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    基于細(xì)胞焦亡與炎癥反應(yīng)相關(guān)基因構(gòu)建肝細(xì)胞癌預(yù)后風(fēng)險評估模型及驗證

    2022-03-12 04:05:48應(yīng)樂倩王德強余暉李小琴
    浙江醫(yī)學(xué) 2022年3期
    關(guān)鍵詞:數(shù)據(jù)庫

    應(yīng)樂倩 王德強 余暉 李小琴

    肝細(xì)胞癌惡性程度高、預(yù)后差,且其發(fā)病率在全球范圍內(nèi)居高不下[1]。免疫檢查點抑制劑的出現(xiàn)為肝細(xì)胞癌的治療開辟了新途徑,但由于缺乏理想的靶點,因此治療上缺乏個體化的用藥指導(dǎo)。同時,細(xì)胞焦亡這一新的細(xì)胞死亡方式被揭示,其本質(zhì)上是一場機體的“炎癥風(fēng)暴”,可激活免疫反應(yīng)[2]。研究顯示細(xì)胞焦亡與胃癌、肺癌以及結(jié)直腸癌等疾病有關(guān),能影響抗腫瘤藥物的療效[3-8]。因此,本文基于細(xì)胞焦亡與炎癥反應(yīng)相關(guān)基因構(gòu)建肝細(xì)胞癌預(yù)后風(fēng)險評估模型,得到細(xì)胞焦亡與炎癥反應(yīng)評分(pyroptosis and inflammatory response score,PIRS),并進一步探索PIRS對腫瘤微環(huán)境(tumor microenvironment,TME)狀態(tài)的預(yù)測效能,以期為肝細(xì)胞癌的預(yù)防和診治提供新思路和新靶點。

    1 材料和方法

    1.1 數(shù)據(jù)來源 mRNA數(shù)據(jù)和臨床信息從癌癥基因組圖譜(the cancer genome atlas,TCGA)數(shù)據(jù)庫(https://cancergenome.nih.gov)和國際癌癥基因組聯(lián)盟(international cancer genome consortium,ICGC)數(shù)據(jù)庫(https://dcc.icgc.org/projects/LIRI-JP)獲得[9]。納入標(biāo)準(zhǔn):(1)可通過mRNA數(shù)據(jù)計算PIRS;(2)符合肝細(xì)胞癌病理診斷;(3)年齡、性別、總生存期(overall survival,OS)、組織學(xué)分級以及病理學(xué)分期等臨床數(shù)據(jù)完整。最終從TCGA數(shù)據(jù)庫和ICGC數(shù)據(jù)庫分別篩選出365例和231例肝細(xì)胞癌患者。查閱相關(guān)文獻提取細(xì)胞焦亡相關(guān)基因[3-8],并從基因集富集分析(gene set enrichment analysis,GSEA)數(shù)據(jù)庫(http://www.gsea-msigdb.org/gsea/index.jsp)下載炎癥反應(yīng)基因集。

    1.2 肝細(xì)胞癌預(yù)后風(fēng)險評估模型構(gòu)建 使用R語言的limma包提取出TCGA數(shù)據(jù)庫中245個細(xì)胞焦亡和炎癥反應(yīng)基因的mRNA數(shù)據(jù)。采用單變量Cox回歸分析篩選與OS顯著相關(guān)基因,計算HR和95%CI。通過Kaplan-Meier生存分析得到其最佳截斷值,將mRNA數(shù)據(jù)進行二分類轉(zhuǎn)換:低表達組為0,高表達組為1。最小絕對收縮和選擇算子(least absolute shrinkage and selection operator,Lasso)Cox回歸分析得到回歸系數(shù),其絕對值定為>0.2,構(gòu)建由15個基因組成的肝細(xì)胞癌預(yù)后風(fēng)險評估模型。通過模型公式計算出PIRS,并通過其在TCGA數(shù)據(jù)庫的中位值(0.2)分別將TCGA數(shù)據(jù)庫和ICGC數(shù)據(jù)庫中患者分為高風(fēng)險組和低風(fēng)險組。

