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    高溫悶棚對設(shè)施蔬菜根結(jié)線蟲的防治效果及土壤微生物群落結(jié)構(gòu)的影響

    2022-03-22 07:56:06羅文芳于鎮(zhèn)華許建軍孫曉軍
    新疆農(nóng)業(yè)科學(xué) 2022年1期
    關(guān)鍵詞:悶棚采收期生菜

    何 偉,羅文芳,于鎮(zhèn)華,許建軍,孫曉軍

    (1.新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護研究所/農(nóng)業(yè)部西北荒漠作物有害生物綜合治理重點實驗室,烏魯木齊 830091;2. 中國科學(xué)院東北地理與農(nóng)業(yè)生態(tài)研究所/黑土區(qū)農(nóng)業(yè)生態(tài)重點實驗室,哈爾濱 150081)

    0 引 言

    【研究意義】根結(jié)線蟲是一種高度?;偷闹参锊≡€蟲,近年來,隨著設(shè)施蔬菜種植面積的增加,根結(jié)線蟲病已成為嚴(yán)重威脅新疆設(shè)施蔬菜生產(chǎn)的一種重要土傳病害[1]。研究高溫悶棚對蔬菜根結(jié)線蟲和根際土壤微生物群落的影響。對研究適宜本地的綠色防控技術(shù)具有重要意義?!厩叭搜芯窟M展】目前,蔬菜生產(chǎn)上防治根結(jié)線蟲方法有抗病品種[2]、嫁接栽培技術(shù)[3]、農(nóng)業(yè)防治[4]、生物防治[5-6]和化學(xué)防治[7-8],其中以化學(xué)防治為主。但化學(xué)藥劑造成蔬菜品質(zhì)下降、環(huán)境污染及人體健康的問題日益突出。高溫悶棚作為一種有效的防治病害的措施被廣泛應(yīng)用,如高溫悶棚防治黃瓜霜霉病[9]、白粉病[10]、西瓜枯萎病[11]、茄子黃萎病[12]、根結(jié)線蟲病[13]及消除土壤連作障礙[14]等已有相關(guān)報道。高溫悶棚不僅可以有效殺滅溫室中的病原微生物,其對土壤微生物群落也會產(chǎn)生影響。李佳川[15]報道,灌水高溫悶棚處理后,土壤微生物區(qū)系表現(xiàn)為細菌及放線菌含量升高,真菌含量降低。宋健等[16]報道日曬高溫覆膜對韭菜根際土壤微生物多樣性無顯著影響。何志剛等[17]研究表明,高溫悶棚是否淹水是影響土壤微生物群落劃分的主要因素。【本研究切入點】長期以來,新疆設(shè)施蔬菜種植戶在夏季高溫時僅采用扣棚方式悶棚,但此方法地溫達不到殺死根結(jié)線蟲的溫度。【擬解決的關(guān)鍵問題】研究新疆高溫干旱區(qū)溫室灌水+覆膜、灌水+覆膜+藥劑及灌水未覆膜高溫悶棚處理對土壤根結(jié)線蟲及土壤微生物群落結(jié)構(gòu)影響,為新疆區(qū)域高溫悶棚防治根結(jié)線蟲提供科學(xué)依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材 料

    10%噻唑膦顆粒劑(日本石原產(chǎn)業(yè)株式會社)、10.2%阿維·噻唑啉顆粒劑(江西眾合化工有限公司)、5%阿維菌素乳油(江西眾合化工有限公司)。自計式土壤溫度記錄儀,型號:L93-3(杭州路格科技有限公司)。

    試驗于2019年7~8月在吐魯番市高昌區(qū)亞爾鄉(xiāng)建設(shè)七隊溫室進行。試驗溫室結(jié)構(gòu)為干打壘溫室,長120 m,寬8 m。在上茬番茄拉秧后,及時清除病殘體,鏟除田間雜草,帶出棚外深埋,保持棚架完好,棚膜完整,無破損。均勻撒施雞糞在土壤表面,用量4 000 kg/667m2,深翻25~30 cm。

