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    部分春大豆主栽品種葉綠素含量全基因組關(guān)聯(lián)分析

    2022-02-07 06:46:56張大勇王象然吳雨恒赫晨宇楊柳賈璐莊靜而
    關(guān)鍵詞:葉綠素染色體基因組

    張大勇,王象然,2,吳雨恒,赫晨宇,楊柳,賈璐,莊靜而

    (1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院,哈爾濱 150030;2.黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院佳木斯分院/國家大豆產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系佳木斯綜合試驗站/三江平原主要作物育種栽培重點實驗室,黑龍江 佳木斯 154007)

    大豆是我國主要油料及經(jīng)濟作物,富含優(yōu)質(zhì)植物蛋白及油脂,是食品加工及畜禽飼料重要來源[1]。其品質(zhì)改善和產(chǎn)量提高是當代大豆育種家共同育種目標。光合作用是促使作物干物質(zhì)形成主要途徑,將二氧化碳和水同化并生成有機物同時釋放氧氣[2]。葉綠素是光合作用關(guān)鍵色素,對作物產(chǎn)量形成具有重要影響[3]。

    大豆中葉綠素含量是影響光合速率重要因素,二者呈正相關(guān)趨勢[4]。而光合速率與產(chǎn)量呈顯著正相關(guān)[5],因此葉綠素含量測定對預(yù)測和提高大豆產(chǎn)量至關(guān)重要。崔世友等利用151個RIL家系在4個不同生育時期下結(jié)合大豆籽粒產(chǎn)量分析葉綠素含量,結(jié)果發(fā)現(xiàn)在生育后期大豆葉綠素含量與籽粒產(chǎn)量呈極顯著正相關(guān)[6]。張恒善利用400多份大豆品種,測定其葉綠素含量(a+b),按年度、熟期分組與產(chǎn)量作相關(guān)分析,結(jié)果表明各組相關(guān)程度不同,總體呈正相關(guān)趨勢[7]。全基因組關(guān)聯(lián)分析(Genome wide association analysis,GWAS)是目前發(fā)現(xiàn)復(fù)雜農(nóng)藝性狀基因變異的有效新策略。Rish等首次提出全基因組關(guān)聯(lián)分析概念[8],在糧食、經(jīng)濟、油料等作物中得到廣泛運用[9]。薦紅舉等以588份重測序油菜種質(zhì)資源為材料,連續(xù)兩年測定其苗期葉綠素含量并通過全基因組關(guān)聯(lián)分析最終得到23個候選基因,其中4個基因參與葉綠素合成途徑,BnaA10g02050D(BnaPOR C)基因與氧化還原酶活性有關(guān),編碼原葉綠素氧化還原酶;BnaC02g01240D(BnaHEMC)基因編碼膽色素原脫氨酶參與血紅素生物合成;BnaC05g38600D(Bna-HEME2)基因與血紅素代謝相關(guān);BnaC09g54390D(BnaHEMG2)基因與氧化還原酶活性有關(guān),編碼原卟啉原氧化酶2[10]。史大坤等以538份玉米自交系構(gòu)成的關(guān)聯(lián)群體為研究對象,利用GWAS解析玉米葉綠素含量遺傳基礎(chǔ),發(fā)現(xiàn)兩個基因參與葉綠素代謝,GRMZM2G178859(COX10)基因參與血紅素生物合成過程;GRMZM2G168858(CPR2)基因具有鐵氧還蛋白還原酶型FAD結(jié)合域,編碼NADPH-細胞色素p450還原酶[11]。樊慶琦等在缺鐵脅迫下對小麥苗期葉片葉綠素含量進行全基因組關(guān)聯(lián)分析,在對照未受脅迫條件下得到23個顯著SNP位點,并認為在3B染色體上發(fā)現(xiàn)4個顯著SNP與葉綠素合成相關(guān)[12]。

    全基因組關(guān)聯(lián)分析在大豆遺傳分析中應(yīng)用日益廣泛[13]。Wen等對兩個大豆群體進行基因分型共獲得52 041個SNP,通過對單株莢數(shù)進行全基因組關(guān)聯(lián)分析檢測到1個顯著相關(guān)SNP(Gm01-55794390)[14]。張友誼以224份大豆微核心種質(zhì)為試驗材料,對多個與產(chǎn)量有關(guān)性狀進行全基因組關(guān)聯(lián)分析,發(fā)現(xiàn)與產(chǎn)量相關(guān)聯(lián)的36個基因位點[15]。