    1.3 模型的有效性驗證 Kaplan-Meier生存分析比較兩組患者的預(yù)后。通過AUC比較PIRS預(yù)測患者預(yù)后的準(zhǔn)確性。通過prcomp函數(shù)進行主成分分析(principal components analysis,PCA),對高低風(fēng)險樣本分類進行降維模擬。通過單因素和多因素Cox回歸分析研究PIRS與肝細(xì)胞癌臨床病理特征間的關(guān)系。

    1.4 評估TME狀態(tài)以及機制探索 通過單樣本GSEA(single sample GSEA,ssGSEA)計算出免疫浸潤細(xì)胞的含量和免疫相關(guān)通路的活性[10]?;谀[瘤免疫功能障礙與逃逸(tumor immune dysfunction and exclusion,TIDE)網(wǎng)站(http://tide.dfci.harvard.edu/)已有的免疫治療數(shù)據(jù),上傳肝細(xì)胞癌患者表達譜數(shù)據(jù)預(yù)測TME的狀態(tài)。通過前期收集TCGA數(shù)據(jù)庫的免疫景觀圖譜,研究者已將所有TCGA樣本分為C1~C6免疫亞型[11],分別為創(chuàng)傷愈合型、IFN-γ為主型、炎癥反應(yīng)型、淋巴細(xì)胞耗竭型、免疫沉默型和轉(zhuǎn)化生長因子β(transforming growth factor-β,TGF-β)為主型。從分子標(biāo)簽數(shù)據(jù)庫網(wǎng)站(http://www.gsea-msigdb.org/gsea/msigdb/index.jsp)下載京都基因與基因組百科全書(Kyoto encyclopedia of genes and genomes,KEGG)和基因本體論(gene ontology,GO)數(shù)據(jù)庫,通過GSEA提取細(xì)胞焦亡與炎癥反應(yīng)相關(guān)的信號通路以及生物學(xué)功能。

    1.5 統(tǒng)計學(xué)處理 采用R 4.0.3(www.r-project.org)統(tǒng)計軟件。基因表達與患者預(yù)后的關(guān)系分析采用Kaplan-Meier生存分析,兩組生存率比較采用logrank檢驗。不同臨床病理分期患者的基因表達水平比較采用單因素與多因素Cox回歸分析。計量資料兩兩比較采用兩獨立樣本t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 肝細(xì)胞癌預(yù)后風(fēng)險評估模型的構(gòu)建 在TCGA數(shù)據(jù)庫中,通過對245個細(xì)胞焦亡與炎癥反應(yīng)基因的mRNA數(shù)據(jù)進行單變量Cox回歸分析和Kaplan-Meier生存分析比較預(yù)后,篩選出與OS顯著相關(guān)的62個基因(P<0.05,圖1a,見插頁)。因為速激肽受體3(tachykinin receptor 3,TACR3)基因的HR值高達211,為排除不同數(shù)據(jù)庫之間存在的測量誤差,TACR3基因不參與預(yù)后模型的構(gòu)建。采用Lasso Cox回歸分析確定15個基因參與模型構(gòu)建(圖1b,見插頁),其中C-C基序趨化因子受體(C-C motif chemokine receptor 7,CCR7)、顆粒酶 A(granzyme A,GZMA)、HPN(hepsin)、白細(xì)胞介素18受體輔助蛋白(interleukin 18 receptor accessory protein,IL-18RAP)、白細(xì)胞介素7受體(interleukin 7 receptor,IL-7R)和核苷酸寡聚結(jié)構(gòu)域樣受體家族含pyrin結(jié)構(gòu)域 6(the nucleotide oligomerization domainlike receptor family pyrin domain containing 6,NLRP6)為保護因素;而C-C基序趨化因子配體20(C-C motif chemokine ligand 20,CCL20)、GSDMC(gasdermin C)、早老蛋白-1(presenilin-1,PSEN1)、金屬蛋白酶 α(meprin α,MEP1A)、核苷酸寡聚結(jié)構(gòu)域 2(nucleotide oligomerization domain 2,NOD2)、整合素亞基 α5(integrin subunit α5,ITGA5)、ras同家族 G(ras homolog family G,RHOG)、集落刺激因子3受體(colony stimulating factor 3 receptor,CSF3R)和白細(xì)胞介素15受體亞基α(interleukin-15 receptor subunit α,IL-15RA)為危險因素(圖1c,見插頁)。根據(jù)模型公式計算每個患者的風(fēng)險評分:PIRS=(-0.452)×CCR7 值+(-0.404)×GZMA 值+(-0.561)×HPN 值+(-0.710)×IL-18RAP 值+(-0.514)×IL-7R 值+(-0.385)×NLRP6 值+(0.332)×CCL20 值+(0.402)×GSDMC 值+(0.419)×PSEN1+(0.445)×MEP1A值 +(0.515)×NOD2 值 +(0.516)×ITGA5 值 +(0.601)×RHOG 值+(0.602)×CSF3R 值+(0.759)×IL-15RA 值。

