閆 肅,秦 遷,陳靜鋒,楊 陽,閆 航,李田田,高鑫鑫,王佑翔,丁素英
1)鄭州大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院流行病學(xué)教研室 鄭州 450001 2)鄭州大學(xué)第一附屬醫(yī)院健康管理中心 鄭州 450052
隨著經(jīng)濟水平的發(fā)展,2型糖尿病(type 2 diabetes mellitus,T2DM)的發(fā)病率逐年上升。2020年的流行病學(xué)調(diào)查[1]顯示我國糖調(diào)節(jié)受損患病率達15.5%,T2DM患病率達11.2%,T2DM中血糖控制不理想者超過60%。長期處于高血糖狀態(tài)會引發(fā)冠心病、腦卒中、腎動脈硬化和狹窄、肢端動脈硬化等疾病,給家庭和社會帶來沉重負擔(dān)[2]。但T2DM的發(fā)病機制復(fù)雜,至今尚未完全闡明。除了經(jīng)典的胰島素抵抗學(xué)說,近年來研究[3]發(fā)現(xiàn)“人體第二基因組”——腸道菌群,在肥胖、糖尿病等代謝疾病的發(fā)生發(fā)展中起著關(guān)鍵的作用。腸道菌群參與了人體的消化吸收、糖脂代謝、能量轉(zhuǎn)運、免疫等過程[4],腸道菌群的紊亂還會影響代謝疾病(肥胖、糖尿病等)的發(fā)生發(fā)展[5]。目前的研究[6-9]發(fā)現(xiàn)T2DM患者腸道菌群中乳酸桿菌增加,而雙歧桿菌減少;在服用了二甲雙胍之后,腸桿菌科細菌、酵母菌減少,雙歧桿菌、擬桿菌增多。以上研究主要著重于T2DM腸道菌群變化及相關(guān)的藥物干預(yù)研究。本研究著重于從α多樣性、β多樣性以及物種差異等多方面分析不同血糖控制狀態(tài)的T2DM患者腸道菌群特征,并基于差異腸道菌群數(shù)據(jù)建立T2DM患者血糖控制情況的預(yù)測模型,探討基于腸道菌群來干預(yù)血糖代謝和強化血糖控制的可行性。
1.1 研究對象研究對象來源于2018至2019年在鄭州大學(xué)第一附屬醫(yī)院體檢的人群,參與者均已簽署知情同意書,該研究由該院倫理委員會審核批準(2018-KY-90)。納入標準:具備完整的問卷調(diào)查結(jié)果和體檢結(jié)果;年齡在20~70歲;體檢顯示頸部血管彩超、心臟彩超、腹部彩超、泌尿系統(tǒng)彩超無明顯異常;診斷為T2DM,糖化血紅蛋白(glycosylated hemoglobin,HbA1c)大于6.5%。根據(jù)微生物α多樣性計算樣本量[10],以檢驗水準為0.05、把握度為80%,通過PASS軟件計算可知至少需要60例樣本。最終共納入72例,其中27例血糖控制理想(HbA1c<7%),45例血糖控制不理想(HbA1c≥7%)。
1.2 數(shù)據(jù)收集由接受過統(tǒng)一培訓(xùn)的人員進行健康風(fēng)險評估問卷調(diào)查及健康體檢,收集人口學(xué)特征、病史、生活習(xí)慣、身高、體重、腰圍、收縮壓、舒張壓等資料。禁食12 h后抽血檢測空腹血糖(fasting blood-glucose,FBG)、HbA1c、總膽固醇(total cholesterol,TC)、甘油三酯(triglyceride,TG)、高密度脂蛋白(high-density lipoprotein,HDL)、低密度脂蛋白(low density lipoprotein,LDL),使用羅氏全自動生化分析儀(Cobas-8000)進行檢測。采集糞便標本,單獨分裝后放入-80 ℃冰箱冷凍待測。
1.3 腸道菌群宏基因組測序使用糞便DNA提取試劑盒(Magen中國)提取糞便標本中微生物群落DNA。使用Qubit dsDNA BR試劑盒(美國Invitrogen公司)與Qubit熒光計對DNA進行定量,并檢測提取質(zhì)量。基因組DNA被超聲破碎形成隨機化片段并進行挑選,挑選的片段經(jīng)擴增、純化等步驟后得到單鏈環(huán)狀DNA,格式化后形成最終文庫,并通過質(zhì)量控制鑒定。合格文庫在BGISQ-500平臺(BGI-深圳,中國)上測序。對測序數(shù)據(jù)進行定性控制,去除混雜序列,包括人體基因組序列、食物基因組序列、低質(zhì)量序列等。通過Metaphlan2對測序文庫進行宏基因組分類和注釋,得到各層次物種的標準相對豐度值。