    1.2 方 法

    1.2.1 試驗設(shè)計

    試驗設(shè)置在同一個溫室中,6個處理,每處理140 m2,3次重復(fù),小區(qū)長20 m,寬7 m。10%噻唑膦顆粒劑和10.2%阿維·噻唑膦顆粒劑各0.42 kg分別與細土混勻后均勻撒于土壤表面,5%阿維菌素乳油稀釋3 000倍,均勻噴灑于土壤表面,采用旋耕機進行土壤深耕。每處理四周做壩,灌水,水面高出地面3~5 cm,蓋好厚度為0.08 mm舊棚膜,四周用土壓嚴(yán)實,扣棚進行悶棚處理24 d,悶棚結(jié)束后進行耕翻,晾曬15 d后直播生菜。

    在高溫悶棚后增施生物菌肥。在直播生菜第1次灌水時,將微生物菌劑寧盾一號A型隨水沖施,用量為10 L/667m2,第2次灌水時,5L/667m2。表1

    表1 處理方法Table 1 Test treatment method

    1.2.2 測定指標(biāo)

    1.2.2.1 土壤溫度監(jiān)測

    采用自計式土壤溫度計(溫度記錄間隔5 min)記錄土壤溫度變化情況,覆膜后將土壤溫度計插入土壤,探頭插入深度分別為10、20、30 cm土壤中,悶棚結(jié)束后,取回溫度記錄儀,將數(shù)據(jù)轉(zhuǎn)入計算機,使用Excel分析數(shù)據(jù)。

    1.2.2.2 土壤樣品采集

    悶棚前、后和生菜收獲期,分別采用取土器取深度0~20 cm土壤,每處理隨機取10個點,混勻后部分土壤用于檢測根結(jié)線蟲數(shù)量,部分土壤-20℃保存用于微生物檢測。悶棚前處理1~6土壤樣本編號為A1~A6,悶棚后處理1~6土壤樣本編號為B1~B6,生菜采收期處理1~6土壤樣本編號為C1~C6。

    1.2.2.3 土壤理化性質(zhì)

    將采集的土壤樣品進行處理,經(jīng)自然風(fēng)干、研磨過篩(1 mm)后,測定土壤的理化性質(zhì)。速效氮采用堿解擴散法,速效磷采用0.5 mol/L NaHCO3浸提-鉬銻抗比色法,速效鉀采用1 mol/L NH4OAc浸提-火焰光度法,pH值采用pH計按土水比1∶2.5測定。

    1.2.2.4 土壤根結(jié)線蟲數(shù)量

    采用淺盤分離法與漏斗分離法分離線蟲,具體步驟如下:取一根橡皮管,一端用夾子夾住,另一端連接漏斗,放在漏斗架上,在100目的標(biāo)準(zhǔn)沖篩框上墊1張面巾紙,裝入稱好的100 g土樣,鋪平,往漏斗內(nèi)加水,水漫過土壤約0.5 cm左右,靜置24 h后,松開止水夾,將漏斗中水緩慢放入小燒杯內(nèi),最后在體視顯微鏡下統(tǒng)計根結(jié)線蟲2齡幼蟲的數(shù)量。

    1.2.2.5 土壤微生物 DNA 提取及高通量測序

    根據(jù)FastDNA?Spin Kit for Soil 試劑盒的操作步驟提取土壤微生物總 DNA,PCR 所用的細菌引物為V3-V4 通用引物,338F:5′-ACTCCTACGGGAGGCAGCA-3′和806R:5′-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3′[18];真菌引物為通用引物,ITS1F:5′-CTTGGTCATTTAGAGGAAGTAA-3′和ITS2:5′-GCTGCGTTCTTCATCGATGC-3′[19],微生物擴增子高通量測序由北京百邁客生物科技有限公司完成。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同處理土壤溫度監(jiān)測