    圖1 肝細(xì)胞癌預(yù)后風(fēng)險評估模型構(gòu)建相關(guān)圖(a:預(yù)后相關(guān)差異基因森林圖;b:15個基因的部分似然偏差圖和系數(shù);c:15個基因mRNA表達熱圖)

    2.2 PIRS對肝細(xì)胞癌患者預(yù)后的評估及驗證 在TCGA數(shù)據(jù)庫中,高風(fēng)險組患者預(yù)后較差,其中位OS明顯低于低風(fēng)險組(P<0.01,圖2a,見插頁)。隨著PIRS升高,肝細(xì)胞癌患者OS明顯縮短(圖2b,見插頁),PIRS的中位值可以將患者分為高、低風(fēng)險兩組(圖2c,見插頁)。通過隨時間變化的ROC曲線,PIRS的 AUC 值在 1、2、3年分別為 0.871、0.846和 0.831(圖2d,見插頁)。

    同時,經(jīng)外部ICGC數(shù)據(jù)庫驗證,相比低風(fēng)險組,高風(fēng)險組患者預(yù)后較差(P<0.01,圖2e,見插頁)。PIRS與OS生存狀態(tài)的動態(tài)分布圖和PCA結(jié)果如圖2f、g所示,在驗證數(shù)據(jù)庫中得到一致的結(jié)果。AUC值在1、2、3年時分別為 0.844、0.733和 0.751(圖 2h,見插頁),證明PIRS對預(yù)測肝細(xì)胞癌患者的預(yù)后具有較高的準(zhǔn)確性。

    圖2 PIRS對肝細(xì)胞癌患者預(yù)后的評估及驗證(a、e:PIRS與預(yù)后的關(guān)系;b、f:PIRS與總生存期散點圖;c、g:主成分分析分布圖;d、h:ROC 曲線圖)

    2.3 PIRS與臨床病理指標(biāo)預(yù)測患者預(yù)后的有效性比較 臨床病理指標(biāo)在患者預(yù)后的評估上有指導(dǎo)意義,但現(xiàn)有的指標(biāo)不足以滿足臨床個體化治療的需求,需進一步完善預(yù)后評估體系。在TCGA數(shù)據(jù)庫中,通過單因素Cox回歸分析,腫瘤的病理分期和PIRS與預(yù)后相關(guān)(P<0.05);多因素回歸分析顯示,PIRS是患者預(yù)后的獨立預(yù)測指標(biāo)(HR=2.802,95%CI:2.286~3.433,P<0.01,圖 3a);病理分期處于晚期(Ⅲ~Ⅳ期)患者的PIRS較Ⅰ~Ⅱ期明顯升高(圖3b)。根據(jù)AUC結(jié)果提示,相比現(xiàn)有的臨床病理指標(biāo),PIRS對預(yù)后預(yù)測的有效性更高(AUC=0.870>0.643,圖 3c)。

