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    花生果腐病致病真菌的分離及抗性種質(zhì)資源鑒定

    2022-02-08 11:58:38朱立飛張初署唐月異韋瀟王冕于強宋福榮張建成
    山東農(nóng)業(yè)科學(xué) 2022年12期
    關(guān)鍵詞:花生果子葉抗病

    朱立飛,張初署,唐月異,韋瀟,王冕,于強,宋福榮,張建成

    (1.山東省花生研究所/農(nóng)業(yè)農(nóng)村部花生生物學(xué)與遺傳育種重點實驗室,山東 青島 266100;2.遼寧工程技術(shù)大學(xué),遼寧 阜新 123000;3.青島天祥食品集團有限公司,山東 青島 266100)

    花生(Arachis hypogaeaL.)是一種地上開花、地下結(jié)果的喜溫豆科作物,富含蛋白和油脂,是世界范圍內(nèi)廣泛種植的油料和經(jīng)濟作物。我國是花生生產(chǎn)和消費大國,花生總產(chǎn)量和出口量均占世界第一[1]?;ㄉm宜種植在疏松的沙土地上,適應(yīng)性較強,但其生長過程中土傳病害種類較多。已報道的花生土壤侵染性病害有多種,包括真菌性病害、細菌性病害和線蟲病害等。其中真菌病害主要有莖腐病、根腐病、果腐病等。

    花生果腐病又稱“爛果病”。發(fā)病時,花生莢果果皮先出現(xiàn)深褐色的病斑,隨后病斑逐漸擴展到整個莢果,最終變黑、腐爛,不同發(fā)育階段的莢果均可受害。此外,果柄與莢果的結(jié)合部容易染病,發(fā)病后果柄與莢果結(jié)合不牢固,收獲時極易落果[2],花生籽仁也會發(fā)黑霉爛,嚴重影響花生的產(chǎn)量和品質(zhì)。該病2009年在河北新樂、定州、行唐和河南濮陽及山東部分地區(qū)造成大幅減產(chǎn)[3]。近年來此病在我國北方產(chǎn)區(qū)呈連年加重之勢,已成為花生生產(chǎn)上的主要病害,對花生產(chǎn)量和品質(zhì)構(gòu)成嚴重威脅。

    花生果腐病的病原是復(fù)合病原(peanut pod rot complex),包括病原真菌、植物寄生線蟲和土壤螨類等[4]。Frank[5]在1968年首次鑒定了花生爛果病的病原菌是群結(jié)腐霉(Pythium myriotylum),而后分離出多種病原真菌。Garcia[6]在1975年證實,花生果莢埋在含有腐霉菌、鐮刀菌和根結(jié)線蟲的土壤中爛果更為嚴重。Shew等[7]在1979年證實,超過50%的花生莢果與伯氏嗜木螨屬(Caloglyphus)螨蟲有關(guān),土傳螨顯著增加花生果腐病的發(fā)病率。Hollowell等[8]通過田間調(diào)查分離出絲核菌(Rhizoctonia)、腐霉菌(Pythium)和花生黑腐病菌(Cylindrocladium paraasiticum)等5種真菌。Cilliers[9]發(fā)現(xiàn),南非花生果腐病病原是Chalara elegans。利比亞果腐病病原為腐皮鐮刀菌(Fusarium solani)及該屬其它種[10]。此外,Crous等[11]發(fā)現(xiàn)枝雙孢霉屬(Cylindrocladium)是導(dǎo)致花生果腐病的病原菌,Lombard等[12]在2009年分離得到該病菌,并于2010年對由Cylindrocladium引起的植物各種病害進行了統(tǒng)計分析[13]。

    花生果腐病的病原復(fù)雜致使防控困難[14]。殺菌劑是農(nóng)業(yè)防控果腐病的手段之一,但是這些殺菌劑都是針對腐霉菌和絲核菌等引起的花生果腐病,而對于其他真菌,例如鐮孢菌、糞殼菌等的防效未見報道??共∮N是最經(jīng)濟、安全有效的花生果腐病防控手段。已有研究表明,普通型花生更易感染花生果腐病,而珍珠豆型花生品種“Toalson”對于腐霉菌(Pythium)和立枯絲核菌(Rhizoctonia solani)具有顯著抗性,花生品系Georgia Browne對立枯絲核菌也有一定抗性[15],但是這種抗性花生種質(zhì)資源較少。因此花生果腐病病原真菌的篩選、培養(yǎng)和致病性研究尤為重要。

    本研究以花育917為試驗材料,從發(fā)生花生果腐病的籽仁中分離和鑒定出一株真菌(PPRF-05),結(jié)合形態(tài)學(xué)觀察及ITS序列分析對菌種進行鑒定,并對本課題組保存的花生資源和突變體材料進行抗病鑒定,以期為開展花生果腐病抗病機理研究和育種提供理論基礎(chǔ)和種質(zhì)材料。

