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    依據(jù)CLSI EP07-A3文件評價血清指數(shù)對免疫散射比濁法檢測前白蛋白的干擾

    2022-03-14 02:14:10徐瓊峰段淑敏駱嘉歡王云秀張秀娟萬澤民柯培鋒黃憲章
    檢驗醫(yī)學(xué) 2022年2期
    關(guān)鍵詞:血清檢測

    韓 光,徐瓊峰,段淑敏,駱嘉歡,王云秀,張秀娟,萬澤民,柯培鋒,黃憲章

    (1.廣東省中醫(yī)院,廣東 廣州 510120;2.中國南方航空股份有限公司航空衛(wèi)生中心,廣東 廣州 510400;3.廣州中醫(yī)藥大學(xué)金沙洲醫(yī)院,廣東 廣州 510168;4.中山大學(xué)孫逸仙紀(jì)念醫(yī)院,廣東 廣州 510120)

    血清樣本的質(zhì)量是臨床檢測中常見的干擾因素。血清指數(shù)是指對脂濁(濁度)、溶血[血紅蛋白(hemoglobin,Hb)]和黃疸(膽紅素)的定量或半定量估計值[1]。血清指數(shù)較高會對較多項目檢測產(chǎn)生干擾[2],嚴(yán)重影響檢測結(jié)果的準(zhǔn)確性。前白蛋白(prealbumin,PA)由于相對分子質(zhì)量小、半衰期短、敏感性高,對診斷早期肝功能損傷有重要價值,同時也是衡量肝功能損傷患者預(yù)后的良好指標(biāo)[3]。免疫散射比濁法是測定PA的常用方法,也是推薦方法[4]。本研究參照美國臨床實驗室標(biāo)準(zhǔn)化協(xié)會(the Clinical and Laboratory Standards Institute,CLSI)EP07-A3文件[5],探討不同濃度的內(nèi)源性干擾物質(zhì)對免疫散射比濁法檢測PA是否能產(chǎn)生干擾,以及干擾誤差的大小和方向,以明確免疫散射比濁法檢測PA的血清指數(shù)限定值,并據(jù)此建立不合格樣本的退檢標(biāo)準(zhǔn)。

    1 材料和方法

    1.1 樣本來源

    收集廣東省中醫(yī)院體檢者體檢當(dāng)天的新鮮血清樣本作為基礎(chǔ)樣本,依據(jù)CLSIEP07-A3文件要求,樣本無肉眼可見的溶血、脂血、黃疸,且三酰甘油(triglyceride,TG)、膽紅素、丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(alanine aminotransferase,ALT)、天門冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(aspartate aminotransferase,AST)均處于參考區(qū)間內(nèi),PA檢測值為100~400 mg/L。

    1.2 儀器與試劑

    cobas c702全自動生化分析儀(瑞士羅氏公司)。血清指數(shù)檢測試劑(分光光度法,批號0768707)購自瑞士羅氏公司。PA試劑(免疫散射比濁法,批號2019021B)購自上??迫A公司。人膽紅素參考物質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)品干粉由深圳邁瑞生物醫(yī)療電子股份有限公司惠贈。

    1.3 干擾物配制

    1.3.1 干擾樣本和對照樣本 干擾樣本為基礎(chǔ)樣本添加一定濃度的干擾物質(zhì),對照樣本為基礎(chǔ)樣本添加等體積的干擾物質(zhì)的溶劑。加入的干擾物體積不超過測試物總體積的5%。干擾物體積所占比例見表1。

    1.3.2 干擾物配制 (1)Hb配制:將體檢者全血樣本破壞紅細(xì)胞后離心,取上層Hb,獲得Hb濃縮液。(2)膽紅素配制:在純化的人膽紅素參考物質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)品干粉中加入0.1 mol/L NaOH。(3)脂濁濃縮液:收集脂濁樣本,用低溫高速離心機(jī)4 ℃、6 574×g離心30 min,洗滌后收集上層濃縮的脂質(zhì),獲得脂濁濃縮液。