    通過ICGC數(shù)據(jù)庫進行驗證,單因素Cox回歸顯示,患者性別、腫瘤病理分期和PIRS與預(yù)后有關(guān)(P<0.05);多因素回歸分析顯示,PIRS為患者預(yù)后的獨立預(yù)測指標(biāo)(HR=1.873,95%CI:1.427~2.460,P<0.01,圖3d)。病理分期處于晚期(Ⅲ~Ⅳ期)患者的PIRS較Ⅰ~Ⅱ期明顯升高(圖3e)。相比臨床病理指標(biāo),PIRS對預(yù)后預(yù)測有更高的有效性(AUC=0.844>0.767,圖3f)。說明PIRS預(yù)測肝細(xì)胞癌患者預(yù)后的有效性不亞于現(xiàn)有的臨床病理指標(biāo),具有臨床價值。

    圖3 肝細(xì)胞癌預(yù)后風(fēng)險評估模型的獨立預(yù)后分析(a、d:單因素與多因素Cox回歸分析結(jié)果圖;b、e:PIRS與病理分期關(guān)系;c、f:PIRS與臨床指標(biāo)ROC曲線圖)

    2.4 PIRS評估TME免疫浸潤狀態(tài) 在TCGA數(shù)據(jù)庫中,高風(fēng)險組的B細(xì)胞、CD8+T細(xì)胞和自然殺傷(NK)細(xì)胞含量均明顯低于低風(fēng)險組(均P<0.01),但高風(fēng)險組中巨噬細(xì)胞含量高于低風(fēng)險組(P<0.01);上述結(jié)果在ICGC數(shù)據(jù)庫中均得到驗證(圖4a、b)。同時,通過TIDE對TCGA數(shù)據(jù)庫的mRNA數(shù)據(jù)進行計算,高風(fēng)險組中T細(xì)胞驅(qū)逐(exclusion)評分和免疫功能障礙相關(guān)的TIDE預(yù)測評分相比低風(fēng)險組均明顯升高(均 P<0.01,圖 4c、d)。綜上,高風(fēng)險組的 TME處于“冷腫瘤”狀態(tài),是肝細(xì)胞癌患者免疫系統(tǒng)被抑制的重要因素。

    高風(fēng)險組患者發(fā)生的免疫抑制可能與T細(xì)胞的細(xì)胞毒性減弱以及干擾素反應(yīng)性減低有關(guān)。在TCGA數(shù)據(jù)庫中,高風(fēng)險組細(xì)胞毒性通路、免疫促進通路、T細(xì)胞共刺激通路以及Ⅱ型干擾素反應(yīng)通路的活性均低于低風(fēng)險組(均P<0.01,圖4e)。在ICGC數(shù)據(jù)庫中,高風(fēng)險組的Ⅰ型干擾素反應(yīng)通路活性較低風(fēng)險組低(P<0.05,圖4f)。通過對TCGA免疫景觀圖譜的分析,發(fā)現(xiàn)創(chuàng)傷愈合型(C1)的PIRS最高,分別與IFN-γ為主型(C2)、炎癥反應(yīng)型(C3)及淋巴細(xì)胞耗竭型(C4)比較差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.01,圖4g)。C1與血管生成基因的高表達相關(guān),促進腫瘤的增殖[11]。上述研究結(jié)果均提示高風(fēng)險組預(yù)后差可能與腫瘤細(xì)胞的免疫逃逸有關(guān)。

    圖4 基于肝細(xì)胞癌預(yù)后風(fēng)險評估模型的腫瘤免疫微環(huán)境評估(a、b:PIRS與免疫浸潤細(xì)胞含量關(guān)系;c:PIRS與T細(xì)胞驅(qū)逐評分關(guān)系;d:PIRS與腫瘤免疫功能障礙與逃逸預(yù)測評分關(guān)系;e、f:PIRS與免疫相關(guān)通路關(guān)系;g:PIRS與TCGA免疫景觀圖譜關(guān)系)

