◎ 魏 敏,姜華軍
(威海市食品藥品檢驗(yàn)檢測(cè)研究院,山東 威海 264210)
金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus,SA)是一種革蘭氏陽(yáng)性球菌,廣泛分布于自然界中,人和動(dòng)物是其主要攜帶者,通常寄生于人和動(dòng)物的皮膚表面及鼻腔、咽喉等上呼吸道黏膜,也存在于空氣、水、土壤等環(huán)境中[1]。金黃色葡萄球菌是一種常見(jiàn)的食源性致病微生物,其在適當(dāng)?shù)臈l件下能產(chǎn)生腸毒素,是引起食物中毒的主要原因[2-3]。金黃色葡萄球菌感染是世界性衛(wèi)生難題,在美國(guó)等西方國(guó)家,由金黃色葡萄球菌引起的食物中毒占整個(gè)細(xì)菌性食物中毒的1/3,我國(guó)每年也有此類中毒事件發(fā)生[4]。
金黃色葡萄球菌污染的食品主要有乳制品、蛋制品及各類熟肉制品等[5]?!妒称钒踩珖?guó)家標(biāo)準(zhǔn) 預(yù)包裝食品中致病菌限量》(GB 29921—2021)中規(guī)定了乳制品、肉制品等8大類食品中金黃色葡萄球菌的限量要求[6]。目前,對(duì)金黃色葡萄球菌的定量檢測(cè)主要采用國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)中的平板計(jì)數(shù)法。本文建立金黃色葡萄球菌定量檢測(cè)的不確定度評(píng)定方法,分析確定影響檢測(cè)結(jié)果的關(guān)鍵因素,并在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中進(jìn)行針對(duì)性的控制,提高檢測(cè)結(jié)果的科學(xué)性和準(zhǔn)確性。
金黃色葡萄球菌標(biāo)準(zhǔn)菌種(CICC 21600,中國(guó)工業(yè)微生物菌種保藏管理中心);磷酸鹽緩沖液、Baird-Parker瓊脂、凍干血漿、腦心浸出液肉湯和血瓊脂平板(北京路橋技術(shù)股份有限公司)。
PRACTUM1102-1CN電子天平(德國(guó)Sartorius公司);Bagmixer 400SW拍擊式均質(zhì)器(法國(guó)Interscience公司);KB115培養(yǎng)箱(德國(guó)Binder公司);AB2-4S1生物安全柜(新加坡ESCO公司);GE60DF立式壓力蒸汽滅菌器(廈門致微儀器有限公司)。
依據(jù)《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn) 食品微生物學(xué)檢驗(yàn) 金黃色葡萄球菌檢驗(yàn)》(GB 4789.10—2016)第二法金黃色葡萄球菌平板計(jì)數(shù)法進(jìn)行檢驗(yàn),檢驗(yàn)程序見(jiàn)圖1[7]。稱取25 g經(jīng)檢測(cè)為金黃色葡萄球菌陰性的乳粉樣品,置于盛有225 mL磷酸鹽緩沖液的均質(zhì)袋中,加入20 μL麥?zhǔn)蠞岫葹?.5 MCF的金黃色葡萄球菌標(biāo)準(zhǔn)菌種菌懸液,用拍擊式均質(zhì)器拍打2 min,制成1∶10樣品勻液。用1 mL無(wú)菌吸管吸取1∶10樣品勻液1 mL,注入盛有9 mL磷酸鹽稀釋液的無(wú)菌試管中,振搖試管使其混合均勻,制成1∶100樣品勻液。按上述操作步驟,制備10倍系列稀釋樣品勻液,每遞增稀釋1次,換1次1 mL無(wú)菌吸管。選擇2個(gè)適宜稀釋度的樣品勻液,每個(gè)稀釋度分別吸取樣品勻液0.3 mL、0.3 mL、0.4 mL接種至3塊Baird-Parker平板,涂布均勻后于(36±1)℃培養(yǎng)24~48 h。選取同一稀釋度3個(gè)平板所有菌落數(shù)合計(jì)在20~200 CFU的平板,計(jì)數(shù)典型菌落數(shù),并進(jìn)行染色鏡檢、血漿凝固酶試驗(yàn)和溶血試驗(yàn),報(bào)告結(jié)果。
圖1 金黃色葡萄球菌平板計(jì)數(shù)法 檢驗(yàn)程序圖
數(shù)學(xué)模型如下:
式中:T為樣品中金黃色葡萄球菌菌落數(shù),CFU·g-1;A為某一稀釋度典型菌落的總數(shù),CFU·g-1;B為某一稀釋度鑒定為陽(yáng)性的菌落數(shù),CFU·g-1;C為某一稀釋度用于鑒定試驗(yàn)的菌落數(shù),CFU·g-1;d為稀釋因子。
通過(guò)對(duì)實(shí)際檢測(cè)過(guò)程和數(shù)學(xué)模型進(jìn)行分析,不確定度的主要來(lái)源有5個(gè)方面。①樣品稱量過(guò)程引入的不確定度。②樣品定容過(guò)程引入的不確定度。③逐級(jí)稀釋過(guò)程引入的不確定度。④接種Baird-Parker平板時(shí)引入的不確定度。⑤重復(fù)檢測(cè)引入的不確定度。
2.3.1 樣品稱量過(guò)程引入的不確定度評(píng)定