    1 材料與方法

    1.1 試驗材料

    供試花生品種均為本實驗室育成并保存。花生離體組織取自花育917。

    1.2 供試菌株的分離

    將發(fā)生花生果腐病的莢果去掉外殼,發(fā)黃發(fā)黑籽仁浸泡于50 mL PDA液體培養(yǎng)基中,25℃過夜培養(yǎng)后倒掉籽仁,用脫脂棉過濾培養(yǎng)基。將過濾后的培養(yǎng)基3 000×g離心10 min后棄液體培養(yǎng)基,2 mL PDA培養(yǎng)基重懸菌體,后用涂抹法純化菌體至單菌落。

    1.3 菌種鑒定

    使用通用引物ITS5:5′-ACCCGCTGAACTTAAGC-3′,ITS4:5′-BTCCTGAGGGAAACTTCG-3′進行ITS序列擴增[16],選擇單一明亮的條帶送生工生物工程(上海)股份有限公司進行測序,利用BLAST進行序列比對。

    1.4 花生各離體組織接菌

    種子消毒:75%乙醇浸泡5 min,5%次氯酸鈉浸泡10 min,無菌水沖洗5~6遍,清水浸泡8 h,后置于水培培養(yǎng)箱中,25℃培養(yǎng)至四葉期。

    離體組織的獲得:在超凈工作臺中,無菌水沖洗幼苗,滅菌剪刀剪下葉片、莖和根備用。子葉取自二葉期幼苗。將各種離體組織置于培養(yǎng)皿中浸濕的棉花上培養(yǎng)2 d備用。

    接種:將花生不同組織置于超凈工作臺中,先用接種針輕輕劃傷花生組織表面,然后將直徑0.5 cm的菌餅置于傷口處,培養(yǎng)20 d,以不接種致病菌作為對照組。每組2個重復(fù),每個試驗重復(fù)3次。

    1.5 花生果腐病感-抗模型的建立

    參考王冕等[17]的方法。不同品種均取飽滿、健康、無霉變的鮮種子,平分為兩份,一份直接接種果腐病病原菌,另一份進行培育并在幼苗子葉上接種病原菌。每天記錄鮮種子和幼苗子葉的發(fā)病率、病害嚴重程度以及病斑大小,對種子進行抗病分級。

    鮮種子接種5 d出現(xiàn)病斑,發(fā)病率90%以上,接種點腐爛,病斑直徑0.5 cm以上為易感病(HS)品種;接種5 d出現(xiàn)病斑,發(fā)病率在70%~90%,接種點發(fā)黑,病斑直徑0.2~0.5 cm為感病(S)品種;接種7 d無病斑,發(fā)病率在10%~20%,接種發(fā)黃為抗病(R)品種;接種7 d無病斑,發(fā)病率在10%以下,接種點無變化,種子可以正常萌發(fā)為高抗病(HR)品種。

    統(tǒng)計不同感抗病品種鮮種子對應(yīng)的花生幼苗子葉發(fā)病情況,將對應(yīng)的幼苗子葉發(fā)病情況作為花生果腐病感-抗模型。

    易感病(HS):接種5 d出現(xiàn)病斑,發(fā)病率90%及以上,子葉整體發(fā)黑,接種點腐爛,病斑直徑1.0 cm以上;感病(S):接種5 d出現(xiàn)病斑,發(fā)病率在70%~90%,子葉整體發(fā)黃,接種點發(fā)黑,病斑直徑0.3~1.0 cm;抗病(R):發(fā)病率在10%~20%,接種點發(fā)黃;高抗病(HR):發(fā)病率在10%以下,接種點無變化,莖部正常生長。

    1.6 花生抗病種質(zhì)資源的篩選

    將花生種子放在無菌水中浸泡8 h后鋪于平皿上培養(yǎng)至露白,水培至4片真葉,幼苗全長10~15 cm。將幼苗用無菌水洗凈,取花生子葉置于濕棉花上,25℃光照培養(yǎng)箱中光照16 h、黑暗8 h培養(yǎng)2 d待用。接菌后培養(yǎng)20 d,以不接種致病菌作為對照組,每天記錄子葉的發(fā)病率、病害嚴重程度以及病斑大小。導(dǎo)入花生果腐病感-抗模型中,篩選抗病品種。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 菌株P(guān)PRF-05的分子生物學(xué)鑒定

    從發(fā)生花生果腐病籽仁中分離出一株菌株P(guān)PRF-05,對其ITS區(qū)域進行測序(圖1),根據(jù)Blastn結(jié)果進行序列注釋,并提交到GenBank上注冊,序列號:MH368499。其ITS序列經(jīng)比對與Fusarium oxysporum相似度為100%,確定該菌為尖孢鐮刀菌,現(xiàn)保藏于中國微生物菌種保藏管理委員會普通微生物中心,保藏編號為CGMCC No.18130。

