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    基于LF-NMR分析蠶蛹在不同干燥過程中的水分遷移規(guī)律

    2022-03-28 12:08:48吳釗龍林芳唐小閑陳振林
    現(xiàn)代食品科技 2022年3期
    關(guān)鍵詞:總峰蠶蛹變溫

    吳釗龍,林芳,唐小閑,陳振林*

    (1.賀州學(xué)院食品科學(xué)與工程技術(shù)研究院,廣西賀州 542899)(2.廣西科學(xué)院,國家非糧生物質(zhì)能源工程技術(shù)研究中心,非糧生物質(zhì)酶解國家重點實驗室,廣西生物煉制重點實驗室,廣西南寧 530007)

    蠶蛹(Silkworm Pupa)是2004年衛(wèi)生部批準的作為普通食品管理的食品新資源中唯一的昆蟲類食品,富含大量的蛋白質(zhì)、脂肪酸、甲殼素、糖類和豐富的微量元素等[1,2]。蠶蛹不僅僅是一種具有較高營養(yǎng)價值的美食,也是一種具有較強功能活性的中藥[3,4]。目前,我國的蠶蛹大多進行粗加工后當(dāng)飼料和肥料處理,在其他應(yīng)用領(lǐng)域的開發(fā)利用較少,且手段和途徑有限,產(chǎn)品種類不多,限制了蠶桑產(chǎn)業(yè)收入增長[5]。將蠶蛹干燥加工成即食干制品,可以降低其水分含量和水分活度,延長貯藏期和提高其附加值,是未來蠶蛹深加工發(fā)展的主要方向[6]。因此,研究干燥過程中蠶蛹內(nèi)水分遷移規(guī)律對干燥工藝和產(chǎn)品品質(zhì)的提高具有重要意義。

    物料水分含量與狀態(tài)是影響物料干燥的關(guān)鍵因素,物料中水分含量的多少以及其結(jié)合狀態(tài)直接影響產(chǎn)品的外觀、品質(zhì)、組織結(jié)構(gòu)和易腐爛程度[7]。但是常規(guī)測定水分方法存在測定時間長、測定結(jié)果不精準等問題,并且只能測定總體的水分含量,無法實時測定物料中水分的變化,限制食品加工的進一步研究[7,8]。低場核磁共振技術(shù)(low-field nuclear magnetic resonance,LF-NMR)是一種無損快速的檢測技術(shù),包括低場核磁共振波譜及氫質(zhì)子核磁成像技術(shù)[9],可以通過橫向弛豫時間T2的變化實時跟蹤樣品干燥過程中水分狀態(tài)變化情況,能快速、直觀地得到水分變化規(guī)律,隨著核磁技術(shù)的不斷發(fā)展,LF-NMR技術(shù)在農(nóng)產(chǎn)品的干燥、貯藏、加工和質(zhì)量評價等領(lǐng)域得到較為廣泛的應(yīng)用[10,11]。迄今,未見有關(guān)LF-NMR應(yīng)用于蠶蛹在干燥過程中水分遷移變化規(guī)律的研究報道。

    本文以新鮮蠶蛹為對象,采用低場核磁共振技術(shù)(LF-NMR)研究熱泵干燥(heat pump drying,HPD)和變溫壓差膨化干燥(explosion puffing drying,EPD)兩種干燥方式下蠶蛹的水分分布和遷移規(guī)律,結(jié)合干燥特性曲線及干燥過程中內(nèi)部水分狀態(tài)等參數(shù),建立蠶蛹熱泵干燥(HPD)和變溫壓差膨化干燥(EPD)過程干基含水量和總峰面積A總之間的關(guān)系方程,以期為蠶蛹熱泵干燥和變溫壓差膨化干燥提供理論參考依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 原料