本實(shí)驗(yàn)用感量為0.01 g的電子天平稱取25.00 g樣品,重復(fù)稱量10次,樣品質(zhì)量均為25.00 g,因此不考慮稱量重復(fù)性引入的不確定度。樣品稱量引入的不確定度主要有2個(gè)來(lái)源,分別是天平校準(zhǔn)和可讀性(分辨力)引入的不確定度。①校準(zhǔn)。根據(jù)天平的檢定證書(shū)和《電子天平檢定規(guī)程》(JJG 1036—2008)[8],感量為0.01 g的電子天平在0~500 g最大允許誤差為±0.05 g,區(qū)間半寬度為0.05 g,按矩形分布,天平校準(zhǔn)引入的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為②可讀性。天平的分辨力為0.01 g,區(qū)間半寬度為0.005 g,按矩形分布,天平可讀性引入的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為因此,樣品稱量過(guò)程引入的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)不確定度為urel(稱量)=
2.3.2 樣品定容過(guò)程引入的不確定度評(píng)定
本實(shí)驗(yàn)用250 mL量筒量取225 mL無(wú)菌磷酸鹽緩沖液加入到均質(zhì)袋中,制備1∶10樣品勻液,定容過(guò)程引入的不確定度包括量筒校準(zhǔn)引入的不確定度、溫度引入的不確定度。①校準(zhǔn)。根據(jù)《常用玻璃量器檢定規(guī)程》(JJG 196—2006)[9],250 mL量出式量筒在20 ℃時(shí)的容量允差為±2.0 mL,按矩形分布,校準(zhǔn)引入的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為②溫度。《常用玻璃量器檢定規(guī)程》(JJG 196—2006)規(guī)定的是量筒在20 ℃時(shí)的容量允差,實(shí)驗(yàn)室環(huán)境溫度為(20±2)℃,偏差為±2 ℃,水的體積膨脹系數(shù)為2.1×10-4/℃,因此溫度偏差產(chǎn)生的溶液體積變化為±(225×2×2.1×10-4)=±0.094 5 mL,按矩形分布,溫度引入的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為:
因此,樣品定容過(guò)程引入的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)不確定度為:
2.3.3 逐級(jí)稀釋過(guò)程引入的不確定度評(píng)定
(1)吸取樣品勻液時(shí)1 mL吸量管引入的不確定度。本實(shí)驗(yàn)逐級(jí)稀釋過(guò)程采用1 mL吸量管吸取1 mL樣品勻液,其引入的不確定度包括校準(zhǔn)和溫度2個(gè)方面。①校準(zhǔn)?!冻S貌AЯ科鳈z定規(guī)程》(JJG 196—2006)規(guī)定,20 ℃時(shí)1 mL流出式分度吸量管(A級(jí))的容量允差為±0.008 mL,按矩形分布,校準(zhǔn)引入的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為②溫度。實(shí)驗(yàn)室環(huán)境溫度偏差產(chǎn)生的溶液體積變化為±(1×2×2.1×10-4)=±4.2×10-4mL,按矩形分布,溫度引入的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為因此,1 mL吸量管引入的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)不確定度為:
(2)吸取稀釋液時(shí)10 mL吸量管引入的不確定度。本實(shí)驗(yàn)逐級(jí)稀釋過(guò)程采用10 mL吸量管吸取9 mL磷酸鹽稀釋液,其引入的不確定度包括校準(zhǔn)和溫度2個(gè)方面。①校準(zhǔn)。《常用玻璃量器檢定規(guī)程》JJG 196—2006規(guī)定,20 ℃時(shí)10 mL流出式分度吸量管(A級(jí))的容量允差為±0.05 mL,按矩形分布,校準(zhǔn)引入的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為②溫度。實(shí)驗(yàn)室環(huán)境溫度偏差產(chǎn)生的溶液體積變化為±(9×2×2.1×10-4)=±0.003 78 mL,按矩形分布,溫度引入的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為:
因此,10 mL吸量管引入的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)不確定度為:
