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    羊弓形蟲病間接ELISA診斷方法的建立

    2022-03-14 07:44:36李迎迎李亞瓊李明俊周艷琴趙俊龍
    中國動物傳染病學(xué)報 2022年1期
    關(guān)鍵詞:弓形蟲抗原陰性

    李迎迎,侯 倫,王 敏,李亞瓊,李明俊,周艷琴,2,趙俊龍,2,申 邦,2

    (1.華中農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院 農(nóng)業(yè)微生物學(xué)國家重點實驗室,武漢 430070;2.湖北省預(yù)防獸醫(yī)學(xué)重點實驗室,武漢 430070)

    弓形蟲是一種在世界范圍內(nèi)廣泛分布的人獸共患寄生原蟲,可以引起人和多種動物患病,據(jù)估計,全球約有1/3的人感染弓形蟲[1]。我國農(nóng)業(yè)動物中,豬的感染率很高,一般在20%以上,有的養(yǎng)殖場甚至高達100%[2]。羊是除小鼠以外對弓形蟲最敏感的動物,羊感染弓形蟲后容易引起流產(chǎn)、死胎、弱胎等,在有些國家,高達20%的羊流產(chǎn)由弓形蟲感染引起[3-4],給畜牧業(yè)帶來了很大的損失。在中國,羊群平均感染率在10%左右,而在北部和西北部達到了20%或更高[5]。目前國際上雖然有一個針對羊弓形蟲病的商業(yè)疫苗(Toxovax),但安全風(fēng)險較大[6],沒有被大范圍使用[7]。

    羊弓形蟲感染沒有特征性的臨床癥狀,因此鑒別診斷比較困難。目前實驗室嘗試過的弓形蟲病檢測方法有很多,包括病原學(xué)檢測、分子生物學(xué)檢測和血清學(xué)方法[8],但針對羊弓形蟲病檢測的方法或標(biāo)準(zhǔn)產(chǎn)品少之又少。在眾多方法中,酶聯(lián)免疫吸附試驗(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)具有敏感特異,可短時間內(nèi)處理大量臨床樣品的優(yōu)點,適用于現(xiàn)場調(diào)查和推廣,因此受到廣泛的關(guān)注。目前,ELISA方法診斷弓形蟲病應(yīng)用的抗原較多,在人的弓形蟲病檢測上主要有速殖子全蟲抗原(Total Toxoplasma gondii tachyzoites antigens,TXA)、表面抗原1(Surface antigen 1,SAG1)[9]、致密顆粒蛋白8(Dense granule protein 8,GRA8)等,但是檢測不同動物的感染可能需要不同的抗原。在本實驗中,分別用全蟲抗原(TXA)、微線體蛋白3(Microneme protein 3,MIC3)、致密顆粒蛋白1(Dense granule protein 1,GRA1)、緩殖子抗原1(Bradyzoite antigen 1,BAG1)、多表位抗原(Multi-epitope antigen,MAG)進行正交試驗,通過對比P/N(陽性血清OD630值/陰性血清OD630值)值大小以及每種蛋白提純的難易程度和刺激機體免疫力的情況等,比較并篩出診斷抗原。綜合考慮抗原純化的難易程度等多個因素選擇分泌蛋白GRA1作為候選抗原,建立了檢測羊弓形蟲病的GRA1-iELISA(檢測IgG抗體)方法,這些結(jié)果為羊弓形蟲病ELISA試劑盒商品化生產(chǎn)提供了參考價值,對羊弓形蟲病的臨床診斷和疾病控制具有重要意義。

    1 材料與方法

    1.1 質(zhì)粒、菌種與蟲株 弓形蟲RH蟲株(本實驗室保存)在HFF細(xì)胞(ATCC公司,美國)中擴大繁殖,HFF細(xì)胞培養(yǎng)在含2%FBS(胎牛血清)的DMEM中;BL21(DE3)表達菌株為本實驗室保存;pGEX-KG-MIC3[10]、pGX6P-1-MAG[10]、pET-28a-BAG1[11]重組質(zhì)粒為本實驗室構(gòu)建并保存。pE-SUMO-GRA1質(zhì)粒的構(gòu)建方式如下:提取弓形蟲RH株速殖子的RNA,利用PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser(TaKaRa,日本)得到cDNA,并以此為模板利用GRA1(CDS)-F和GRA1(CDS)-R(表1)為引物擴增GRA1的編碼區(qū),然后用ClonExpess一步法無縫克隆試劑盒將GRA1-CDS片段連接到pE-SUMO載體上得到pE-SUMO-GRA1,經(jīng)酶切鑒定測序驗證無誤后,將其轉(zhuǎn)化到大腸桿菌BL21(DE3)中用于GRA1的誘導(dǎo)表達。