    新鮮蠶蛹,蛋白質(zhì)含量20.67%,初始干基含水量3.24 g/g,取自廣西平樂國弘繭絲綢有限公司。

    1.2 主要儀器設(shè)備

    WRH-100AB型環(huán)閉除濕熱泵干燥機,正旭新能源設(shè)備科技有限公司;KAAE型變溫壓差膨化干燥機,江蘇楷益智能科技有限公司;JJ1000型電子天平,常熟市雙杰測試儀器廠;NMI20型核磁共振成像分析儀,蘇州(上海)紐邁電子科技有限公司;PH-070A型干燥箱,上海一恒科學(xué)儀器有限公司。

    1.3 試驗方法

    1.3.1 原料處理

    挑選大小均勻,新鮮的蠶蛹,采用熱泵干燥和變溫壓差膨化干燥方式對其進行干燥。

    1.3.2 干燥方法

    熱泵干燥:在恒定風(fēng)速,溫度為 80 ℃,裝載量為15 kg/m2,相對濕度為25%條件下進行干燥,每隔30 min取樣,進行LF-NMR測定,直至蠶蛹干基含水量降到0.05 g/g以下停止干燥。

    變溫壓差膨化干燥:將裝載量為15 kg/m2的蠶蛹均勻平鋪于變溫壓差膨化機組膨化罐的鋼絲篩上,關(guān)閉罐門,打開蒸汽發(fā)生器,待罐內(nèi)溫度(膨化溫度)為80 ℃,膨化壓力達到0.3 MPa時保持10 min(停滯時間),打開泄壓閥,同時關(guān)閉蒸汽發(fā)生器,打開冷凝水,以抽空溫度達到80 ℃(干燥溫度),真空罐真空度為0.098 MPa,每保持30 min(干燥時間)取一次樣品,進行LF-NMR測定,直至蠶蛹干基含水量降到0.05 g/g以下停止干燥。

    1.3.3 干基含水量

    蠶蛹干基含水量采用GB 5009.3-2016《食品中水分的測定》中規(guī)定的直接干燥法測定,經(jīng)測定,蠶蛹初始干基含水量為3.24 g/g。干燥過程中,蠶蛹干基含水量根據(jù)式(1)計算:

    式中:

    M——干燥到t時刻的蠶蛹干基含水量,g/g;

    mt——干燥到t時刻的蠶蛹質(zhì)量,g;

    m——絕干蠶蛹的質(zhì)量,g[12]。

    1.3.4 干燥速率

    蠶蛹熱泵干燥和變溫壓差膨化干燥過程的干燥速率按式(2)計算。

    式中:

    DR——干燥速率,g/g·min;

    Δt——相鄰2次測定的時間間隔,min;

    Mt+Δt——干燥至t+Δt時刻的蠶蛹干基含水量,g/g;

    Mt——干燥至t時刻的蠶蛹干基含水量,g/g[13]。

    1.3.5 T2的采集及反演

    參照盤喻顏等[7]的方法并作適當(dāng)修改,每隔 30 min取出樣品稱量后,置于核磁管中并放入磁體線圈中心,先用FID序列獲得樣品的中心頻率,再用CPMG脈沖序列測樣品中的橫向弛豫時間T2,每份樣品重復(fù)采集三次信號,并將結(jié)果取平均值。序列參數(shù)設(shè)置為:主頻SF1=18 MHz、偏移頻率O1=418100.47 kHz、90 °脈沖時間 P90=10 μs、180 °脈沖時間 P180=20 μs、采樣點數(shù)TD=240008、累加次數(shù)4次、回波時間TE=600 ms、回波次數(shù)=4000。