    2.5 PIRS相關(guān)通路以及生物學(xué)功能 在TCGA數(shù)據(jù)庫中,通過KEGG富集分析,細(xì)胞周期、堿基切除修復(fù)、同源重組、錯配修復(fù)、p53信號通路及血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)信號通路富集在高風(fēng)險組,與腫瘤細(xì)胞增殖及血管新生有關(guān)。除此之外,高風(fēng)險組中富集了TGF-β信號通路,其能調(diào)控腫瘤免疫逃逸過程,進一步促進腫瘤的發(fā)生、發(fā)展(圖5a)。低風(fēng)險組主要富集了與代謝有關(guān)的一系列通路,其中包括脂肪酸代謝、初級膽汁酸生物合成代謝、視黃醇代謝以及色氨酸代謝等,低風(fēng)險組主要與維持機體自身的生理活動有關(guān)(圖5b)。

    通過GO富集分析,高風(fēng)險組富集了細(xì)胞周期相關(guān)的生物學(xué)活動,此外,發(fā)現(xiàn)PIRS與大分子的甲基化相關(guān)(圖5c)。低風(fēng)險組則與脂肪酸代謝以及蛋白質(zhì)激活級聯(lián)反應(yīng)等生物學(xué)活動密切相關(guān)(圖5d)。

    圖5 PIRS相關(guān)通路生物學(xué)功能與通路富集分析結(jié)果(a:高風(fēng)險組KEGG通路富集圖;b:低風(fēng)險組KEGG通路富集圖;c:高風(fēng)險組GO功能富集圖;d:低風(fēng)險組GO功能富集圖)

    3 討論

    細(xì)胞焦亡的概念最早可追溯至1992年,研究發(fā)現(xiàn)小鼠巨噬細(xì)胞感染志賀氏菌可導(dǎo)致細(xì)胞死亡[12]。隨后發(fā)現(xiàn)細(xì)菌感染引起的巨噬細(xì)胞死亡是一種完全不同于凋亡的細(xì)胞死亡方式[13]。隨著半胱氨酸天冬氨酸酶-1(caspase-1)以及gasdermin蛋白家族的發(fā)現(xiàn),細(xì)胞焦亡的機制被逐漸闡明。細(xì)胞焦亡信號通路分為依賴caspase-1的經(jīng)典途徑和依賴caspase-4/5/11的非經(jīng)典途徑。gasdermin-N結(jié)構(gòu)域的質(zhì)膜成孔活性是引起細(xì)胞焦亡的必要條件[14],其可通過誘導(dǎo)質(zhì)膜孔的形成,釋放IL-1β和IL-18,導(dǎo)致細(xì)胞膜破裂從而發(fā)生焦亡[15]。2018年,細(xì)胞死亡命名委員會將pyroptosis定義為一種調(diào)節(jié)性細(xì)胞死亡[2],嚴(yán)重依賴于gasdermin蛋白家族成員的質(zhì)膜孔形成,通常(但并不總是)由于caspase的激活所導(dǎo)致。