    表1 構(gòu)建pE-SUMO-GRA1質(zhì)粒用到的引物序列Table 1 Primers used to construct the pE-SUMO-GRA1 plasmid

    1.2 樣本來源 80份黑山羊血清采自湖北省黃岡市某屠宰場;20份山羊弓形蟲陰性血清采自湖北省農(nóng)科院畜牧獸醫(yī)研究所;弓形蟲標(biāo)準(zhǔn)陰、陽性對照血清、山羊無漿體陽性血清、山羊莫氏巴貝斯蟲陽性血清、山羊呂氏泰勒蟲陽性血清均由中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蘭州獸醫(yī)研究所朱興全老師、關(guān)貴全老師惠贈。

    1.3 5種抗原的制備 全蟲抗原的制備:RH速殖子培養(yǎng)在T25細(xì)胞瓶中,待弓形蟲速殖子(約107個)逸出后收集細(xì)胞,用注射器吹打以裂 解宿主細(xì)胞并釋放蟲體,用3 μm濾器過濾,1500 ×g離心收集蟲體并用PBS洗滌3次,向沉淀中加入200 μL裂解液(RIPA),置于超聲清洗機中裂解30 min至液體清亮,離心取上清液,利用BCA蛋白濃度測定試劑盒測得蛋白濃度,然后放在-80℃保存?zhèn)溆?。制備MIC3、MAG、BAG1蛋白的具體操作參照文獻中相應(yīng)步驟[10-11]。GRA1的制備方法如下:將BL21(DE3)/pE-SUMO-GRA1表達菌株擴大培養(yǎng)至OD600為0.4,加入終濃度為1.0 mmol/L的IPTG誘導(dǎo)4 h,離心收集菌體,用壓力破碎儀破碎菌體,4℃條件下12000 ×g離心10 min取上清液,將上清液用0.45 μm的濾器過濾,然后經(jīng)親和層析柱純化。

    1.4 以4種重組蛋白和全蟲抗原為包被抗原的正交試驗 將5種抗原分別按5、2.5、1.25、0.625、0.3125 μg/mL的梯度稀釋,包被酶標(biāo)條,每個濃度包被一縱列5孔。將陰、陽性對照血清分別按1∶25、1∶50、1∶100、1∶200、1∶400稀釋,每個稀釋度加到一橫列5孔,二抗用Rabbit Anti-Goat IgG(HRP Conjugated)。按文獻描述的方法[11]進行ELISA操作,比較各抗原對應(yīng)的P/N值的大小,依次選擇最優(yōu)抗原。同時,選擇正交實驗中P/N值最大處對應(yīng)的抗原包被濃度和血清稀釋倍數(shù)作為最佳條件優(yōu)化后續(xù)的iELISA方法。

    1.5 GRA1-iELISA方法

    1.5.1 各項反應(yīng)條件優(yōu)化 在正交試驗結(jié)果基礎(chǔ)上對封閉濃度(0.5%、1.0%、1.5%與2.0%的BSA)和時間(20、30、45、60 min)、待檢血清作用時間(30、45、60、75 min)、二抗使用濃度(1∶3000、1∶4000、1∶5000、1∶6000)及時間(30、45、60、75 min)、底物反應(yīng)作用時間(5、7.5、10、12.5 min)進行優(yōu)化。上述試驗重復(fù)3次以確定最佳條件。

    1.5.2 重復(fù)性試驗 批內(nèi)重復(fù)試驗采用同一批次包被的酶標(biāo)板,分別在包被后第0、3、6、9、12 d對3份陽性血清和2份陰性血清按照已經(jīng)優(yōu)化好的條件進行檢測,并計算其平均值、標(biāo)準(zhǔn)差和變異系數(shù)。批間重復(fù)試驗分別取5個批次包被的酶標(biāo)板在同一時間對3份陽性血清和2份陰性血清按照已經(jīng)優(yōu)化好的條件進行檢測。