    研究表明,灌水+覆膜處理10、20和30 cm深土壤最高溫度分別為60.1、53.5和46.6℃,持續(xù)時間為50 min;灌水未覆膜處理分別為55、46.8和43.2℃,持續(xù)時間為45 min;空白對照分別為48、48.3和41.3℃,持續(xù)時間為40 min。灌水+覆膜可以增加土壤溫度,且高溫持續(xù)時間長。圖1

    圖1 不同土壤深度的溫度變化Fig. 1 Temperature changes in different soil depths

    2.2 不同時期各處理土壤根結(jié)線蟲檢測

    研究表明,悶棚后灌水+覆膜+藥劑和灌水+覆膜處理土壤根結(jié)線蟲蟲口減退率100%,灌水未覆膜蟲口減退率為83.1%。生菜采收期,各處理均無根結(jié)線蟲危害,灌水+覆膜+藥劑和灌水+覆膜處理土壤根結(jié)線蟲蟲口減退率在99%以上,灌水未覆膜處理蟲口減退率69.4%。表2

    表2 不同處理對土壤根結(jié)線蟲防治效果比較Table 2 Comparison of control effects of different treatments on soil root-knot nematodes

    2.3 不同時期各處理土壤養(yǎng)分差異

    研究表明,高溫悶棚后較悶棚前,處理1~4土壤速效氮含量無顯著差異性,處理5和6顯著下降;處理1~5土壤速效磷含量顯著增加,處理6無顯著差異;處理1~6土壤速效鉀含量顯著降低;處理1和5土壤pH值顯著下降,其他處理無顯著差異。生菜采收期較高溫悶棚后,處理1~4土壤速效氮含量無顯著差異,處理5和6顯著增加;處理1~6土壤速效磷含量顯著下降;處理1~6土壤速效鉀含量顯著增加;處理1土壤pH值顯著增加,其他處理無顯著差異。圖2

    注:數(shù)值為平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤,不同小寫字母表示不同處理之間差異顯著(P<0.05)。A為悶棚前;B為悶棚后;C為生菜采收期

    2.4 樣品間Beta 多樣性

    研究表明,細菌主成分 1(PC1)、主成分 2 (PC2)的樣品差異性貢獻率分別為 37.07%、14.99%,合計達到52.06%。真菌主成分 1(PC1)、主成分 2 (PC2)的樣品差異性貢獻率分別為 17.72%、15.03%,合計達到22.75%。高溫悶棚前、后和生菜采收期3個時間點土壤樣本距離均較遠,3個時間點土壤中真菌、細菌組成成分均存在顯著差異;悶棚前、后和生菜采收期中每個時期6個處理土壤樣本距離較近,每個時期土壤中真菌、細菌組成成分相近。圖3

    2.5 對土壤微生物多樣性的影響

    研究表明,悶棚前、后和生菜采收期6個不同處理分別得到1 280 147、1 280 147和1 118 042條有效序列。Coverage測序深度指數(shù)均大于99.7%,表明測序深度已基本上覆蓋到樣品中所有的物種。高溫悶棚后,灌水+覆膜+阿維菌素土壤中的真菌物種豐度和多樣性均減少;空白對照土壤中真菌物種豐度下降,但真菌物種多樣性增加;其他4個處理土壤真菌物種豐度和多樣性均增加。生菜采收期真菌物種豐度增加,但真菌物種多樣性下降。表3

    悶棚前、后和下茬生菜采收期6個不同處理分別得到1 127 237、818 676和989 102條有效序列。Coverage測序深度指數(shù)均大于97.5%,表明測序深度已經(jīng)覆蓋到測試樣品中大部分物種。結(jié)果表明,高溫悶棚后,6個處理土壤樣本中細菌物種豐度和多樣性均較高溫悶棚前下降,生菜采收期,細菌物種豐度和多樣性均較高溫悶棚后上升。表4