1.4 統(tǒng)計分析使用R4.0.2、STAMP2.1.3和PASS 15進行統(tǒng)計分析。采用兩獨立樣本t檢驗或χ2檢驗比較2組人口學(xué)、實驗室檢測指標和人體測量指標的差異。使用STAMP軟件分析組間菌群相對豐度的差異,2組間比較采用Mann-Whitney非參數(shù)檢驗,多變量校正采用Benjamini-Hochberg FDR;計算每組的菌群陽性率并去除陽性率低于10%的數(shù)據(jù)以去除可能的假陽性。根據(jù)微生物種類及其相對豐度,使用R語言“vegan”包分別計算每個樣本的shannon指數(shù)和obs指數(shù)、樣本間的bray距離和Spearman距離,用于分別判斷α、β多樣性,然后采用兩獨立樣本t檢驗比較2組α多樣性,采用“ade4”包進行主坐標分析比較β多樣性。預(yù)測模型采用Logistic回歸模型,將得到的差異菌群的相對豐度作為自變量,以血糖控制情況為因變量,采用逐步法進行Logistic回歸分析,構(gòu)建預(yù)測模型,利用“pROC”包繪制預(yù)測模型的ROC曲線,檢驗水準α=0.05。
2.1 2組患者一般資料的比較2組患者在性別、年齡、腰圍、BMI、收縮壓、舒張壓、TC、TG、HDL、LDL、規(guī)律飲食、飲食習(xí)慣、食用全谷物、飲用酸奶、吸煙、飲酒、運動情況、服用降糖藥等方面差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);與血糖控制理想組相比,血糖控制不理想組的FBG和HbA1c較高(P<0.05)。見表1。
表1 2組患者一般資料的比較
2.2 2組腸道菌群多樣性的差異由圖1可知,在α、β多樣性上,血糖控制理想組與血糖控制不理想組差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。
2.3 2組腸道菌群相對豐度的差異在種水平上,對比2組間菌群豐度的差異,發(fā)現(xiàn)有17個種的相對豐度存在差異,其中有4個種富集于血糖控制理想組,分別為Coprococcuscomes、Fusobacteriumulcerans、Bacteroidesintestinalis、Ruminococcusgnavus,13個種富集于血糖控制不理想組,分別為Mitsuokellamultacida、Acidaminococcusunclassified、Klebsiellapneumoniae、Bacteroidesfinegoldii、Bacteroidescoprophilus、Citrobacterunclassified、Parabacteroidesunclassified、Lactobacillusruminis、Megamonasrupellensis、Bacteroidesuniformis、Enterococcusfaecalis、Megamonashypermegale、Dialistersuccinatiphilus(圖2)。
2.4 T2DM患者血糖控制情況預(yù)測模型的建立與評價基于前文中的差異菌群,擬合Logistic回歸模型用于疾病的預(yù)測,采用逐步法,進入概率0.05,排除概率0.1,最后Ruminococcusgnavus、Bacteroidesintestinalis和Enterococcusfaecalis納入模型。根據(jù)回歸模型繪制ROC曲線,結(jié)果顯示ROC曲線的AUC為0.770(95%CI:0.665~0.875),靈敏度為0.655,特異度為0.852,約登指數(shù)為0.507,見圖3。
A、B:α多樣性評價;C、D:β多樣性評價;good:血糖控制理想組;bad:血糖控制不理想組;PCoA1(21.59%)表示第一主成分能夠解釋總體可變性的21.59%;PCoA2(11.12%)表示第二主成分能夠解釋總體可變性的11.12%
圖2 2組患者菌群相對豐度的差異
圖3 腸道菌群預(yù)測T2DM患者血糖控制情況的ROC曲線
眾所周知,T2DM治療主要依靠生活方式干預(yù)及藥物治療,但仍然有部分人群的血糖控制不理想。研究[5]表明腸道菌群可以通過影響人體的多糖分解代謝來調(diào)控血糖穩(wěn)態(tài),這為T2DM的防治提供了新思路。因此,本研究分析了T2DM人群中血糖控制情況與菌群分布情況,為調(diào)控血糖提供新的思路。
