%，31.17%和13.85%，且CK 組含量顯著低于0.4 mmol/L 處理組（P<0.05）。

如圖4b 所示，可溶性糖含量變化趨勢(shì)與還原糖變化趨勢(shì)相似，呈先下降后上升的趨勢(shì)，在第4天降至最低。貯藏末期，CK 組可溶性糖含量為初始值的88.06%，顯著高于SA 處理組（P<0.05），0.4 mmol/L 處理組的可溶性糖含量顯著低于其它處理組（P<0.05），為初始值的42.54%。由此可見，0.4 mmol/L SA 處理可抑制蓮子可溶性糖的積累。

圖4 水楊酸處理對(duì)蓮子還原糖（a）和可溶性糖（b）含量的影響Fig.4 Effect of SA treatment on reducing sugar （a） and soluble sugar （b） content of lotus seeds

2.6 SA 處理對(duì)蓮子淀粉的影響

淀粉是植物體內(nèi)儲(chǔ)存能量的主要形式之一。如圖5所示，蓮子的淀粉含量在貯藏期間總體呈先上升后下降的趨勢(shì)。貯藏0～6 d，SA 處理組蓮子淀粉不斷積累，第6 天淀粉含量開始下降，而CK組蓮子淀粉含量在第8 天下降。貯藏4～10 d，0.4 mmol/L 處理組的蓮子淀粉含量顯著高于CK、0.2 mmol/L 處理組（P<0.05），說明0.4 mmol/L SA 處理可有效減緩蓮子內(nèi)部淀粉的消耗。

圖5 水楊酸處理對(duì)蓮子淀粉含量的影響Fig.5 Effect of SA treatment on starch content of lotus seeds

2.7 SA 處理對(duì)蓮子總酚的影響

酚類物質(zhì)是引起植物發(fā)生褐變的重要底物，主要是由多酚氧化酶催化酚類物質(zhì)轉(zhuǎn)變?yōu)轷悾M(jìn)而形成黑褐色物質(zhì)[1]。如圖6可知，隨著貯藏時(shí)間的延長，總酚含量逐漸降低。貯藏期間，0.4 mmol/L 處理組總酚含量顯著高于CK 組（P<0.05），略高于0.2 mmol/L 和0.6 mmol/L 處理組，差異不顯著。貯藏末期CK，0.2，0.4，0.6 mmol/L 處理組分別較初期降低40.91%，35.51%，33.98%，38.44%。試驗(yàn)結(jié)果表明，0.4 mmol/L SA 處理對(duì)維持蓮子較高的總酚含量具有積極作用。

圖6 水楊酸處理對(duì)蓮子總酚含量的影響Fig.6 Effect of SA treatment on total phenol content of lotus seeds

2.8 SA 處理對(duì)蓮子丙二醛的影響

丙二醛（MDA）是果蔬膜脂過氧化的主要產(chǎn)物之一，通常用來反映細(xì)胞膜脂過氧化程度。如圖7所示，整個(gè)貯藏期間MDA 含量先下降后上升，且CK 組的MDA 含量顯著高于SA 處理組（P<0.05）。貯藏末期 （10 d）SA 處理組MDA 含量分別為CK組 的25.24%（0.2 mmol/L），23.42%（0.4 mmol/L），28.12%（0.6 mmol/L），且各處理組間差異顯著（P<0.05）。試驗(yàn)結(jié)果表明，SA 處理可有效抑制鮮蓮內(nèi)MDA 含量的增加，降低細(xì)胞的膜脂質(zhì)過氧化程度。

圖7 水楊酸處理對(duì)蓮子MDA 含量的影響Fig.7 Effect of SA treatment on MDA content of lotus seeds

2.9 SA 處理對(duì)蓮子PPO、POD 的影響

由圖8a 可知，貯藏期間蓮子POD 活性整體呈上升趨勢(shì)，CK 組活性上升較快，而SA 處理組的變化趨勢(shì)較為平緩，在貯藏4～10 d 時(shí)0.4 mmol/L 處理組的POD 活力低于其它處理組（P<0.05）。由圖8b 可知，蓮子PPO 活力總體呈先升后降的趨勢(shì)，CK 組0.2 mmol/L 和0.6 mmol/L 處理組在貯藏前期差異不顯著，而0.4 mmol/L 處理組的PPO活力始終顯著低于其它處理組（P<0.05）。由此說明，0.4 mmol/L SA 處理可有效抑制貯藏期間蓮子POD、PPO 活性，從而延緩鮮蓮采后褐變等衰老現(xiàn)象的發(fā)生。

圖8 水楊酸處理對(duì)蓮子POD（a）和PPO（b）活性的影響Fig.8 Effect of SA treatment on POD （a） and PPO （b） activities of lotus seeds