    1.5.3 敏感性試驗和特異性試驗 敏感性試驗:5份陽性血清各作1∶25、1∶50、1∶100、1∶200、1∶400、1∶800、1∶1600稀釋,然后用優(yōu)化好的條件進行GRA1-iELISA檢測,并設(shè)陽性、陰性、空白對照,尋找檢測結(jié)果為陽性的最大血清稀釋度作為敏感性試驗的結(jié)果。特異性試驗:用建立的方法對山羊莫氏巴貝斯蟲陽性血清、山羊呂氏泰勒蟲陽性血清、捻轉(zhuǎn)血矛線蟲陽性血清進行檢測,檢查是否有交叉反應(yīng)。

    1.5.4 檢測臨床樣本 應(yīng)用建立的方法對采集自湖北省某屠宰場的80份山羊血清進行檢測,分別設(shè)置陽性、陰性和空白對照,計算陽性率。同時,應(yīng)用改良凝集試驗(MAT)對該批血清檢測,計算陽性率,比較兩種方法的符合率。

    2 結(jié)果

    2.1 5種抗原的SDS-PAGE凝膠電泳分析和Western blot驗證 本研究選定弓形蟲速殖子全蟲抗原(TXA)以及4個重組蛋白(GRA1、MIC3、MAG、BAG1)作為羊弓形蟲病診斷的候選抗原。為檢查抗原的表達情況,對純化后的4個蛋白以及全蟲抗原進行SDS-PAGE凝膠電泳分析,結(jié)果見圖1。重組His-SUMO-GRA1、GST-MIC3、GST-MAG、His-BAG1大小分別約為39、68、43、42 kDa,目的條帶大小與預(yù)期相符(圖1)。

    圖1 5種抗原的SDS-PAGE鑒定Fig.1 SDS-PAGE analysis of five antigens

    同時,為驗證候選抗原的免疫反應(yīng)性,對5種抗原進行Western blot分析,結(jié)果見圖2。Western blot顯示,5種抗原均能被山羊弓形蟲特異的陽性血清識別,與陰性血清不反應(yīng)(圖2),說明免疫反應(yīng)性良好。

    圖2 5種抗原的Western blot分析Fig.2 Western blot analysis of 5 different antigens

    2.2 確定診斷抗原 將上述5種蛋白包被ELISA酶標(biāo)板,用陰(N)、陽性(P)對照血清進行間接ELISA試驗,整合數(shù)次方陣滴定結(jié)果,發(fā)現(xiàn)以GRA1為包被抗原的滴定試驗對應(yīng)的OD630P/N值最大,說明GRA1適合作為建立羊弓形蟲病診斷方法的候選抗原。同時,GRA1重組蛋白能夠以可溶形式大量表達,易純化,因此我們選定GRA1作為羊弓形蟲病iELISA診斷方法的最佳抗原。方陣滴定的結(jié)果還表明,GRA1-iELISA OD630P/N值最大值處對應(yīng)的蛋白包被濃度是1.25 μg/mL,血清稀釋度是1∶100。

    2.3 反應(yīng)條件優(yōu)化 在正交試驗結(jié)果的基礎(chǔ)上,以GRA1為包被抗原,對后續(xù)反應(yīng)條件進行篩選,根據(jù)P/N值大小明確了最佳封閉時間是30 min,最佳封閉濃度是1%的BSA(牛血清白蛋白),血清最佳作用時間是60 min,酶標(biāo)二抗最佳稀釋比是1∶5000,二抗最佳作用時間是45 min,顯色時間是10 min。

    圖3 方陣滴定試驗確定最佳診斷抗原Fig.3 Titration test to identify the best antigen

    2.4 陰、陽性臨界點的判定 按照以上優(yōu)化的反應(yīng)條件,對20份陰性血清(經(jīng)改良凝集試驗MAT驗證)用建立的間接ELISA方法進行檢測,結(jié)果如表2所示。根據(jù)表中數(shù)據(jù),經(jīng)統(tǒng)計學(xué)處理,求得20份陰性血清樣品的S(樣本OD630值)/N(標(biāo)準(zhǔn)陰性血清OD630值)的平均值x為1.4815,標(biāo)準(zhǔn)方差SD為0.2742,根據(jù)統(tǒng)計學(xué)原理x+3SD置信區(qū)間為99%,計算出ELISA陰陽性的臨界值是x+3SD=2.304,因此待測樣品的S/N值≥2.3為陽性,反之,則判斷為陰性。