    注:A是細菌;B是真菌。A01~A06是悶棚前處理1~6;B01~B06是悶棚后處理1~6;C01~C06是生菜采收期處理1~6。下同

    2.6 門水平上真菌群落結(jié)構(gòu)

    研究表明,不同時期各處理土壤樣本中真菌優(yōu)勢菌門有顯著差別。高溫悶棚后較悶棚前,6個處理土壤中被孢霉門豐度顯著下降,處理1和6擔(dān)子菌門豐度顯著下降,其他處理擔(dān)子菌門豐度顯著增加。生菜采收期,處理6被孢霉門豐度較高溫悶棚后無顯著差異,其他各處理的被孢霉門豐度顯著降低。圖4

    圖4 門水平上真菌樣本的群落組成Fig. 4 The community abundance analysis of fungal genes at the phylum level

    2.7 門水平上細菌群落結(jié)構(gòu)

    研究表明,高溫悶棚后,處理1和6土壤樣本中變形菌門Proteobacteria豐度增加,異常球菌-棲熱菌門Deinococcus-Thermus豐度無顯著變化,其他處理變形菌門豐度下降,異常球菌-棲熱菌門豐度增加。6個處理土壤樣本中芽單胞菌門Gemmatimonadetes、酸桿菌門Acidobacteria、硝化螺旋菌門Nitrospirae和浮霉菌門Planctomycetes豐度顯著降低,厚壁菌門Firmicutes豐度顯著增加;處理1土壤樣品中綠彎菌門Chloroflexi豐度下降,其他處理綠彎菌門豐度增加。

    生菜采收期較高溫悶棚后,處理1和6土壤樣品中變形菌門豐度下降,其他處理豐度增加;處理1綠彎菌門豐度增加,其他處理綠彎菌門豐度下降;6個處理擬桿菌門豐度顯著增加;處理6厚壁菌門豐度無顯著變化,其他處理厚壁菌門豐度顯著降低。圖5

    表3 真菌的多樣性指數(shù)Table 3 The analysis of alpha diversity estimators of fungi

    表4 細菌的多樣性指數(shù)Table 4 The analysis of alpha diversity estimators of bacteria

    圖5 門水平上細菌樣本的群落組成Fig.5 The community abundance analysis of bacteria genes at the phylum level

    2.8 屬水平上真菌群落結(jié)構(gòu)

    研究表明,高溫悶棚后較悶棚前,處理1和6土壤樣品中鏈格孢屬Alternaria和枝孢屬Cladosporium豐度變化小,被孢霉屬Mortierella豐度增加,其他處理鏈格孢屬和枝孢屬豐度增加,被孢霉屬豐度無顯著變化。生菜采收期較高溫悶棚后, 6個處理被孢霉屬和曲霉屬Aspergillus豐度均下降;處理2、3、4鏈格孢屬豐度增加,處理5、6翅孢殼屬Emericellopsis豐度增加。圖6

    圖6 屬水平上真菌樣本的群落組成Fig.6 The community abundance analysis of fungal genes at the genus level

    2.9 屬水平上細菌群落結(jié)構(gòu)

    研究表明,高溫悶棚后較悶棚前,6個處理uncultured_bacterium_f._Gemmatimonadaceae、芽單胞菌屬Gemmatimonas、RB41和uncultured_bacterium_f_Rhodospirillaceae豐度下降,芽孢桿菌屬Bacillus、uncultured_bacterium_f_Longimicrobiaceae和亞棲熱菌屬Meiothermus豐度增加;處理1和6鞘氨醇單胞菌屬Sphingomonas豐度增加,uncultured_bacterium_c_S0134_terrestrial_group豐度下降,其他4個處理鞘氨醇單胞菌屬豐度下降,uncultured_bacterium_c_S0134_terrestrial_group豐度增加。生菜采收期較高溫悶棚后,處理5uncultured_bacterium_f_Gemmatimonadaceae豐度下降,其他處理豐度增加;處理1和6鞘氨醇單胞菌屬Sphingomonas和亞棲熱菌屬Meiothermus豐度下降,其他處理豐度增加;處理6芽孢桿菌屬Bacillus豐度增加,其他處理豐度下降;處理1芽單胞菌屬Gemmatimonas豐度略有下降,其他處理豐度增加;6個處理uncultured_bacterium_f_Longimicrobiaceae豐度下降,黃桿菌屬Flavobacterium豐度增加。圖7

