劉蕾, 馬德賓, 史亮, 孫文武
(中國人民解放軍北部戰(zhàn)區(qū)總醫(yī)院 呼吸內(nèi)科, 遼寧 沈陽 110016)
肺動脈高壓(pulmonary arterial hypertension, PAH)是以肺動脈平均壓漸進性升高為特征的慢性疾病,其病理特點為肺血管重構(gòu)及血管阻力的持續(xù)升高,最終導(dǎo)致患者右心衰竭及死亡[1-2]。內(nèi)皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(endothelial-to-mesenchymal transition, EndMT)引起的內(nèi)皮細胞(endothelial cells, EC)損傷是PAH發(fā)生發(fā)展的關(guān)鍵因素[3]。抑制EndMT、恢復(fù)EC功能,可有效緩解PAH的發(fā)病進程。Shh(Sonic hedgehog)可調(diào)控內(nèi)皮細胞生長,促進細胞遷移,進而誘導(dǎo)新生血管的生成[4]。研究發(fā)現(xiàn),Shh在缺氧環(huán)境下的人肺動脈內(nèi)皮細胞中表達上調(diào)[5],提示Shh可能參與低氧誘導(dǎo)的PAH發(fā)病進程;Twist參與細胞的遷移及血管生成,是促進EndMT的關(guān)鍵因子[6]。推測Shh、Twist1在調(diào)控內(nèi)皮細胞功能方面發(fā)揮關(guān)鍵作用。然而,關(guān)于Shh/Twist1對肺動脈內(nèi)皮細胞間質(zhì)轉(zhuǎn)化的影響鮮見報道。因此本研究旨在探討Shh/Twist1對低氧誘導(dǎo)的PAH細胞模型內(nèi)皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化及血管重構(gòu)的影響,以期為PAH的早期防治提供實驗依據(jù)。
1.1.1動物來源 4周齡SPF級雄性SD大鼠,體質(zhì)量100~120 g,購自北京華阜康公司[許可證號SCXK(京)2020-0004],用于原代分離肺動脈內(nèi)皮細胞。
1.1.2主要試劑及材料 肺動脈內(nèi)皮細胞專用培養(yǎng)基(上海中喬新舟生物科技有限公司),胰酶(美國Sigma公司),Twist siRNA干擾片段及陰性對照(實驗室前期構(gòu)建保存),Cyclopamine(上海源葉生物科技有限公司),脂質(zhì)體3000(美國sigma公司),絲裂霉素C(美國sigma公司),Matrigel膠(美國Cornig公司);全蛋白提取試劑盒、兔抗大鼠Shh一抗(A7726,1 ∶400)及BCA蛋白濃度測定試劑盒(武漢愛博泰克生物科技有限公司),兔抗大鼠Twist1一抗(WL00997,1 ∶500)、兔抗大鼠血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)一抗(WL00009b,1 ∶400)、兔抗大鼠基質(zhì)金屬蛋白酶2(matrix metalloproteinase,MMP2)一抗(WL03702,1 ∶1 000)及山羊抗兔IgG-HRP二抗(WLA023,1 ∶5 000)均購自沈陽萬類生物科技有限公司。
1.2.1大鼠原代肺動脈內(nèi)皮細胞的分離[7]采用組織塊貼壁法提取大鼠原代肺動脈內(nèi)皮細胞,SD大鼠經(jīng)戊巴比妥鈉麻醉(200 mg/kg)后頸椎脫臼處死,無菌環(huán)境下取新鮮肺動脈組織。在含PBS的10 cm的培養(yǎng)皿中,反復(fù)清洗血管內(nèi)的血液。將清洗干凈的血管移入另一個培養(yǎng)皿中,PBS沖洗2次后,移入第3個培養(yǎng)皿。用眼科剪縱向剪開肺動脈,用無菌刀片將組織片切成1~2 mm2大小的動脈片,整個操作過程標本要浸泡于PBS中。最后將動脈片移入直徑為35 mm的培養(yǎng)皿中,將其內(nèi)膜面貼于培養(yǎng)皿,置于細胞培養(yǎng)箱中干涸2 h后,加入3 mL專用培養(yǎng)基于37 ℃、5 %CO2的培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。72 h細胞達一定密度后將動脈片去除,換液1次,以后每2 d換液1次,每次按照新鮮培養(yǎng)基1 ∶1進行換液,繼續(xù)培養(yǎng)7 d,細胞融合成單層。細胞密度達到90%,用胰蛋白酶消化,進行傳代培養(yǎng)。