    1.3.6 NMR成像實驗及參數(shù)設(shè)定

    參照盤喻顏等[7]的方法并作適當(dāng)修改。將樣品放入磁體線圈中心進行信號采集,用核磁共振成像軟件中的SE序列來獲得可視化信息表,每隔20 min進行一次NMR成像,成像參數(shù)設(shè)置為:主頻SF1=18 MHz、偏移頻率O1=159.609 131 kHz、采樣點數(shù)TD=256、采樣頻率SW=20 kHz、采樣時間DW=50 μs、信號采樣總時間ACQ=12.8 ms、接收機死時間DT2=1.4 ms、模擬增益RG1=20 dB、數(shù)字增益DRG1=3 dB、選層方向 GsliceY=1、相位編碼方向 GphaseZ=1、頻率編碼方向 GreadX=1、90 °脈沖寬度 P1=1200 μs、180 °脈沖寬度 P2=1200 μs、90 °脈沖幅度 RFA1=3%、180 °脈沖幅度RFA2=6%、射頻脈沖形狀RFSH1為5sinc256、重復(fù)采樣次數(shù)NS=4、累加次數(shù)RP1count=4、相位編碼步數(shù)RP2count=128。

    為保證數(shù)據(jù)的高精準性,對所得的峰面積和橫向弛豫時間進行標準化處理,得到每單位質(zhì)量樣品對應(yīng)的峰面積和橫向弛豫時間,峰面積A2和橫向弛豫時間T2標準化處理可分別表示為式(3)和式(4):

    式中:

    At和Tt——分別為t時刻反演后的峰面積和橫向弛豫時間,ms;

    A2和T2——分別為t時刻標準化處理后的峰面積和橫向弛豫時間,ms;

    M2——對應(yīng)蠶蛹的質(zhì)量,g[7]。

    1.4 數(shù)據(jù)分析

    用SPSS 19.0軟件對試驗數(shù)據(jù)進行方差分析處理,采用Duncan法進行多重比較,顯著性水平為p<0.05,Origin 8.0繪圖。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 干燥方式對蠶蛹水分遷移規(guī)律的影響

    2.1.1 干燥方式對干燥特性的影響

    在“1.3.2干燥方法”規(guī)定的條件下,分別對蠶蛹進行熱泵干燥和變溫壓差膨化干燥,干燥過程的干燥曲線和干燥速率曲線見圖1a和1b。

    由圖1a可知,從蠶蛹的干基含水量變化趨勢看,隨著干燥時間的延長,EPD和 HPD兩種干燥方式的蠶蛹干基含水量均持續(xù)降低,其中EPD蠶蛹干基含水量下降更明顯,水分遷移更快。在EPD和HPD兩種干燥方式下,蠶蛹干基含水量由3.24 g/g降至0.05 g/g以下所需時間分別為160和280 min,時間相差1.75倍。

    由圖1b可知,EPD和HPD兩種干燥方式均有增速、降速兩個階段,在整個干燥過程中以降速干燥為主,干基含水量較高時,干燥速率大,隨著干基含水量的降低,干燥速率不斷減小。在降速階段,EPD干燥的干燥速率明顯高于 HPD干燥的干燥速率,這與吳釗龍等[4]研究不同干燥方式干燥蠶蛹的結(jié)果一致。主要是因為 EPD干燥是利用相變和氣體的熱壓效應(yīng)原理,使蠶蛹內(nèi)部的水分迅速升溫汽化,干燥速度加快[14]。

    2.1.2 新鮮蠶蛹的 T2反演譜隨弛豫時間的變化

    如圖2所示,反演后的新鮮蠶蛹的NMR T2反演圖譜有3個波峰,表明新鮮蠶蛹內(nèi)部存在3種不同水分狀態(tài),3種不同水分狀態(tài)在T2反演圖譜中對應(yīng)的橫向弛豫時間T2范圍分別為結(jié)合水T21(0~2 ms)、不易流動水 T22(2~100 ms)、自由水 T23(100~1000 ms)[15],對應(yīng)3個峰的峰面積分別為:49.531、661.651、1730.075,峰面積占比分別為2.03%、27.10%、70.87%。由此可見,新鮮蠶蛹中70%以上的水都是自由流動的水,只有不到 3%的水與蠶蛹中的大分子進行緊密的結(jié)合。