在本研究中,血糖控制理想和不理想組年齡、性別、BMI、腰圍、血壓、血脂、生活習(xí)慣差異無統(tǒng)計學(xué)意義。進一分析腸道菌群的α與β多樣性,發(fā)現(xiàn)2組間差異也無統(tǒng)計學(xué)意義。本研究將優(yōu)勢菌定義為至少在10%的樣本中出現(xiàn),以去除可能的假陽性,菌群豐度分析結(jié)果表明,4個菌種富集于血糖控制理想組,13個富集于血糖控制不理想組。其中Coprococcuscomes、Ruminococcusgnavus、Bacteroidesintestinalis等富集在血糖控制理想組。Graessler等[11]發(fā)現(xiàn)減肥手術(shù)后患者Coprococcuscomes的豐度增加,并且伴隨著血糖水平的降低與血脂的改善,這可能是由于Coprococcuscomes能夠利用果糖與葡萄糖產(chǎn)生丁酸鹽,從而增加了短鏈脂肪酸(short chain fatty acids,SCFA)的水平[12]。此外,有研究[13]表明富集在血糖控制理想組的Ruminococcusgnavus能夠利用巖藻糖基化聚糖增加SCFA的水平。SCFA具備調(diào)節(jié)免疫、改善系統(tǒng)性炎癥及調(diào)節(jié)血糖代謝等功能[14]。這可能是由于SCFA一方面能夠抑制腫瘤壞死因子、干擾胰島素信號通路的蛋白質(zhì),從而增加骨骼肌葡萄糖攝取[15],另一方面還可以通過促進脂肪細胞中的葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白4基因表達來增加肝細胞對葡萄糖攝取,最終達到調(diào)節(jié)血糖的作用[16];動物研究[17]還表明,SCFA可以提高糖尿病動物胰島素敏感性,改善血糖控制情況。在使用小麥肽和巖藻多糖組合治療成人慢性淺表性胃炎時發(fā)現(xiàn)Bacteroidesintestinalis明顯增加,胃痛、腹脹等癥狀顯著減少,同時糞便中鈣衛(wèi)蛋白水平降低,SCFA水平增加[18]。另一項菌群培養(yǎng)實驗[19]發(fā)現(xiàn),Bacteroidesintestinalis能夠降解膳食纖維中常見的阿拉伯木聚糖而產(chǎn)生阿魏酸。阿魏酸是一種酚類化合物,具有免疫調(diào)節(jié)、抗氧化和抗炎活性。綜上可知,這些菌作為益生菌,主要是SCFA的生產(chǎn)者,可以改善肥胖和T2DM的宿主代謝,降低炎癥反應(yīng),減輕免疫紊亂。
而在血糖控制不理想組中,Enterococcusfaecalis的豐度較血糖控制理想組高。研究[20]表明Enterococcusfaecalis可以將三甲基賴氨酸代謝為TMAVA(N,N,N-三甲基-5-氨基戊酸),從而減少SCFA的分泌,促進肝臟脂肪積累,導(dǎo)致肝臟脂肪變性和誘發(fā)胰島素抵抗,提示在血糖控制不理想的狀態(tài)下,Enterococcusfaecalis可能加重了胰島素抵抗。除了降低SCFA的水平,我們在血糖控制不理想組還發(fā)現(xiàn)條件致病菌Bacteroidescoprophilus,Citrobacterunclassified,Lactobacillusruminis和Klebsiellapneumoniae。它們很少引起嚴重感染,但卻是導(dǎo)致菌血癥等疾病的機會病原體[21]。研究[22]表明:它們能夠促進炎癥因子表達,包括白介素1β、腫瘤壞死因子α和白介素17等;此外,還能夠編碼特異性抗原,刺激B淋巴細胞分泌特異性抗體與之結(jié)合從而引起腸道異常炎癥變化等。值得一提的是,大約5%的健康人腸道內(nèi)存在Klebsiellapneumoniae。其導(dǎo)致炎癥反應(yīng)主要是通過產(chǎn)生豐富的莢膜多糖(CPS),從而引起侵襲性綜合征[23],而高血糖水平可能會刺激CPS生物合成和cps基因表達,進一步導(dǎo)致Klebsiellapneumoniae對中性粒細胞的吞噬作用耐受,最終促進侵襲性綜合征的發(fā)生發(fā)展,這可能進一步輔證了T2DM血糖控制不理想容易并發(fā)各種感染性疾病及傷口不容易愈合。綜上可知,富集在血糖控制不理想組的菌群一方面通過減少SCFA的分泌導(dǎo)致胰島素抵抗,促進慢性炎癥,導(dǎo)致脂肪沉積,加重脂毒性和胰島素抵抗;另一方面,通過條件致病菌導(dǎo)致炎癥反應(yīng),加速T2DM感染性疾病的發(fā)生發(fā)展。
最后,基于菌群差異分析的結(jié)果,采用Logistic逐步回歸法構(gòu)建血糖控制情況預(yù)測模型,其AUC值為0.770,這表明基于腸道菌群可以輔助預(yù)測人體血糖控制情況。
總之,本研究系統(tǒng)分析探究了T2DM人群中血糖控制理想者和血糖控制不理想者腸道菌群的差異,基于這些差異建立了腸道菌群血糖控制情況預(yù)測模型并取得了良好的預(yù)測效果,為基于腸道菌群精準膳食和精準醫(yī)療提供了新思路。
鄭州大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)版)2022年2期