絲狀真菌的轉(zhuǎn)錄調(diào)控啟動子及其功能研究進展

張浩東，趙清梅，薛佳祺，于 鯤，崔省委，余永濤

（1.寧夏大學(xué) 農(nóng)學(xué)院，寧夏 銀川 750021；2.北方民族大學(xué) 生物科學(xué)與工程學(xué)院，寧夏 銀川 750021；3.國家民委發(fā)酵釀造工程生物技術(shù)重點實驗室，寧夏 銀川 750021）

絲狀真菌統(tǒng)稱為霉菌，多為真菌界子囊菌門子囊菌亞門真菌[1]，是以腐生或寄生的形式普遍存在于自然環(huán)境中的低等真核生物，廣泛分布在空氣、土壤、水和動植物中。絲狀真菌具有來源廣泛、易于工業(yè)化生產(chǎn)、種類豐富以及功能多樣等特點，因此被廣泛應(yīng)用于科研和生產(chǎn)[2]。在醫(yī)療衛(wèi)生領(lǐng)域，利用產(chǎn)黃青霉（Penicillium chrysogenum）合成青霉素[3]，利用土曲霉（Aspergillus terreus）合成降血脂藥物洛伐他汀等[4]。在食品加工行業(yè)，常利用絲狀真菌制作糕點、豆制品等[5]。在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中，條形柄銹菌（Puccinia striiformis）、玉米大斑菌（Setosphaeria turcica）等絲狀真菌會引起小麥、玉米等農(nóng)作物發(fā)生病害[6-7]。部分植物的內(nèi)生真菌會對人體及動物產(chǎn)生嚴(yán)重危害[8-9]。綜上所述，絲狀真菌與人和動物健康、工農(nóng)業(yè)生產(chǎn)、社會經(jīng)濟發(fā)展關(guān)系緊密，絲狀真菌的合理利用具有重要的社會經(jīng)濟價值。

絲狀真菌的轉(zhuǎn)錄調(diào)控是絲狀真菌及其開發(fā)利用研究的熱點。在絲狀真菌的基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控中，作為順式作用元件的啟動子發(fā)揮著重要作用。啟動子參與基因轉(zhuǎn)錄的起始，通過與轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合來調(diào)控基因轉(zhuǎn)錄活性。深入了解啟動子不僅能夠拓展啟動子的應(yīng)用，還有助于絲狀真菌基因表達調(diào)控機制及基因轉(zhuǎn)錄相關(guān)網(wǎng)絡(luò)調(diào)控研究[1]。岑由飛等[10]對Tri5和Ttri2啟動子功能進行研究，為Paramyrothecium roridum中單端孢霉烯毒素生物合成基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控的研究奠定了基礎(chǔ)；王小龍等[11]對畢赤酵母AOX1啟動子進行研究，初步提出Paox1在葡萄糖、甘油和甲醇的調(diào)控模型，為畢赤酵母AOX1啟動子的開發(fā)利用提供了參考。絲狀真菌啟動子被廣泛應(yīng)用于基因工程載體構(gòu)建、轉(zhuǎn)基因以及目的基因表達等方面[12]。本文對絲狀真菌啟動子分類、預(yù)測、篩選方法及功能研究進行綜述，以期為絲狀真菌啟動子以及基因表達調(diào)控研究提供參考。

1 絲狀真菌轉(zhuǎn)錄調(diào)控啟動子的分類

1.1 Ⅰ類、Ⅱ類和Ⅲ類啟動子

1.1.1 I類啟動子I類啟動子，又稱rRNA基因啟動子，可結(jié)合RNA聚合酶Ⅰ，參與rRNA前體基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控，其產(chǎn)物會被加工成成熟的5.8S rRNA、18S rRNA、28S rRNA[13]。Ⅰ類啟動子的結(jié)構(gòu)主要包括位于轉(zhuǎn)錄起始位點-45 bp至20 bp的核心啟動子元件和位于轉(zhuǎn)錄起始位點-156 bp至-107 bp的上游調(diào)控元件，在轉(zhuǎn)錄調(diào)控中發(fā)揮著重要作用，但該類啟動子保守性相對較差[14]。I類啟動子具有種屬差異性和高轉(zhuǎn)錄活性，常被應(yīng)于構(gòu)建病毒表達載體[15]。