    2.1.3 干燥方式對低場核磁共振圖譜的影響

    蠶蛹熱泵干燥和變溫壓差膨化干燥過程的核磁共振波譜分別圖3a和3b。

    T2與信號強度的關(guān)系曲線可以間接反映出蠶蛹中水分的含量、狀態(tài)和移動方式,T2越大,水分自由度越高,越容易排出;T2越小,水分與其他非水組分的結(jié)合越緊,水分自由度越小,越不容易排出;如圖3所示,隨著干燥時間延長,EPD和HPD兩種干燥方式的干燥過程中水分變化呈現(xiàn)出相似的趨勢,均發(fā)生了不同程度的遷移。一是峰位置逐漸左移,二是峰面積逐漸減小,即自由水含量不斷減少,同時水分與非水組分的結(jié)合程度越來越緊密,在干燥的前期過程中主要散失的是自由水,這與蔡路昀等[16]研究不同干燥方式對沙丁魚水分遷移規(guī)律影響的結(jié)果一致。

    2.1.4 干燥方式對蠶蛹核磁信號幅度變化的影響

    HPD與EPD兩種干燥方式對蠶蛹干燥過程中橫向弛豫時間 T21、T22、T23和峰面積 A21、A22、A23、A總的影響結(jié)果見表1。

    橫向弛豫時間 T2反映了樣品內(nèi)部氫質(zhì)子的存在狀態(tài)和所處的化學(xué)環(huán)境,與氫質(zhì)子所受的束縛力有關(guān),氫質(zhì)子受束縛力越小,水分越易脫去,T2弛豫時間越長,在T2圖譜上峰位置越靠右;反之氫質(zhì)子受束縛力越大,水分越難脫去,T2弛豫時間越短,在T2圖譜上峰位置越靠左[17]。

    由表1可知,蠶蛹在EPD和HPD兩種干燥方式中,結(jié)合水橫向弛豫時間 T21、不易流動水橫向弛豫時間T22、自由水橫向弛豫時間T23均隨著干燥時間的延長呈下降趨勢。不同干燥時間T2反演譜中各個峰面積的大小可以表征含水量的多少(A21、A22、A23分別為峰T21、T22、T23的峰面積,A總為3個峰的總峰面積),新鮮蠶蛹中A23信號量大,占據(jù)了總水分信號量A總的主體。隨著干燥時間的延長,EPD和HPD兩種干燥過程中總峰面積A總均逐漸減小,結(jié)合水峰面積A21和不易流動水A22均呈先上升后下降的趨勢,自由水峰面積A23均呈下降趨勢,且均在蠶蛹干基含水量為0.12 g/g左右時,自由水的信號完全消失,同時不易流動水的波峰明顯左移。可見干燥破壞了蠶蛹內(nèi)部細胞結(jié)構(gòu),對蠶蛹水分狀態(tài)的變化起明顯作用,在相同干燥時間下,EPD干燥的總峰面積低于HPD干燥,說明此干燥時間下EPD干燥的水分要低于熱泵干燥,這與干燥曲線的變化趨勢相一致,表明EPD干燥能夠有效增加樣品內(nèi)外水分梯度,加快內(nèi)部水分由內(nèi)往外遷移[15]。EPD和HPD兩種干燥最終階段,剩余總水分信號均以少量結(jié)合水和不易流動水為主,蠶蛹干制品達到安全水分,可實現(xiàn)安全儲藏。

    表1 蠶蛹的水分分布在不同干燥方式下隨干燥時間的變化Table 1 The moisture distribution of silkworm pupa changes with the drying time under different drying methods

    2.2 蠶蛹干基含水量和 T2反演譜總峰面積相關(guān)性分析

    總峰面積表示樣品中的相對總含水量,通過定標曲線可以定量得到樣品中總含水量和不同狀態(tài)水分的含量[18]。為了研究蠶蛹EPD和HPD過程中T2反演譜總峰面積隨干基含水量變化的規(guī)律,建立了蠶蛹EPD和HPD過程A2與干燥過程中的實際干基含水量的關(guān)系方程見圖4。