    近年來,學(xué)者多利用全基因組關(guān)聯(lián)分析進行大豆抗性性狀及產(chǎn)量方面的研究,對大豆葉綠素含量遺傳基礎(chǔ)方面研究也僅限基于雙親本分離群體進行QTL定位分析[16]。由此可見,除大多數(shù)在生理生化水平上測定大豆葉綠素含量外,利用全基因組關(guān)聯(lián)分析對大豆葉綠素相關(guān)基因定位研究較少。

    本研究以196份國內(nèi)外大豆種質(zhì)資源組成的自然群體為試驗材料,測定大豆葉片葉綠素含量,并結(jié)合高密度SNP標記,運用混合線性模型(Mixed linear model)作全基因組關(guān)聯(lián)分析,對影響大豆葉綠素含量相關(guān)基因進行預(yù)測與篩選,為探究大豆葉綠素含量遺傳機理提供理論參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.2 方法

    1.2.1 田間試驗方法

    該群體于2021年5月種植于黑龍江省哈爾濱市東北農(nóng)業(yè)大學(xué)向陽試驗示范基地,每小區(qū)60行,行長3 m,行距65 cm,株距6 cm,同當?shù)卮筇锾镩g管理。

    1.2.2 表型數(shù)據(jù)采集

    對該自然群體每一個株行中隨機選取第五片三出復(fù)葉完全展開且長勢相同的連續(xù)5株,選取頂部第四片三出復(fù)葉中間小葉,利用慧諾瑞德(北京)科技有限公司多功能植物測量儀MultispeQ在其完全伸展的葉片中間部位測定SPAD值(葉綠素相對含量),重復(fù)3次,3次測量均值作為該葉片葉綠素含量;5株對應(yīng)葉片葉綠素含量均值作為該品種對應(yīng)葉片葉綠素含量,并用于后續(xù)表型一般統(tǒng)計分析和全基因組關(guān)聯(lián)分析。

    續(xù)表

    1.2.3 數(shù)據(jù)處理與分析

    利用Excel 2016對大豆自然群體葉綠素含量統(tǒng)計分析并剔除離群值,利用SPSS 22.0分析基因相對表達量數(shù)據(jù)并作獨立樣本T檢驗。

    1.2.4 基因型鑒定

    以往學(xué)者將孟子性善論理解為“孟子認為人性是善的”,實際上《孟子》一書中只說“孟子道性善”“言性善”,而后者是不能等同于“人性是善的”。如果一定要用命題表述的話,也應(yīng)表述為:人皆有善性;人應(yīng)當以此善性為性;人的價值和意義即在于充分擴充與實現(xiàn)自己的性。

    材料通過Illumina HiSeqTM測序平臺進行測序,流程按照Illumina公司提供標準協(xié)議執(zhí)行。對獲得的59 071個SNP標記按等位基因頻率條件(maf)<0.05進行質(zhì)量篩選共獲得52 391個高質(zhì)量SNP。利用Haploview 4.2軟件對質(zhì)控后SNP進行連鎖不平衡分析,劃分單倍型塊。

    1.2.5 群體結(jié)構(gòu)親緣關(guān)系分析

    在RStudio中采用GAPIT軟件[17]對該自然群體進行群體結(jié)構(gòu)、親緣關(guān)系分析。

    1.2.6 全基因組關(guān)聯(lián)分析

    GWAS分析在RStudio中利用GAPIT軟件MLM模型作分析[17]。

    1.2.7 候選基因篩選

    根據(jù)大豆參考基因組,在獲得葉片葉綠素含量顯著關(guān)聯(lián)的SNP標記上下游各100 kb內(nèi)搜索基因,利用網(wǎng)站(https://www.soybase.org/)對所搜索到的基因進行GO分子功能注釋,利用網(wǎng)站(https://www.genome.jp/kegg/pathway.html)對搜索到的基因進行KEGG途徑注釋,將已獲得基因與擬南芥基因進行序列對比(https://phytozome-next.jgi.doe.gov/),進行功能注釋以篩選與葉綠素含量相關(guān)的候選基因。