1.2.2造模及細胞分組 肺動脈內(nèi)皮細胞接種至專用細胞培養(yǎng)基中,3%O2培養(yǎng)細胞3 d,建立PAH細胞模型[8-9]。胰酶消化計數(shù)后的大鼠肺動脈內(nèi)皮細胞接種于培養(yǎng)板,分為正常對照組(37 ℃、5%CO2培養(yǎng)細胞3 d)、模型組(3%O2培養(yǎng)細胞3 d)、Shh抑制劑組(37 ℃、5%CO2條件下5 μmol/L Cyclopamine處理過夜后,細胞置于3%O2條件下培養(yǎng)3 d)、siRNA NC組(37 ℃、5%CO2條件下用siRNA NC轉(zhuǎn)染過夜后,細胞置于3%O2條件下培養(yǎng)3 d)及Twist1 siNRA組(37 ℃、5%CO2條件下用Twist1 siNRA轉(zhuǎn)染過夜后,3%O2條件下培養(yǎng)3 d)。
1.2.3劃痕實驗檢測細胞的遷移能力 培養(yǎng)各組細胞至密度為融合狀態(tài)。在實驗前將培養(yǎng)基換為無血清培養(yǎng)基并加入1 mg/L的絲裂霉素C處理1 h。將各組細胞利用200 μL pipette tip造成細胞劃痕,用無血清培養(yǎng)基清洗細胞表面1次,除去細胞碎片,換用無血清培養(yǎng)基培養(yǎng)。將各組細胞置于37 ℃、5 % CO2的培養(yǎng)箱中分別培養(yǎng)24 h后拍照。
1.2.4小管形成實驗檢測細胞成管能力 Matrigel膠4 ℃過夜解凍,冰上操作,吸取Matrigel膠至96孔培養(yǎng)板,每孔50 μL,置37 ℃培養(yǎng)箱中孵育2 h,使其凝固。收集各組缺氧誘導(dǎo)1 d的培養(yǎng)液,用于細胞培養(yǎng)。將細胞分別消化離心后進行細胞計數(shù)。分別取各組細胞懸液100 μL加入已鋪膠的96孔細胞培養(yǎng)板,每孔細胞數(shù)為104個,倒置顯微鏡下觀察拍照。
1.2.5實時熒光定量PCR(Real-time PCR)檢測細胞中CD31、vWF、α-SMAmRNA的表達 收集各組細胞,Trizol法提取細胞總RNA,分光光度儀測定總RNA濃度,采用Real-time PCR檢測各組細胞中CD31、vWF、α-SMAmRNA的相對表達量。CD31上游引物序列為5′-CTCCATCCTGTCGGGTAA-3′,下游引物序列為5′-TCATTCACGGTTTCTTCG-3′;vWF上游引物序列為5′-CTACGGCTTGCACTATTCA-3′,下游引物序列為5′-CCAGACACTTGCGTTCATC-3′;α-SMA上游引物序列為5′-GGGCATCCACGAAACCACCT-3′,下游引物序列為5′-GAGCCGCCGATCCAGACAGA-3′;內(nèi)參照β-actin上游引物序列為5′-GGAGATTACTGCCCTGGCTCCTAGC-3′,下游引物序列為5′-GGCCGGACTCATCGTACTCCTGCTT-3′。反應(yīng)條件為94 ℃預(yù)變性5 min,94 ℃變性15 s、60 ℃退火及延伸50 s,共40個循環(huán)。反應(yīng)結(jié)束后進行溶解曲線分析。以β-actin為內(nèi)參,采用2-ΔΔCt法計算基因的相對表達量。
1.2.6Western blot檢測細胞中Shh、Twist1、VEGF、MMP2蛋白的表達 收集各組細胞,預(yù)冷PBS漂洗3次,加入適當體積的蛋白裂解液,抽提細胞總蛋白。BCA法測定蛋白濃度并定量,以SDS-PAGE凝膠電泳分離蛋白復(fù)合物,將轉(zhuǎn)印好的PVDF膜用質(zhì)量分數(shù)5%的脫脂奶粉室溫封閉1 h。分別加入Shh(1 ∶400)、Twist1(1 ∶500)、VEGF(1 ∶400)、MMP2(1 ∶1 000)一抗,4 ℃孵育過夜;孵育一抗后的PVDF膜用TBST緩沖液洗膜4次,5 min/次;繼續(xù)用HRP標記的山羊抗兔二抗(1 ∶5 000)37 ℃孵育45 min,TBST緩沖液洗膜6次,每次5 min。最后加入ECL化學(xué)發(fā)光液顯色,用凝膠圖處理系統(tǒng)(Gel-Pro-Analyzer)軟件分析目標條帶的光密度值。
劃痕實驗檢測各組細胞的遷移能力,結(jié)果如圖1和表1所示。與空白對照組比較,模型組細胞的遷移率升高(P<0.05);與模型組比較,Shh抑制劑組及siRNA-Twist1組細胞的遷移率降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。
圖1 各組細胞的遷移情況(100×)Fig.1 The migration ability of cells(100×)
表1 各組細胞的遷移率比較Tab.1 The migration rate of
小管形成實驗檢測各組細胞的血管生成能力。如表2所示,與空白對照組比較,模型組細胞形成的管腔數(shù)明顯增多,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);與模型組比較,經(jīng)Shh抑制劑處理或干擾Twist1后,細胞形成的管腔數(shù)明顯減少,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。
圖2 各組細胞的成管情況(100×)Fig.2 The Tube formation of cells in each group(100×)