    由圖 4可知,EPD干燥的線性擬合方程為 A總=702.01x+173.92(R2=0.9997),HPD干燥的線性擬合方程為 A總=695.94x+229.24(R2=0.9968),兩者均具有較高的擬合度,其中EPD干燥擬合度高于HPD干燥擬合度,呈顯著的線性關(guān)系(p<0.05),表明 EPD和HPD兩種不同干燥方式,蠶蛹干基含水量對T2反演譜總峰面積有顯著影響。所得模型可通過分析 T2反演圖譜結(jié)合線性方程間接計算蠶蛹干燥過程中任一時刻的干基含水量。

    2.3 干燥方式對蠶蛹干燥過程中核磁共振成像的影響

    蠶蛹熱泵干燥和變溫壓差膨化干燥過程的蠶蛹氫質(zhì)子成像分別圖5a和5b。

    核磁共振成像(MRI)是根據(jù)不同位置的氫質(zhì)子共振頻率不同,獲得不同的磁共振信號強度,不僅能夠高效率、高精準、無損傷測定物料水分分布情況以及加工過程中的結(jié)構(gòu)變化,而且還能夠通過圖像的清晰度和亮度直觀地提供內(nèi)部結(jié)構(gòu)可視化信息[19]。圖像的亮度與氫質(zhì)子的活躍程度及密度有關(guān),圖像越亮,說明氫質(zhì)子的活躍程度越強,密度越高[20]。由圖5可知,隨著干燥時間的延長,蠶蛹在EPD和HPD干燥方式下,氫質(zhì)子密度圖像亮度均呈下降的趨勢,表明其內(nèi)部干基含水量逐漸減少;這與謝小雷等[21]報道的用MRI技術(shù)研究牛肉干燥過程中的H質(zhì)子密度圖像變化趨勢一致。

    蠶蛹在EPD過程中干燥不均現(xiàn)象明顯,相對而言HPD的MRI圖信號分布均勻性更好一些。主要是因為EPD脆度大于HPD[4],EPD能使蠶蛹內(nèi)部有膨化作用,使孔道擴充,質(zhì)地更加酥脆,以至于出現(xiàn)干燥不均現(xiàn)象。

    3 結(jié)論

    變溫壓差膨化干燥(EPD)在干燥過程中水分下降較快,其干燥速率也快于熱泵干燥(HPD)。新鮮蠶蛹內(nèi)部存在3種不同水分狀態(tài),3種不同水分狀態(tài)在T2反演圖譜中對應(yīng)的橫向弛豫時間T2范圍分別為結(jié)合水 T21(0~2 ms)、不易流動水 T22(2~100 ms)、自由水T23(100~1000 ms),對應(yīng)3個峰的峰面積分別為:49.531、661.651、1730.075,峰面積占比分別為2.03%、27.10%、70.87%。蠶蛹隨著干燥時間的延長,EPD 和HPD2種干燥方式下T2弛豫時間均呈現(xiàn)出相同的變化趨勢,一方面是峰位置向左遷移,另一方面是總峰面積A總不斷減小,水分的主要狀態(tài)逐步變成不易流動水和結(jié)合水。經(jīng)擬合,蠶蛹EPD和HPD過程干基含水量x和總峰面積A總之間的關(guān)系方程(定標曲線方程)分別為 A總=702.01x+173.92及 A總=695.94x+229.24,兩者均呈顯著的線性關(guān)系(p<0.05),決定系數(shù)(R2)分別為0.9997和09968,但熱泵干燥(HPD)過程的氫質(zhì)子密度分布相對均勻。綜合考慮,EPD能更好描述蠶蛹干燥過程中水分遷移規(guī)律。

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