    1.3.3 干擾物濃度確定 Hb和脂質(zhì)均采用血清指數(shù)檢測試劑確定干擾物濃度,膽紅素干擾物濃度通過計算得出。脂濁干擾物(以TG為代表)濃度一般為16.90 mmol/L[6],本研究采用的脂濁工作液中的TG濃度為5.15 mmol/L,脂濁指數(shù)為988,雖低于常見脂濁干擾物(TG)濃度,但已達(dá)臨床高值。干擾物濃度見表1。

    表1 干擾物配制基本情況

    1.4 配對差異實驗

    1.4.1 重測次數(shù)的計算 計算最大允許干擾值(dmax)與批內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)差(s)的比值,查dmax/s比值與重測次數(shù)對應(yīng)表。重復(fù)測定10次基礎(chǔ)樣本,計算批內(nèi)s。dmax為各項目臨床意義差異的標(biāo)準(zhǔn)。

    1.4.2dmax的確定 依據(jù)國家衛(wèi)生健康委臨床檢驗中心2019年臨床檢驗室間質(zhì)量評價計劃,PA的允許總誤差(allowable total error,TEa)為25%,本研究設(shè)定PA的dmax為樣本均值(x)±1/3 TEa[7],即樣本±8.33%。

    1.4.3dobs的確定dobs為測試樣本均值(T)和對照樣本(C)均值之間的差值。dc為對照樣本最大允許偏移。通過公式計算Cut-off值dc(雙側(cè)檢驗)[5]。如|dobs|≤Cut-off值dc,可以得出某種物質(zhì)引起的偏移<dmax,對檢測結(jié)果無顯著影響;反之則說明由該物質(zhì)引起干擾的假設(shè)成立。

    1.5 劑量效應(yīng)實驗

    1.5.1 樣本準(zhǔn)備 干擾樣本和對照樣本分別記為高濃度脂濁血清(A)和低濃度脂濁血清(B)。按照B、3/4B+1/4A、1/2B+1/2A、1/4B+3/4A、A配制成5個濃度的測試樣本。

    1.5.2 重測次數(shù)的計算 重測次數(shù)的計算步驟與配對差異實驗一致。要求5個濃度的測試在同一個分析批內(nèi)進(jìn)行檢測,為了平均系統(tǒng)偏移,第1次測定時測試樣本濃度由低到高,第2次測試時測試樣本濃度由高到低,第3次測試時測試樣本濃度由低到高。

    1.5.3 判斷標(biāo)準(zhǔn) 結(jié)果判斷與配對差異實驗一致。以1/3 TEa(8.33%)為判斷標(biāo)準(zhǔn),以干擾率>8.33%為產(chǎn)生干擾。

    2 結(jié)果

    2.1 配對差異實驗

    2.1.1 重測次數(shù) 計算dmax/s比值后,查表得到樣本重測次數(shù)為3次。PA高、低值樣本的dc分別為6.60和2.19 mg/L。見表2。

    表2 PA高、低值樣本的dmax/s比值和dc

    2.1.2 干擾效應(yīng)分析 在PA高、低值樣本中,加入10 g/L Hb(溶血指數(shù)為1 000)、200 mg/L(340 μmol/L)膽紅素(黃疸指數(shù)為20)對免疫散射比濁法檢測PA無干擾,加入脂濁指數(shù)為988的脂濁干擾物后對PA檢測有負(fù)干擾。見表3。

    表3 配對差異實驗結(jié)果

    2.2 劑量效應(yīng)實驗

    隨著脂濁指數(shù)的逐漸增大,脂濁對免疫散射比濁法PA檢測的干擾率逐步增大。見圖1。

    圖1 脂濁對PA干擾的劑量效應(yīng)實驗

    對于PA低值樣本,排除最高濁度可能產(chǎn)生基質(zhì)效應(yīng)引起的檢測偏差,脂濁指數(shù)為0~342時與干擾率呈線性關(guān)系,線性方程為Y=-0.077X+0.979(r2=0.999)。以1/3 TEa(8.33%)作為干擾的評價標(biāo)準(zhǔn),根據(jù)線性方程計算出脂濁指數(shù)為120,即脂濁指數(shù)≤120時,對PA檢測無顯著干擾。見表4。