    1.2.8 表達量分析

    設(shè)計候選基因的qRT-PCR引物序列(http://biodb.swu.edu.cn/qprimerdb),引物序列由睿博興科生物技術(shù)有限公司合成(見表1)。

    表1 葉綠素含量相關(guān)候選基因引物Table 1 Primers of candidate genes related to chlorophyll content

    根據(jù)各品種葉綠素含量,在葉綠素含量高低兩類極端材料中連續(xù)選擇各10個品種,選取苗期葉片提取RNA(Simgen公司UItra Pure Total RNA Extration Kit試劑盒),設(shè)置3次生物學(xué)重復(fù)。將提取的RNA反轉(zhuǎn)錄合成cDNA(Simgen公司cDNA第一鏈合成試劑盒)。使用Gene Copoeia公司BlazeTaqTM SYBR?Green qPCR Mix 2.0試劑盒進行候選基因相對表達量驗證。每個樣品設(shè)置3次重復(fù),在Bio-Rad CFX96定量PCR儀上進行qRT-PCR擴增。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 大豆自然群體葉綠素含量表型分析

    對196份大豆品種構(gòu)成的自然群體,隨機選取長勢相同的連續(xù)5株,選取頂部第四片三出復(fù)葉的中間小葉,測定其完全伸展的葉片中間部位葉綠素含量。該自然群體綠素平均含量為49.37,含量變化范圍在39.48~58.57,標準差為3.12,變異系數(shù)為6.31%,偏度值和峰度值為-0.26和0.16,并且偏度值和峰度值絕對值均小于1,說明葉綠素含量出現(xiàn)連續(xù)正態(tài)分布,符合多基因控制的數(shù)量性狀特征,結(jié)果如圖1所示。

    圖1 大豆自然群體葉片葉綠素含量頻次分布Fig.1 Frequency distribution of chlorophyll content in leaves of soybean natural population

    2.2 大豆自然群體結(jié)構(gòu)評價

    分析該自然群體的群體結(jié)構(gòu),PCA主成分分析結(jié)果表明該自然群體無明顯分層,種質(zhì)間親緣關(guān)系均衡,從親緣關(guān)系Kinship圖也可看出,群體間無顯著群體結(jié)構(gòu)。選前3個主成分作協(xié)變量對群體結(jié)構(gòu)進行校正,結(jié)果如圖2所示。

    圖2 主成分和大豆遺傳數(shù)據(jù)親緣關(guān)系分析Fig.2 Principal component and kinship analyses of soybean genetic data

    2.3 大豆自然群體葉綠素含量全基因組關(guān)聯(lián)分析

    利用GAPIT對該自然群體葉綠素含量采用MLM模型進行全基因組關(guān)聯(lián)分析,并繪制Manhattan圖與QQ-Plot,結(jié)果如圖3所示。

    圖3 葉綠素含量全基因組關(guān)聯(lián)分析Manhattan圖與QQ-Plot Fig.3 Manhattan graph and QQ-Plot of genome wide association analysis on chlorophyll content

    設(shè)P=0.5/52 391為顯著關(guān)聯(lián)SNP閾值,共篩選得到顯著SNP共37個,分別位于2、3、4、7、10、13、16號染色體上。其中2號染色體上存在4個SNP;3號染色體上存在26個SNP;4號染色體上存在1個SNP;7號染色體上存在2個SNP;10號染色體上存在1個SNP;13號染色體上存在1個SNP;16號染色體上存在2個SNP,結(jié)合Block進行分類,結(jié)果見表2。

    表2 葉綠素含量顯著關(guān)聯(lián)SNP位點Table 2 SNP sites significantly associated with chlorophyll content

    2.4 大豆自然群體葉綠素含量候選基因預(yù)測

    對閾值以上SNP位點在其上下游各100 kb范圍內(nèi)根據(jù)大豆基因組數(shù)據(jù)庫搜索到基因194個,通過GO功能富集分析以及KEGG代謝通路富集分析,與擬南芥基因進行序列對比,根據(jù)前人研究的擬南芥同源基因功能,篩選出可能影響葉綠素含量基因11個,結(jié)果見表3。其中2號染色體1個;3號染色體2個;7號染色體3個;10號染色體3個;13號染色體1個;16號染色體1個。

    表3 葉綠素含量候選基因以及注釋信息Table 3 Candidate genes and annotation information for chlorophyll content