2.10 SA 處理對(duì)蓮子SOD、CAT 活性的影響

如圖9a 可知，蓮子SOD 活性在貯藏前2 d急劇下降，隨后迅速上升，其活性在第2 天分別下降 3.62% （CK），2.15% （0.2 mmol/L），0.80% （0.4 mmol/L），1.84%（0.6 mmol/L），且整個(gè)貯藏期間0.4 mmol/L 處理組的活性始終高于其它處理組，除第2 天外，均呈顯著性差異（P<0.05）。由圖9b 可知，貯藏0～6 d 蓮子CAT 活力呈上升趨勢(shì)，在第6 天達(dá)到峰值，之后不斷下降。其中0.4 mmol/L 處理組較CK 組CAT 活力下降較為緩慢，且活力顯著高于其它處理組（P<0.05）。由此說明，SA 處理可提高蓮子SOD 和CAT 活性，維持較高的抗氧化能力。

圖9 水楊酸處理對(duì)蓮子SOD（a）和CAT（b）活力的影響Fig.9 Effect of SA treatment on SOD （a） and CAT （b） activities of lotus seeds

3 討論與結(jié)論

鮮蓮采后具有較強(qiáng)的呼吸作用，加快了鮮蓮及蓮子的褐變及腐爛，這是其貨架期短的主要原因。本試驗(yàn)表明0.4 mmol/L 水楊酸（SA）處理可以抑制采后鮮蓮的呼吸作用，延緩鮮蓮及蓮子的褐變，維持其營養(yǎng)品質(zhì)，從而延長其貨架期。這與趙洪薇[27]使用水楊酸處理可抑制甜瓜褐變，提高甜瓜耐貯藏性的研究結(jié)果一致。

蓮子中含有豐富的糖、淀粉等碳水化合物，且淀粉含量變化可直接影響蓮子品質(zhì)[28]。本研究中蓮子淀粉含量隨貯藏時(shí)間呈緩慢上升再下降的趨勢(shì)，還原糖和可溶性糖含量則呈現(xiàn)先下降后緩慢上升的趨勢(shì)，其原因可能是在貯藏過程中蓮子淀粉被淀粉酶降解為蔗糖、麥芽糖及葡萄糖等可溶性糖，然后被水解為還原糖[29]。貯藏前期還原糖和可溶性糖含量急劇減少，也可能有鮮蓮為適應(yīng)外部環(huán)境增強(qiáng)呼吸消耗的原因[30]。蓮子可溶性固形物含量先下降后上升的變化也可能是淀粉含量變化所致，這與周宏勝等[31]的研究結(jié)果類似。本試驗(yàn)結(jié)果表明，與CK 組（對(duì)照）相比，SA 處理可顯著抑制蓮子淀粉的降解，并保持較低的可溶性固形物含量。

當(dāng)植物受到外界不良環(huán)境協(xié)迫時(shí)，會(huì)引發(fā)MDA 累積而加速植物細(xì)胞膜脂過氧化，破壞細(xì)胞膜的功能和完整性[32]。本研究中，蓮子的MDA 含量在貯藏期間呈先降后升的趨勢(shì)，在貯藏中后期，0.4 mmol/L SA 處理顯著抑制了蓮子MDA 含量的生成。由此表明SA 可有效抑制蓮子膜脂過氧化，延緩蓮子的衰老。石亞莉[33]研究表明SA 處理能夠抑制蘋果在冷藏過程中MDA 的合成和積累，降低細(xì)胞膜脂受損的程度。這與SA 處理提高蓮子的抗氧化性，清除細(xì)胞活性氧的積累有關(guān)。在植物的成熟衰老過程中自身抗氧化系統(tǒng)發(fā)揮重要作用，可以平衡并減少過量活性氧對(duì)植物的傷害，植物抗氧化系統(tǒng)主要由SOD、CAT、POD 等抗氧化酶組成[34]。本研究結(jié)果表明0.4 mmol/L SA 處理可維持蓮子較高的SOD 和CAT 活性，提高了蓮子的抗氧化性。Tareen 等[35]研究表明SA 處理可提高采后桃果實(shí)抗氧化相關(guān)酶（SOD、CAT、POD）的活性；陳雙穎等[36]利用SA 處理提高鮮切青花菜的抗氧化活性。在貯藏過程中蓮皮黃化和蓮子褐變是最明顯的變化，而蓮子褐變與PPO 和POD 所致酶促褐變密切相關(guān)，在貯藏過程中蓮子PPO 活性呈上升趨勢(shì)，POD 活性呈先升后降趨勢(shì)，其中0.4 mmol/L SA 處理組顯著抑制了PPO 和POD 活性，從而延緩了蓮子褐變。Ding 等[37]研究表明SA 處理可以抑制桃果實(shí)PPO 活性。本研究與上述結(jié)論相似，研究結(jié)果顯示SA 處理可延緩鮮蓮采后貯藏期間SOD、CAT、POD 活性的下降，并抑制PPO 的活性，其中0.4 mmol/L SA 處理組效果最為顯著。

綜上所述，0.4 mmol/L SA 處理可有效維持鮮蓮采后的外觀品質(zhì)，抑制鮮蓮呼吸作用，減緩蓮子淀粉、還原糖等的消耗，有效維持蓮子SOD、CAT、POD 等抗氧化酶活性，減少M(fèi)DA 的積累，減輕膜質(zhì)過氧化的傷害，同時(shí)顯著抑制PPO 活性的上升，從而抑制褐變程度，保持較好的貯藏品質(zhì)，延長貨架期。