    表4 脂濁對PA低值樣本的劑量效應(yīng)實驗結(jié)果

    對于PA高值樣本,脂濁指數(shù)為0~516時與干擾率呈線性關(guān)系,線性方程為Y=-0.040X-0.168(r2=0.992)。以1/3 TEa(8.33%)作為干擾的評價標(biāo)準(zhǔn),根據(jù)線性方程計算出脂濁指數(shù)為203,即脂濁指數(shù)≤203時對PA檢測無顯著干擾。見表5。

    表5 脂濁對PA高值樣本的劑量效應(yīng)實驗結(jié)果

    3 討論

    溶血、黃疸和脂血是常見的干擾臨床檢測的因素。試劑廠商一般會將常見的血清指數(shù)干擾結(jié)果納入試劑配置參數(shù)中。但如果使用非配套檢測系統(tǒng),或試劑廠商未做相關(guān)血清指數(shù)干擾的研究,那么溶血、黃疸和脂血導(dǎo)致的干擾就會對檢測結(jié)果的準(zhǔn)確性產(chǎn)生影響。為此,本研究分析了在非配套檢測系統(tǒng)中,血清樣本質(zhì)量對免疫散射比濁法檢測PA產(chǎn)生的干擾。

    本研究使用的PA試劑說明書中聲明:樣本中Hb<12 g/L、膽紅素<700 mg/L、脂類<1 000 mg/L對PA測定無干擾,但極度脂血影響較大。本研究參照CLSI EP07-A3文件,采用配對差異實驗和劑量效應(yīng)實驗對非配套檢測系統(tǒng)的抗干擾能力進(jìn)行了驗證。

    干擾物的選擇應(yīng)盡量與臨床實際干擾物一致,因此本研究溶血干擾物選擇Hb,黃疸干擾物選擇膽紅素;在臨床高脂濁樣本中,產(chǎn)生影響的微粒除了TG外,還包括極低密度脂蛋白[8],且脂濁指數(shù)與TG水平的相關(guān)性較差,因此本研究未使用TG作為脂濁干擾物,而是采用分離自脂濁樣本的脂質(zhì)層作為脂濁干擾物,血清濁度也采用脂濁指數(shù)表示,更加貼近臨床脂濁樣本。本研究配對差異實驗結(jié)果顯示,10 g/L Hb和340 μmol/L膽紅素對PA檢測無顯著干擾,與試劑說明書聲明基本一致。但該試劑對脂濁的抗干擾能力不強(qiáng),試劑說明書聲明脂類<1 000 mg/L對PA測定無干擾,但極度脂血影響較大。本研究結(jié)果顯示,脂濁對PA高、低值樣本均有負(fù)干擾,因此采用劑量效應(yīng)實驗來確定干擾物濃度和干擾率之間的關(guān)系。

    在脂濁對PA低值樣本的劑量效應(yīng)實驗中,可能是由于產(chǎn)生基質(zhì)效應(yīng)或其他原因引起了檢測偏差,導(dǎo)致高濃度脂濁,產(chǎn)生的干擾率結(jié)果呈現(xiàn)明顯的離群現(xiàn)象,排除此離群值后,顯示脂濁濃度與干擾率呈線性關(guān)系。以1/3 TEa(8.33%)為評價標(biāo)準(zhǔn),在PA低值樣本的檢測中,脂濁指數(shù)>120即可對PA檢測產(chǎn)生干擾;在PA高值樣本的檢測中,脂濁指數(shù)>203可對PA檢測產(chǎn)生干擾。

    本研究的不足之處在于PA高值基礎(chǔ)樣本未能覆蓋行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)[9]中PA的男性參考區(qū)間上限(430 mg/L),后續(xù)將繼續(xù)收集PA高值樣本進(jìn)行相關(guān)研究。

    綜上所述,臨床常見的溶血和黃疸樣本不會對免疫散射比濁法檢測PA造成干擾,但脂濁指數(shù)L>120的樣本會對PA檢測造成負(fù)干擾。

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