1.1.2 Ⅱ類啟動子Ⅱ類啟動子結(jié)合RNA聚合酶Ⅱ，主要參與sn RNA和編碼蛋白質(zhì)基因的轉(zhuǎn)錄起始。該類啟動子結(jié)構(gòu)較為復(fù)雜，主要由基因近側(cè)啟動子和位于轉(zhuǎn)錄起始位點-200 bp內(nèi)的核心啟動子組成[16]。核心啟動子的結(jié)構(gòu)與功能多種多樣，含有不同的序列基序組成的保守元件，如TFⅡB識別元件、TATA box、CAAT box、起始子（Inr）、下游啟動子元件（DPE）等（表1）[17-21]。Ⅱ類啟動子的核心啟動子是調(diào)控基因轉(zhuǎn)錄的核心元件，在基因表達調(diào)控中發(fā)揮著重要作用[18]。

表1 核心啟動子元件組成及功能

1.1.3 Ⅲ類啟動子Ⅲ類啟動子結(jié)合RNA聚合酶Ⅲ，主要參與tRNA、ssRNA、snRNA和某些小分子RNA的轉(zhuǎn)錄調(diào)控[22]。Ⅲ類啟動子可分為基因內(nèi)啟動子和基因外啟動子，基因內(nèi)啟動子又分為Ⅰ型內(nèi)部啟動子和Ⅱ型內(nèi)部啟動子。Ⅰ型內(nèi)部啟動子含有分開的box A（序列為RGYNNRRYGG）和box C（序列為CGGTCGANNCC），Ⅰ型內(nèi)部啟動子僅存在于5S rRNA的基因中[23]。Ⅱ型內(nèi)部啟動子含有分開的box A和box B（序列為GA/TTCRANNC），tRNA啟動子為Ⅱ型內(nèi)部啟動子?；蛲鈫幼游挥谵D(zhuǎn)錄起始位點上游，含有3個上游元件，分別為TATA box、近次端序列元件（PSE）、八聚體OTC元件，目前僅在snRNA啟動子中發(fā)現(xiàn)了基因外啟動子[23]。

1.2 強啟動子和弱啟動子

根據(jù)啟動子的轉(zhuǎn)錄活性將其分為強啟動子和弱啟動子。有研究表明，里氏木霉能高效生產(chǎn)大量的纖維素酶[24]，是因為其啟動子與RNA聚合酶有較強的結(jié)合能力，能促進纖維素酶的高效表達。曲霉中也存在許多強啟動子，如磷酸丙糖異構(gòu)酶PtpiA啟動子、乙醛脫氫酶PadhA啟動子以及淀粉糖化酶PglaA啟動子等[25]，上述啟動子常用于提高目的蛋白的表達效率。弱啟動子轉(zhuǎn)錄起始能力相對較低，與RNA聚合酶結(jié)合能力較弱[26]。

1.3 組成型啟動子和誘導(dǎo)型啟動子

能使基因持續(xù)表達的啟動子叫做組成型啟動子，在基因表達調(diào)控中該類啟動子可使目的產(chǎn)物穩(wěn)定表達，不易受外界環(huán)境因素影響[27]。在絲狀真菌中存在許多組成型啟動子，如構(gòu)巢曲霉中的GpdA基因啟動子[28]、綠僵菌中PMagpd啟動子、木霉屬Pki1啟動子等均為組成型啟動子[1]。絲狀真菌組成型啟動子在基因工程中常用于異源基因的表達[29]。

能被誘導(dǎo)表達的啟動子叫做誘導(dǎo)型啟動子，該類啟動子在基因表達調(diào)控中會受到外界刺激或誘導(dǎo)因素的影響[27]。當(dāng)特定刺激或誘導(dǎo)因素存在時，誘導(dǎo)型啟動子會使其對應(yīng)基因的轉(zhuǎn)錄水平發(fā)生顯著變化，這些刺激或誘導(dǎo)因素包括碳源、環(huán)境因素、化學(xué)信號和其他因素[30]。研究者在絲狀真菌中也挖掘出許多誘導(dǎo)型啟動子，如曲霉屬的GlaA啟動子、里氏木霉中Cbh1啟動子、纖維二糖水解酶Cel7A啟動子、橡膠樹白粉病Wy195啟動子[31]、構(gòu)巢曲霉中AlcA啟動子[1]等。目前，人們利用AlcA啟動子已成功表達了多種異源基因蛋白[29]。