    圖7 屬水平上細菌樣本的群落組成Fig.7 The community abundance analysis of bacteria genes at the genus level

    3 討 論

    3.1 不同處理高溫悶棚對土壤根結(jié)線蟲防治效果

    研究表明,新疆吐魯番溫室采用僅扣棚的傳統(tǒng)悶棚方法,土壤溫度達不到對根結(jié)線蟲致死溫度,灌水+覆膜后再扣棚的高溫悶棚方法,10 cm深土壤溫度可達60℃以上且可持續(xù)50 min。15~30℃是根結(jié)線蟲的適宜生長繁殖溫度,40℃以上高溫和5℃以下低溫即可抑制2齡幼蟲存活和卵囊中卵孵化,雌蟲不能發(fā)育完全[20]。根結(jié)線蟲主要分布在0~30 cm的表層土壤內(nèi),該蟲在55℃的溫度條件下,經(jīng)8~10 min即可致死[21]。研究與前人研究結(jié)果一致,為改變新疆吐魯番溫室高溫悶棚方式提供了科學(xué)依據(jù)。

    3.2 高溫悶棚對土壤微生物群落結(jié)構(gòu)的影響

    溫度是影響土壤微生物群落結(jié)構(gòu)主要因子之一。溫度升高增加了土壤中真菌豐度,促進了土壤對菌類中一些酶的利用效率,影響了土壤微生物群落結(jié)構(gòu)已報道[22]。有報道平均1.17℃的土壤升溫使土壤微生物PLFAs總量增加34.58%,升溫使細菌相對含量增加8.80%,而使真菌相對含量降低17.48%[23]?;馂?zāi)引起的高溫致使土壤細菌下降了16%,真菌和放線菌數(shù)量分別下降了3%和2%[24]。研究中前茬作物是辣椒,高溫悶棚后土壤真菌物種豐度增加,細菌物種豐度和多樣性均較高溫悶棚前下降。不同區(qū)域土壤理化性質(zhì)和種植作物的不同及土壤溫度的高低、持續(xù)時間,可能是造成研究者研究結(jié)果差異的原因。

    目前設(shè)施蔬菜根結(jié)線蟲的防治仍然以化學(xué)防治為主,但其毒性高、易污染環(huán)境。秸稈生物反應(yīng)堆技術(shù)[25]、石灰氮消毒[26]、生物菌肥[27]和高溫悶棚[13]等綠色防控技術(shù)多有報道。但由于各單項技術(shù)在不同區(qū)域?qū)ΩY(jié)線蟲防治效果不同,因此,選擇適宜區(qū)域的防治技術(shù)尤為重要。研究中高溫悶棚后灌水+覆膜和灌水+覆膜+藥劑處理的根結(jié)線蟲蟲口減退率均為100%。高溫悶棚后需要及時補充有益微生物,篩選適宜新疆本地堿性土壤環(huán)境的微生物需要進一步研究。

    4 結(jié) 論

    新疆吐魯番區(qū)域溫室采用灌水+覆膜后再扣棚的悶棚方法,10 cm深土壤溫度可達60℃以上且可持續(xù)50 min,根結(jié)線蟲減退率為100%;悶棚后土壤真菌物種豐度增加,細菌物種豐度和多樣性均下降,土壤中鏈格孢屬、枝孢屬真菌和uncultured_bacterium_c_S0134_terrestrial_group細菌含量增加,鞘氨醇單胞菌屬含量降低。新疆吐魯番及南疆溫室蔬菜種植區(qū)域適宜推廣灌水+覆膜的高溫悶棚方式。

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