    表2 20份陰性血清檢測結(jié)果Table 2 Detection results of 20 negative sera

    2.5 重復(fù)性試驗結(jié)果 以優(yōu)化后的間接ELISA檢測方法分別對批內(nèi)、批間(5個)各5份樣品重復(fù)5次進行檢測。結(jié)果顯示,重復(fù)試驗的變異系數(shù)均小于7%,說明建立的ELISA方法具有良好的重復(fù)性。結(jié)果見表3和表4。

    表3 批內(nèi)重復(fù)試驗結(jié)果Table 3 Reproducibility of intra-batch test of the GRA1-iELISA

    表4 批間重復(fù)試驗結(jié)果Table 4 Reproducibility of GRA1-iELISA between batches

    2.6 敏感性試驗和特異性試驗結(jié)果 為評估本研究所建立方法的敏感性,對5份陽性血清各作1∶25、1∶50、1∶100、1∶200、1∶400、1∶800、1∶1600稀釋進行檢測,并設(shè)陽性、陰性、空白對照,結(jié)果見表5。在本次檢測中,所以血清稀釋100倍以后還能被檢為陽性,說明本方法敏感性大于1∶100。

    表5 敏感性試驗結(jié)果Table 5 Sensitivity test of GRA1-iELISA

    為評估本研究所建立方法的特異性,用建立的方法對山羊莫氏巴貝斯蟲陽性血清、山羊呂氏泰勒蟲陽性血清、捻轉(zhuǎn)血矛線蟲陽性血清進行檢測,并設(shè)陽性、陰性、空白對照,結(jié)果見表6。該方法不與羊莫氏巴貝斯蟲、羊呂氏泰勒蟲、捻轉(zhuǎn)血矛線蟲陽性血清發(fā)生交叉反應(yīng)(表6),說明特異性良好。

    表6 特異性試驗結(jié)果Table 6 Specificity test of GRA1-iELISA

    2.7 臨床樣本檢測結(jié)果 應(yīng)用本研究優(yōu)化后的GRA1-iELISA方法,對采自湖北省黃岡市羅田縣某屠宰場的80份黑山羊血清進行檢測,結(jié)果發(fā)現(xiàn)該批山羊群體中弓形蟲抗體陽性率為28.75%(23/80)。將該結(jié)果與改良凝集試驗MAT檢測結(jié)果比較,二者的符合率為82.5%(66/80),見表7。

    表7 MAT和ELISA檢測結(jié)果對比Table 7 Comparison analysis of MAT and ELISA

    3 討論

    弓形蟲病是一種世界范圍內(nèi)的人畜共患病,羊弓形蟲病對畜牧業(yè)發(fā)展以及公共衛(wèi)生安全均有重大威脅,因此,建立準(zhǔn)確、有效的羊弓形蟲病現(xiàn)場診斷方法非常必要。目前,弓形蟲病的檢測方法在實驗室內(nèi)有很多嘗試,但是針對羊弓形蟲病,國際上尚無十分完善的快速診斷方法,國內(nèi)也缺少標(biāo)準(zhǔn)的商業(yè)化試劑盒。ELISA方法靈敏、特異、微量高效,無需昂貴設(shè)備和特殊技術(shù),可在短時間內(nèi)檢測大量樣本,能夠滿足獸醫(yī)基層批量檢測的需要。

    在本實驗中,我們表達純化了與弓形蟲相關(guān)的5種蛋白,通過一系列試驗,篩選出了各方面均比較突出的致密顆粒蛋白GRA1作為診斷抗原建立檢測方法。GRA1蛋白作為弓形蟲的分泌蛋白[12],在弓形蟲生活史的各個時期均有表達,并且可溶性好,表達量高,易提純,經(jīng)濟成本低,是建立診斷方法的優(yōu)秀抗原[13]。建立本方法的不足之處是進行特異性試驗的樣本較少,僅選用了兩種原蟲和一種蠕蟲陽性樣品,原因是臨床上較難找到無特定病原體的山羊血清。本研究中以GRA1為診斷抗原的羊弓形蟲病間接ELISA方法靈敏度適中、特異性較好,適合養(yǎng)殖和屠宰現(xiàn)場的快速和高通量檢測,為后續(xù)商業(yè)化試劑盒的生產(chǎn)提供了參考價值,為羊弓形蟲病的流行病學(xué)調(diào)查以及免疫效果的監(jiān)測提供了技術(shù)支持,對羊弓形蟲病的防控具有重要意義。

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