2 啟動子的預(yù)測

啟動子的預(yù)測主要是利用啟動子數(shù)據(jù)庫對某段序列進行對比和分析，從而判斷該序列是否存在啟動子并分析啟動子的各種結(jié)構(gòu)。啟動子因組成結(jié)構(gòu)和功能復(fù)雜，需要利用數(shù)據(jù)庫或軟件對其進行生物學(xué)信息分析。

在研究啟動子的結(jié)構(gòu)和功能前，首先要根據(jù)啟動子序列信息，利用生物學(xué)信息數(shù)據(jù)庫或者軟件對啟動子序列、啟動子核心區(qū)域、順式作用元件、轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點、CPG island等進行預(yù)測，為進一步明確絲狀真菌啟動子功能提供參考。啟動子結(jié)構(gòu)分析和功能預(yù)測常用的主要數(shù)據(jù)庫如下。

2.1 EPD數(shù)據(jù)庫

EPD數(shù)據(jù)庫（eukaryotic promoter database）（http://epd.vital-it.ch）由瑞士生物信息研究所建立，其中包含動物、植物、真菌、無脊椎動物等的RNA聚合酶Ⅱ型啟動子的序列注釋資源，還有經(jīng)實驗驗證的轉(zhuǎn)錄起始位點。近年，EPD數(shù)據(jù)庫被合并到了EPDnew數(shù)據(jù)庫中，涵蓋范圍更廣，真菌數(shù)據(jù)庫中收集到5 117個釀酒酵母類啟動子和4 802個粟酒裂殖酵母類啟動子，具有更高的精確度和覆蓋率。EPDnew數(shù)據(jù)庫與信號搜索分析（SSA）和ChIP-Seq數(shù)據(jù)庫關(guān)聯(lián)，可以作為DNA基序?qū)蚍治?、探索和下載與啟動子有關(guān)的功能基因組學(xué)數(shù)據(jù)的工具[32]。該數(shù)據(jù)庫操作簡單，輸入相關(guān)基因ID即可搜索到啟動子的有關(guān)信息。

2.2 TRRD數(shù)據(jù)庫

TRRD數(shù)據(jù)庫（transcription regulatory regions database）（http://wwwmgs.bionet.nsc.ru/mgs/gnw/trrd/）是一個獨特的并經(jīng)過實驗驗證的轉(zhuǎn)錄調(diào)控區(qū)數(shù)據(jù)庫，收集了真核基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控區(qū)的結(jié)構(gòu)和功能組織信息。通過該數(shù)據(jù)庫，可以查詢?nèi)?、動物、真菌等基因的轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點、啟動子、增強子和沉默子的位置及基因表達調(diào)控模式等信息。TRRD數(shù)據(jù)庫主要由TRRDGENES、TRRDLCR、TRRDUNITS、TRRSSITES、TRRDFACTORS、TRRDEXP和TRRDBIB 7個子數(shù)據(jù)庫構(gòu)成[33]。該數(shù)據(jù)庫操作簡單，不需注冊，用戶可根據(jù)自身需求選擇其中一個數(shù)據(jù)庫，填寫好相關(guān)信息后即可進行瀏覽或搜索。

2.3 TRANSFAC數(shù)據(jù)庫

TRANSFAC數(shù)據(jù)庫（http://www.gene-regulation.com/pub/databases.html）是真核生物轉(zhuǎn)錄調(diào)控數(shù)據(jù)庫，包括人、酵母菌、植物、鼠等真核生物轉(zhuǎn)錄因子及經(jīng)實驗驗證的轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點，由site、factor、cell、matrix、gene等多個數(shù)據(jù)表構(gòu)成。利用該數(shù)據(jù)庫能夠預(yù)測和分析啟動子和轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點。該數(shù)據(jù)庫分公開版和專業(yè)版，目前專業(yè)版包含48 098個真核生物轉(zhuǎn)錄因子、68 917個真核生物轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點以及453 601個真核生物啟動子等，數(shù)量比公開版更加充足[34-35]，但使用專業(yè)版需要支付昂貴的費用。由于公開版長時間未更新，使用公開版數(shù)據(jù)庫分析絲狀真菌啟動子可能會造成較大誤差。