    在15個基因中有4個基因編碼的蛋白直接參與細(xì)胞焦亡的炎癥級聯(lián)反應(yīng),包括GZMA、NLRP6、GSDMC以及NOD2。NK細(xì)胞和CD8+T細(xì)胞通過GZMA誘導(dǎo)細(xì)胞焦亡的方式來殺傷GSDMB陽性的腫瘤細(xì)胞,起到抗腫瘤作用[16]。同時,IFN-γ能上調(diào)GSDMB表達并促進腫瘤細(xì)胞發(fā)生凋亡[16]。此外,炎癥小體已被證明可通過介導(dǎo)炎癥反應(yīng)參與細(xì)胞焦亡。NLRP6是炎癥小體的組成部分,可介導(dǎo)中性粒細(xì)胞炎癥反應(yīng)[17]。但有研究發(fā)現(xiàn),在NLRP6基因敲除的小鼠肺中,NK細(xì)胞介導(dǎo)的IFN-γ水平升高,且NLRP6可抑制革蘭陽性球菌感染所致的肺內(nèi)中性粒細(xì)胞招募[18]。NLRP6通過激活caspase-1誘導(dǎo)牙齦成纖維細(xì)胞發(fā)生焦亡以及加重氧/糖剝離再灌注模型的神經(jīng)元損傷[19-20]。上述研究結(jié)果均提示NLRP6參與炎癥反應(yīng)的調(diào)控,但具體調(diào)節(jié)機制有待進一步明確。GSDMC是gasdermin蛋白家族中的一員,同樣具有誘導(dǎo)質(zhì)膜孔形成的能力。在低氧條件下,磷酸化信號轉(zhuǎn)導(dǎo)和轉(zhuǎn)錄激活因子3與程序性死亡受體-配體1(PD-L1)相互作用增強GSDMC基因轉(zhuǎn)錄,GSDMC的高表達與預(yù)后不良有關(guān)[21]。GSDMC/caspase-8介導(dǎo)癌細(xì)胞中的非經(jīng)典的焦亡途徑[21]。此外,NOD2除了可以促進細(xì)胞凋亡和加重炎癥反應(yīng),還能誘導(dǎo)細(xì)胞焦亡[22]。

    此外,有5個受體蛋白的編碼基因和1個配體的編碼基因,都參與腫瘤微環(huán)境中的免疫調(diào)節(jié),分別是IL-7R、IL-18RAP、IL-15RA、CCR7、CSF3R 以及 CCL20。IL-7R編碼一種具有特異性α鏈和共細(xì)胞因子受體γ鏈的異二聚體受體。在乳腺癌、肺癌、腎癌和結(jié)腸癌組織中,IL-7R和(或)IL-7的表達增加[23],促進肝細(xì)胞癌細(xì)胞的增殖和轉(zhuǎn)移[24]。IL-18RAP通過IL-18和IL-18RAP軸在炎癥和免疫調(diào)節(jié)中發(fā)揮作用[25]。IL-15和IL-15RA作為共刺激因子可提高TME內(nèi)NK細(xì)胞和CD8+T細(xì)胞的浸潤水平,在膠質(zhì)瘤治療中能提高溶瘤病毒治療聯(lián)合免疫治療的協(xié)同效應(yīng),提高抗腫瘤作用[26]。除此之外,TGF-β可下調(diào) NK細(xì)胞活化標(biāo)志物和細(xì)胞毒性顆粒的表達,研究發(fā)現(xiàn)IL-15和IL-15RA是TGF-β信號通路的抑制劑[27]。在抑制性腫瘤微環(huán)境中,IL-15和IL-15RA有潛力成為重新激活NK細(xì)胞的靶點,從而逆轉(zhuǎn)NK細(xì)胞的功能障礙。CCR7主要在未發(fā)生細(xì)胞焦亡的樹突狀細(xì)胞(dendritic cells,DC)中發(fā)揮作用,過度活躍的DC依賴于CCR7,提高自身遷移到淋巴結(jié)引流區(qū)的能力和T淋巴細(xì)胞的細(xì)胞毒性[28]。CSF3R基因缺失突變導(dǎo)致先天性中性粒細(xì)胞減少癥,粒細(xì)胞巨噬細(xì)胞刺激因子刺激機體生成粒細(xì)胞,調(diào)節(jié)免疫[29]。CCL20是趨化因子受體CCR6的配體,首先在肝臟中被檢測到并且表達在巨噬細(xì)胞中,其能激活輔助性T細(xì)胞17產(chǎn)生IL-17。同時,IL-17也是CCL20表達的強誘導(dǎo)因子[30]。因此,上述正反饋關(guān)系表明 CCL20水平與IL-17信號激活密切相關(guān),參與機體的固有免疫。