(3)逐級(jí)稀釋過(guò)程的合成標(biāo)準(zhǔn)不確定度。進(jìn)行1次逐級(jí)稀釋使用1次1 mL和10 mL吸量管,其引入的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為由 于10倍 系列稀釋方法相同,故整個(gè)稀釋過(guò)程的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為10倍系列稀釋的次數(shù)。本實(shí)驗(yàn)最終采用的是1∶1 000稀釋度的平板進(jìn)行菌落計(jì)數(shù),因此進(jìn)行了2次10倍系列稀釋,q=2,逐級(jí)稀釋過(guò)程引入的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為
(4)接種Baird-Parker平板時(shí)引入的不確定度評(píng)定。接種過(guò)程使用1 mL吸量管吸取1 mL樣品勻液以0.3 mL、0.3 mL、0.4 mL接種量分別加入3塊Baird-Parker平板。其引入的不確定度包括校準(zhǔn)和溫度2個(gè)方面,計(jì)算方法同2.3.3中(1),則接種0.3 mL和0.4 mL樣品勻液引入的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)不確定度分別為:
因此,接種Baird-Parker平板時(shí)引入的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為
(5)重復(fù)檢測(cè)引入的不確定度評(píng)定。在相同條件下對(duì)同一樣品重復(fù)測(cè)10次,由于金黃色葡萄球菌檢測(cè)結(jié)果的發(fā)散性比較大,直接按貝塞爾公式計(jì)算樣本標(biāo)準(zhǔn)差不合理,因此本研究將檢測(cè)結(jié)果轉(zhuǎn)換為對(duì)數(shù)值后進(jìn)行計(jì)算,檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)表1[10-12]。
表1 乳粉中金黃色葡萄球菌定量檢測(cè)結(jié)果表
采用貝塞爾公式法計(jì)算重復(fù)檢測(cè)引入的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為:
以上各不確定分量是相互獨(dú)立的,計(jì)算合成標(biāo)準(zhǔn)不確定度為:
根據(jù)《測(cè)量不確定度評(píng)定與表示》(JJF 1059.1—2012)[13],取置信概率p=95%,自由度v=10-1=9,由t分布表可得包含因子k=2.26,故擴(kuò)展不確定度為U=k×uc(T)=2.26×0.029 31=0.066 2。
樣品中金黃色葡萄球菌檢測(cè)結(jié)果的對(duì)數(shù)值lgX=4.592 2±0.066 2,k=2.26。取反對(duì)數(shù)后得到金黃色葡萄球菌定量檢測(cè)結(jié)果的取值為33 574~45 541 CFU·g-1,修約后為34 000~46 000 CFU·g-1。
本研究按照GB 4789.10—2016平板計(jì)數(shù)法對(duì)人工染菌的乳粉樣品進(jìn)行金黃色葡萄球菌的定量檢測(cè),并對(duì)檢測(cè)過(guò)程中的不確定度進(jìn)行分析和評(píng)定,不確定度來(lái)源主要有樣品稱量、樣品定容、逐級(jí)稀釋、接種及重復(fù)檢測(cè)引入的不確定度。由于本實(shí)驗(yàn)采用添加陽(yáng)性菌株制備人工染菌樣品,鑒定為陽(yáng)性的菌落數(shù)與用于鑒定實(shí)驗(yàn)的菌落數(shù)的比值(即B/C)均為1,因此未考慮鑒定實(shí)驗(yàn)引入的不確定度。根據(jù)各不確定度分量的評(píng)定結(jié)果,接種Baird-Parker平板引入的不確定度貢獻(xiàn)最大,其次是重復(fù)檢測(cè)引入的不確定度。重復(fù)性檢測(cè)引入的不確定度主要受操作人員、檢測(cè)環(huán)境、培養(yǎng)溫度、培養(yǎng)時(shí)間、菌落計(jì)數(shù)和樣品均勻性等因素的影響,屬于A類不確定度,可用統(tǒng)計(jì)分析的方法進(jìn)行評(píng)定,本研究采用了貝塞爾公式法進(jìn)行評(píng)定[14]。實(shí)驗(yàn)室可根據(jù)測(cè)量不確定度的評(píng)定結(jié)果,從人員、儀器設(shè)備、培養(yǎng)基和試劑、檢驗(yàn)方法和環(huán)境條件等方面加強(qiáng)控制,最大限度降低不確定度,提高檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確性和可靠性。
通過(guò)對(duì)金黃色葡萄球菌檢測(cè)不確定度的評(píng)定,分析和評(píng)價(jià)影響檢測(cè)結(jié)果的關(guān)鍵因素,可為實(shí)驗(yàn)室風(fēng)險(xiǎn)管理和質(zhì)量控制提供指導(dǎo),有效提高實(shí)驗(yàn)室質(zhì)量管理水平。當(dāng)檢測(cè)結(jié)果在標(biāo)準(zhǔn)限量值附近時(shí),結(jié)合測(cè)量不確定度判定產(chǎn)品是否合格更科學(xué)和準(zhǔn)確[15]。