2.4 JASPAR數(shù)據(jù)庫

JASPAR數(shù)據(jù)庫（http://jaspar.genereg.net/）包括整理的轉(zhuǎn)錄因子及結(jié)合位點，目前已更新到第8版，分為脊椎動物、線蟲、昆蟲、植物、真菌5類數(shù)據(jù)庫，包含184個真菌類轉(zhuǎn)錄因子的位置頻率矩陣[36]。該數(shù)據(jù)庫公開、免費使用，可用于真菌轉(zhuǎn)錄因子及結(jié)合位點的預(yù)測。

2.5 Plant CARE數(shù)據(jù)庫

Plant CARE數(shù)據(jù)庫（http://bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/）常用的功能是預(yù)測植物順式作用元件。輸入目的基因序列，需等待一段時間才能獲得預(yù)測結(jié)果。使用該數(shù)據(jù)庫預(yù)測絲狀真菌啟動子順式作用元件時可將其結(jié)果作為參考，并聯(lián)合多個數(shù)據(jù)庫共同分析。

2.6 Promoter 2.0 Prediction Server數(shù)據(jù)庫

Promoter 2.0 Prediction Server數(shù)據(jù)庫（http://www.cbs.dtu.dk/services/Promoter/）可用于預(yù)測啟動子所在的位置以及轉(zhuǎn)錄起始位點，預(yù)測分值越高，預(yù)測結(jié)果可信度越大。用戶只需提交或者輸入fasta格式的DNA序列，即可獲得預(yù)測結(jié)果，操作簡單、快捷。

2.7 Laboratory of Molecular Medicine數(shù)據(jù)庫

Laboratory of Molecular Medicine數(shù)據(jù)庫（https://www.urogene.org/cgi-bin/methprimer/methprimer.cgi）由北京中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院北京協(xié)和醫(yī)院維護，可以用于啟動子CPG island的預(yù)測及甲基化PCR引物的設(shè)計，操作方法簡單，輸入目的序列即可獲得結(jié)果。

由于目前專門用于絲狀真菌啟動子預(yù)測的數(shù)據(jù)庫較少，與啟動子有關(guān)的真核生物數(shù)據(jù)庫收錄的信息數(shù)量還不夠充足，部分?jǐn)?shù)據(jù)庫存在長時間未更新等問題，在對絲狀真菌啟動子進行預(yù)測或者生物信息學(xué)分析時，為減少誤差，可以使用多個數(shù)據(jù)庫進行聯(lián)合分析，再結(jié)合實驗方法對啟動子進一步驗證。

3 啟動子的篩選技術(shù)

啟動子是位于基因非編碼區(qū)5’端上游的特定DNA序列，通常在轉(zhuǎn)錄起始位點上游-100 bp至-1 000 bp內(nèi)。為了確定啟動子所在位置及其序列，常應(yīng)用啟動子捕獲技術(shù)、啟動子探針篩選技術(shù)、基因芯片技術(shù)、高通量測序等來挖掘、篩選啟動子[34,37]。

3.1 啟動子捕獲技術(shù)

啟動子捕獲技術(shù)又稱為啟動子陷阱技術(shù)。該技術(shù)不僅用于確定基因啟動子區(qū)域以及克隆啟動子，還可用于基因功能以及表達模式的研究。應(yīng)用啟動子捕獲技術(shù)時，首先需要構(gòu)建不含啟動子但是含有報告基因和標(biāo)記基因的啟動子捕獲載體，然后將捕獲載體正確插入到不同基因序列的外顯子中[38]。若報告基因能夠表達，則表明該序列中含有啟動子序列，以此來確定啟動子。該技術(shù)可獲得大量單基因突變體庫，但被捕獲的基因較難分離，插入的DNA序列具有偏向性[39]。鄧晟等[40]構(gòu)建雙向啟動子捕獲載體，成功確定了棉花黃萎病菌中6個基因的啟動子。劉小紅等[41]應(yīng)用該技術(shù)，成功構(gòu)建了稻瘟病菌突變體庫。

3.2 啟動子探針技術(shù)