    2.5 候選基因熒光定量分析

    將篩選出的11個基因在葉綠素含量差異極端的兩類材料中驗證相對表達量,結(jié)果見表4。

    表4 品種名稱及葉綠素含量Table 4 Variety name and chlorophyll content

    結(jié)合T檢驗分析結(jié)果得出4個基因Glyma.02G185300、Glyma.03G085000、Glyma.10G259900、Glyma.16G037100在兩類材料中具有顯著差異,結(jié)果如圖4所示。

    圖4 大豆葉綠素含量候選基因定量分析Fig.4 Quantitative analysis of candidate genes for soybean chlorophyll content

    相對于低葉綠素含量材料中,4個基因在高葉綠素含量材料中基因表達量相對較高。其中包括Glyma.10G259900編碼TXND9與細胞氧化還原穩(wěn)態(tài)相關(guān),介導(dǎo)四吡咯生物合成并參與葉綠素合成;Glyma.02G185300編碼葉綠體NTRC參與葉綠素代謝與光周期生長調(diào)控。

    3 討論與結(jié)論

    葉綠素合成代謝過程十分復(fù)雜,本研究以196份國內(nèi)外大豆品種組成的自然群體為試驗材料,結(jié)合高密度SNP位點,對葉綠素含量進行全基因組關(guān)聯(lián)分析,通過GO功能富集分析、KEGG代謝通路富集分析、基因功能注釋以及qRT-PCR篩選鑒定出4個與大豆葉綠素含量相關(guān)候選基因。葉綠素屬于四吡咯物質(zhì),基因Glyma.10G259900具有硫氧還蛋白結(jié)構(gòu)域,編碼硫氧還蛋白,存在于從胞膜到類囊體腔的所有葉綠體隔室中,介導(dǎo)四吡咯生物合成,直接參與葉綠素代謝[18],這一研究結(jié)果與史大坤等研究理論相符合[11]?;騁lyma.02G185300具有硫氧還蛋白結(jié)構(gòu)域,編碼葉綠體NADPH硫氧還蛋白還原酶(NTRC),NTRC是一種高效氧化還原系統(tǒng),為保護植物葉綠體免受氧化損傷,可控制包括葉綠素生物合成的關(guān)鍵代謝和調(diào)節(jié)途徑,且與擬南芥光周期生長控制之間具有聯(lián)系[19-20],其他作物中與該基因功能及結(jié)構(gòu)相似的相關(guān)候選基因尚未見報道。這兩個基因同屬于硫氧還蛋白(Trx)家族,研究表明該家族參與光合作用、葉綠素含量調(diào)控[21-22]?;騁lyma.16G037100屬于肽酶M50家族,編碼EGY1金屬蛋白酶,是葉綠體發(fā)育必需基因,參與葉綠體發(fā)育和光合作用過程,如影響捕光復(fù)合物I和II(Lhca和Lhcb)的葉綠素a/b結(jié)合蛋白的積累,該蛋白定位在葉綠體膜、類囊體膜上參與光捕獲[23],在其他作物中與之功能及結(jié)構(gòu)特征相似的相關(guān)候選基因尚未見報道。研究發(fā)現(xiàn),肽酶M50家族基因具有影響葉綠體發(fā)育以及葉綠素含量的功能[24]。在3號染色體上檢測到的編碼細胞色素P450的基因Glyma.03G085000(CYP82C4),細胞色素P450超家族(CYP)是一大類血紅素蛋白。血紅素與葉綠素是具有不同金屬元素的化合物,結(jié)構(gòu)與特征相似。CYP通過將氧氣還原為水(使用NADH或NADPH)催化有機物質(zhì)氧化,并與金屬攝取/轉(zhuǎn)運密切相關(guān)[25],這一結(jié)果與史大坤等在玉米中研究結(jié)果與葉綠素相關(guān)基因功能相似[11],有研究表明該基因家族在葉綠素含量調(diào)控方面發(fā)揮作用[26-27]。本研究利用全基因組關(guān)聯(lián)分析對影響大豆葉綠素含量基因進行預(yù)測,為探究大豆葉綠素含量遺傳機理提供理論參考。為進一步探究與大豆葉綠素含量相關(guān)候選基因,后期將對候選基因功能進行有效驗證,為大豆分子育種提供有效依據(jù)。

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