表2 各組細胞的管腔形成數(shù)目比較Tab.2 Number of luminal formation
與模型組比較,Shh抑制劑處理或干擾Twist1可上調(diào)CD31、vWFmRNA的表達,下調(diào)α-SMAmRNA的表達,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表3。
表3 各組細胞CD31、vWF及α-SMA mRNA相對表達水平Tab.3 Expression of CD31,vWF, and α-SMA mRNA in each
Western blot檢測結(jié)果顯示,與空白對照組相比,模型組Shh、Twist1、VEGF及MMP2蛋白的表達水平上調(diào),差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);與模型組比較,Shh抑制劑組和siRNA-Twist1組細胞中Shh、Twist1、VEGF及MMP2蛋白的表達水平下調(diào),差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見圖3和表4。
圖3 各組細胞Shh、Twist1、VEGF及MMP2蛋白電泳結(jié)果Fig.3 Protein electrophoresis images of Shh, Twist1, VEGF, and MMP2 in each group
表4 各組細胞Shh、Twist1、VEGF及MMP2蛋白相對表達水平Tab.4 Expression of Shh、Twist1、VEGF、MMP2 proteins in each
PAH是一種破壞性極強的心肺疾病,發(fā)病率及死亡率均較高[10]。目前,PAH的發(fā)病機制尚未完全闡明,現(xiàn)認為炎癥、低氧、氧化應(yīng)激等因素均可能導(dǎo)致肺動脈內(nèi)皮細胞受損,引起肺血管重構(gòu),進而導(dǎo)致肺動脈腔隙狹窄甚至完全堵塞[11]。
EndMT是PAH發(fā)生時肺動脈血管重構(gòu)的主要因素,EndMT會加劇肺血管重構(gòu)及PAH進程[12]。因此,抑制EndMT、恢復(fù)EC的正常功能可有效治療PAH。
內(nèi)皮細胞發(fā)生EndMT的主要特征變化為間質(zhì)細胞標志物α-SMA表達增加,內(nèi)皮細胞標志物CD31及vWF表達下調(diào)[3]。本研究結(jié)果顯示,經(jīng)缺氧誘導(dǎo)后,肺動脈內(nèi)皮細胞中α-SMAmRNA的表達上調(diào),CD31及vWFmRNA的表達降低,說明細胞發(fā)生EndMT,符合PAH的臨床病理特征[13]。
Shh作為HH蛋白家族中重要一員,是調(diào)節(jié)細胞生長發(fā)育的重要信號通路。激活Shh可促進細胞遷移及上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化[14-15]。此外,Shh信號通路還可通過促進血管因子的釋放,增強血管再生。在胃癌發(fā)病進程中,抑制Shh/Gli1通路可下調(diào)Twist1的表達,提示Shh對Twist1存在調(diào)控作用[16]。Twist1是誘導(dǎo)EndMT的常見轉(zhuǎn)錄因子,抑制E-cadherin的表達,促進EndMT的發(fā)生[17]。研究顯示,缺氧處理的肺微血管內(nèi)皮細胞中CD31的表達顯著減少,α-SMA表達顯著增加,其作用機制可能是Twist1的激活誘導(dǎo)了EndMT的發(fā)生[18]。本研究結(jié)果表明,抑制Shh/干擾Twist1表達均能上調(diào)CD31及vWFmRNA的水平,降低α-SMAmRNA的表達,具有抑制EndMT的作用。
VEGF是促進血管新生重要的細胞因子,可促進血管內(nèi)皮細胞激活、遷移及血管形成[19-20]。MMP2是基質(zhì)蛋白酶(MMPs)家族中一種明膠酶,參與血管生成過程[21]。本研究結(jié)果顯示,缺氧誘導(dǎo)后,肺動脈內(nèi)皮細胞中VEGF和MMP2蛋白表達水平顯著上升,與趙海燕等[22]的研究結(jié)果一致。研究顯示,Shh信號通路及Twist1可通過直接或間接上調(diào)VEGF及MMP2的表達[23-24],促進血管形成[21]。抑制Shh/Twist1蛋白的表達可降低血管再生及細胞轉(zhuǎn)移[25-26]。本研究結(jié)果表明,當抑制Shh/干擾Twist1表達后,細胞中VEGF、MMP2蛋白表達下調(diào),肺動脈內(nèi)皮細胞的血管生成能力減弱,使缺氧誘導(dǎo)的PAH得到明顯改善。
綜上所述,降低Shh/Twist1的表達可有效抑制抑制肺動脈內(nèi)皮細胞發(fā)生EndMT,改善肺動脈血管重塑。