啟動子探針技術(shù)由Rachael等[42]首次提出，他通過該技術(shù)構(gòu)建了啟動子探針型質(zhì)粒載體，并獲得了一些真核生物的啟動子片段。該技術(shù)利用限制性核酸內(nèi)切酶將DNA序列隨機切割成大小不等的片段，在DNA連接酶的作用下，將DNA片段與不含啟動子的表達載體連接，然后將其轉(zhuǎn)化給宿主細胞，并構(gòu)建報告基因文庫。通過檢測報告基因的表達活性，篩選出具有轉(zhuǎn)錄起始活性的啟動子片段。該方法適用于未知序列基因啟動子的篩選，不需設(shè)計引物，能快速篩選出啟動子；但其工作量較大，篩選到的啟動子數(shù)量多，特異性相對較差。李維等[43]利用該技術(shù)成功篩選出黃孢原毛平革菌基因的啟動子片段。徐良向等[44]應(yīng)用該技術(shù)快速檢測到橡膠樹白粉病菌HO-73基因啟動子。

3.3 基因芯片技術(shù)

基因芯片技術(shù)又稱為DNA微陣列技術(shù)，具有全自動化、高精確與高精密、高靈敏、高度并行性、多樣性等特點[45]?；蛐酒饕獙⒍喾N特定的寡聚核苷酸或DNA探針固定在芯片的特定位置，將待測基因用熒光標(biāo)記后與芯片進行雜交，通過檢測雜交信號來分析樣本基因序列信息及表達信息。使用聚類分析和主元分析等分析方法處理基因序列信息，根據(jù)基因的啟動子組成特性，通過多重序列比對，在基因序列的上游區(qū)域?qū)ふ页鰡幼覽46]。Yuko等[47]根據(jù)裂殖酵母的基因組分析結(jié)果，制備了幾種DNA微陣列，對裂殖酵母未知基因功能進行探索，并且尋找其可能用于異源蛋白表達的啟動子。

3.4 高通量測序技術(shù)

在檢測啟動子前，可通過高通量測序技術(shù)對絲狀真菌進行全基因組重測序，利用Weka等數(shù)據(jù)挖掘軟件結(jié)合生物學(xué)信息技術(shù)對高通量測序數(shù)據(jù)進行分析，以篩選出啟動子[48]。近年來，研究人員利用高通量測序技術(shù)開發(fā)出RNA測序技術(shù)（RNA-seq），此技術(shù)可以檢測基因在全基因組內(nèi)的表達情況，具有高通量、高重復(fù)性、檢測范圍廣泛等特點[49]，但價格昂貴。亓飛等[50]使用RNA-seq技術(shù)，在畢赤酵母中發(fā)現(xiàn)了2個新型強啟動子。

4 啟動子功能的研究方法

4.1 啟動子的克隆方法

通過生物學(xué)信息的預(yù)測和對啟動子的篩選，能夠了解絲狀真菌啟動子的序列信息和結(jié)構(gòu)特點，但還需進一步研究和驗證啟動子元件的功能，以便對啟動子進行開發(fā)與利用，這需要對啟動子進行克隆。

4.1.1 PCR方法對于已知序列的啟動子，可以根據(jù)其序列設(shè)計特異性引物，利用PCR方法對啟動子進行擴增與克隆。PCR克隆啟動子的方法包括巢式PCR、熱不對稱PCR、反向PCR等，詳見表2[34，51]。

表2 PCR克隆啟動子的方法及其特點

葉偉等[52]利用巢氏PCR技術(shù)獲得深海真菌埃德菌gliG、gliI、gliO基因的啟動子片段。胡建坤等[53]采用熱不對稱PCR技術(shù)得到稻曲病菌的一段含有啟動子的序列。王德培等[54]利用長引物嵌套式反向PCR技術(shù)克隆出隆雅致枝霉Δ6-脂肪酸脫氫酶基因上游1.3 kb序列。Fang等[55]利用YADE法，成功克隆出類球孢白僵菌類枯草桿菌蛋白酶基因CDEP-1的啟動子。克隆絲狀真菌啟動子的PCR方法多種多樣，研究者可結(jié)合實際狀況選擇合適的方法。