    圖1 菌株P(guān)PRF-05的ITS序列

    2.2 菌株P(guān)PRF-05的形態(tài)特征

    PPRF-05接種在PDA培養(yǎng)基上,氣生菌絲為白色絮狀,隨著培養(yǎng)時間增加,培養(yǎng)基質(zhì)由紅色轉(zhuǎn)為紫紅色(圖2A);老熟菌絲上產(chǎn)生許多直徑為1.5 mm的疏松絮狀菌核,及大型鐮刀形分生孢子和小型橢圓形分生孢子(圖2B)。

    圖2 菌株P(guān)PRF-05的形態(tài)特征

    2.3 花生各離體組織接種PPRF-05后的癥狀

    接種3 d后,花生各組織表現(xiàn)出發(fā)黃、發(fā)黑等果腐病癥狀。接種7 d后,花生莖略有發(fā)黃、發(fā)紫,與對照相比沒有明顯變化(圖3A);子葉接種位置明顯腐爛,并向未接種位置擴散(圖3B);根系主根明顯發(fā)黑,并向未接種位置擴散,對照根系發(fā)黃(圖3C);葉片在接種7 d后出現(xiàn)病斑、發(fā)黃并向未接種位置擴散(圖3D);此外,PPRF-05菌株可以侵染花生種子的任一發(fā)育階段(圖3E)。

    圖3 花生各離體組織接種PPRF-05后的癥狀

    2.4 花生果腐病感-抗模型的建立

    接種5 d后,種子發(fā)病情況如圖4所示。種子抗病分級情況及對應(yīng)幼苗子葉發(fā)病情況如表1、表2所示,以此作為花生果腐病感-抗模型。

    表1 鮮種子抗病性分級

    表2 幼苗子葉感病統(tǒng)計

    圖4 鮮種子發(fā)病情況

    表2(續(xù))

    2.5 花生種質(zhì)資源鑒定

    用上述感-抗模型對種質(zhì)資源進行抗果腐病篩選鑒定,結(jié)果顯示:花育36和花育915為易感品種;花育20和花育24為感病品種;花育916和花育50為抗病品種;T1611和R18-4為高抗品系(表3)。

    表3 種質(zhì)資源抗病分級

    表3(續(xù))

    3 討論與結(jié)論

    花生果腐病的病原復(fù)雜多樣,Csinos[18]在1986年分離出Rhizoctonia、Pythium和Cylindrocladium等6種真菌,同時明確不同地域或同一地域不同年份的病原微生物組成存在差異;另外土壤環(huán)境因素的改變也可能加重果腐病的發(fā)生,甚至某些營養(yǎng)元素的改變會導(dǎo)致果腐病的發(fā)生。王傳堂等[3]利用分子克隆技術(shù),發(fā)現(xiàn)萊西農(nóng)場的果腐病與真菌感染有關(guān),并且鐮刀菌可能是主要病原。李術(shù)臣等[19]研究發(fā)現(xiàn),在中國臺灣地區(qū)花生果腐病的主要病原有Fusarium solani、Rhizoctionia solani和Pythium myriotylum及寄生性線蟲等;河北省病原種類與其基本一致,都是多真菌病害共同作用的結(jié)果。本研究分離得到的PPRF-05菌株,ITS區(qū)測序表明其屬于鐮刀菌屬。

    感染果腐病的花生植株地上部與正常植株無差異,但莢果發(fā)黑腐爛,不易發(fā)現(xiàn)[20]。病害嚴重的植株莖葉濃綠,收獲期無明顯落葉現(xiàn)象,秧苗不死,根系繁茂但表皮發(fā)黑,但莢果幾乎全部腐爛[21]。本研究將PPRF-05菌株接種花生各離體組織,根、子葉出現(xiàn)明顯的發(fā)黑腐爛現(xiàn)象,莖和葉片出現(xiàn)病斑,但癥狀較輕。與果腐病的發(fā)病癥狀一致,進一步證實PPRF-05菌株是果腐病的主要致病菌。

    目前,關(guān)于花生果腐病的研究主要集中在病原菌的分離鑒定及其致病性,在抗果腐病花生種質(zhì)資源篩選鑒定方面相對較少。2018年何美敬等[22]通過田間自然發(fā)病對引進的77份美國資源和39份國內(nèi)資源進行連續(xù)2年的鑒定;于靜等[23]采用自然病圃鑒定法,對萊西試驗站76個花生品種(系)進行了花生果腐病抗性評價。我國對花生果腐病的抗性種質(zhì)資源篩選采用的是Wheeler等[24]的果腐病等級劃分法以及何美敬等[22]建立的田間抗性評價體系。本研究建立的離體接種快速篩選方法,能夠在實驗室內(nèi)簡潔、高效地篩選抗病品種。下一步將對篩選所得花生品種進行田間試驗,結(jié)合何美敬等[22]引入的田間抗性評價體系,進一步驗證離體接種快速篩選方法的可行性,為抗果腐病花生品種快速選育提供新路徑。

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