    參與模型構(gòu)建的另外5個基因同樣與TME息息相關(guān),參與腫瘤的惡性生物學(xué)行為。MEP1A編碼是一種鋅金屬內(nèi)肽酶,有蛋白酶活性,通過調(diào)節(jié)上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化參與肝癌的疾病進展[31]。HPN編碼絲氨酸蛋白酶,主要在肝臟中表達,也與前列腺癌和卵巢癌的發(fā)生、發(fā)展有關(guān)[32]。PSEN1編碼的蛋白是組成膜蛋白γ分泌酶的成分,研究發(fā)現(xiàn)PSEN1可通過抑制應(yīng)激活化蛋白激酶/c-Jun氨基末端激酶途徑從而抑制機體免疫激活信號的傳導(dǎo)[33]。RHOG是控制癌細(xì)胞惡性生物學(xué)行為的信號元件,影響內(nèi)皮細(xì)胞的遷移和細(xì)胞間的黏附,介導(dǎo)膠質(zhì)母細(xì)胞瘤細(xì)胞的侵襲[34]。ITGA5是整合素家族成員,mir-26a通過ITGA5誘導(dǎo)肝癌細(xì)胞失去歸巢能力而發(fā)生凋亡[35]。

    肝臟是一個沉默的器官,肝癌一旦發(fā)現(xiàn)大多數(shù)已是晚期,其惡性程度高,嚴(yán)重威脅著國人的身體健康[1]。肝細(xì)胞癌預(yù)后風(fēng)險評估模型的高風(fēng)險組患者TME表現(xiàn)出的免疫抑制狀態(tài),可能與T細(xì)胞的細(xì)胞毒性減弱以及干擾素反應(yīng)性減低有關(guān)。研究表明病毒侵襲引發(fā)Ⅰ型干擾素的產(chǎn)生影響細(xì)胞中脂肪酸代謝,促進胞內(nèi)ATP含量升高,使細(xì)胞產(chǎn)生抗病毒效應(yīng)[36]。因此,高風(fēng)險組的干擾素反應(yīng)性減低,可能更容易患HBV、HCV等病毒感染,進一步引起肝硬化以及肝癌的發(fā)生。同時,高風(fēng)險組中富集的TGF-β通路可通過T細(xì)胞驅(qū)逐降低對PD-L1檢查點抑制劑的療效[37],促進腫瘤免疫逃逸,對患者預(yù)后造成不利影響。

    免疫治療是基于腫瘤細(xì)胞的免疫逃逸機制而設(shè)計,如靶向血管新生,激活效應(yīng)免疫細(xì)胞,抑制巨噬細(xì)胞和調(diào)節(jié)性T細(xì)胞釋放TGF-β等。值得關(guān)注的是,信迪利單抗聯(lián)合貝伐珠單抗已經(jīng)獲批用于肝細(xì)胞癌一線治療[38]。生物制劑的出現(xiàn)為腫瘤治療提供更多的可能性,研究人員發(fā)現(xiàn)在黑色素瘤的免疫治療過程中,一部分患者對免疫治療有先天抵抗作用。加入細(xì)胞周期蛋白依賴性激酶4/6抑制劑可以提高腫瘤對免疫治療的敏感性,同時抑制腫瘤細(xì)胞的生長[39]。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)細(xì)胞周期通路在高風(fēng)險組顯著富集。由于目前肝細(xì)胞癌單用免疫治療的療效不理想,或許聯(lián)合細(xì)胞周期抑制劑能提高肝細(xì)胞癌患者對免疫治療的敏感性。

    綜上所述,聯(lián)合用藥為肝細(xì)胞癌的精準(zhǔn)治療提供可能,而細(xì)胞焦亡和炎癥反應(yīng)相關(guān)通路將成為其中一個重要的靶點,值得深入研究。

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