4.1.2 TA克隆通過PCR方法獲得啟動子片段后，可將其克隆到T載體上。TA克隆操作方法，首先將經(jīng)純化的啟動子片段與T載體連接，再將其轉(zhuǎn)入至感受態(tài)大腸桿菌中，經(jīng)藍白斑篩選、PCR及測序即可驗證啟動子片段是否成功連接在T載體上[56]。利用此方法可以克隆大量的同種啟動子。黎晨等[57]使用熱不對稱PCR方法獲得了玉米黑粉菌Cyp51基因啟動子片段后，成功將其連接在pMD-18-T載體上，為后續(xù)研究分析啟動子功能奠定了基礎(chǔ)。

4.2 功能研究方法

作為真核生物的絲狀真菌，周圍存在大量順式作用元件的啟動子，其序列的跨越范圍、結(jié)構(gòu)與功能比原核啟動子復(fù)雜。在對啟動子進行克隆后，需要通過實驗的方法研究啟動子功能，啟動子功能的研究包括預(yù)測及確認啟動子周圍的順式作用元件、確定啟動子片段的轉(zhuǎn)錄起始活性、啟動子核心區(qū)域的位置、啟動子與轉(zhuǎn)錄因子的相互作用等。目前常用的研究方法有定點突變分析、逐段缺失活性分析、轉(zhuǎn)錄因子-啟動子互作分析、啟動子甲基化和多態(tài)性分析等。

4.2.1 定點突變分析啟動子定點突變是指通過盒式突變、PCR介導(dǎo)等方法使啟動子片段發(fā)生單堿基替換或堿基的添加、刪除等。通過該方法可以分析啟動子的調(diào)節(jié)位點，還能研究啟動子功能，確定啟動子中的TATA box、CAT box、CAAT box等參與基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控的重要的順式作用元件[58]。通過構(gòu)建突變的啟動子重組載體，將重組的質(zhì)粒轉(zhuǎn)染至細胞，分析細胞中報告基因的表達活性，可確定啟動子突變前后的轉(zhuǎn)錄起始活性。宮亞娟等[59]對瑞氏木霉Cbh1啟動子進行點突變分析，成功構(gòu)建了5個啟動子定點突變載體，分析了Cbh1啟動子點突變前后對其轉(zhuǎn)錄活性的影響。Matsushita等[60]對米曲霉Hsp30啟動子進行定點突變，發(fā)現(xiàn)了位于Hsp30啟動子-342～-272的熱休克反應(yīng)順式作用元件HSE1和HSE2。

4.2.2 逐段缺失活性分析當(dāng)預(yù)測啟動子序列后，可采用啟動子逐段缺失的方法來研究不同啟動子片段的轉(zhuǎn)錄起始活性，以此來判定啟動子的核心區(qū)域。常用的研究方法有5’端逐段缺失、3’端逐段缺失、中間缺失及點突變等，其中5’端逐段缺失方法應(yīng)用較為普遍。首先構(gòu)建啟動子5’端逐段缺失的含有熒光素酶基因（Luc）、β-葡萄糖苷酸酶（GUS）、綠色熒光蛋白基因（GFP）等報告基因的表達載體[61]。然后將構(gòu)建好的表達載體轉(zhuǎn)染至細胞中，通過分析報告基因的表達活性判斷目的基因啟動子轉(zhuǎn)錄起始活性最強的區(qū)域。殷金瑤等[62]構(gòu)建了5個5’端逐段缺失的橡膠樹白粉菌（HO-73）啟動子片段載體，確定了不同啟動子片段的活性強弱。

4.2.3 轉(zhuǎn)錄因子-啟動子互作分析絲狀真菌基因的轉(zhuǎn)錄除了受到啟動子的影響外，與啟動子專一結(jié)合的轉(zhuǎn)錄因子也參與絲狀真菌基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控，使目的基因以特定的強度在特定的時間參與空間表達[63]。研究啟動子與轉(zhuǎn)錄因子的相互作用，將有助于了解啟動子對絲狀真菌基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控功能。目前，常見的分析轉(zhuǎn)錄因子與啟動子相互作用的方法有酵母單雜交實驗（Y1H）、凝膠阻滯遷移率實驗（EMSA）、DNaseⅠ足跡實驗、染色質(zhì)免疫共沉淀法（CHIP）等。

酵母單雜交可研究蛋白質(zhì)和特定DNA的相互作用，通過構(gòu)建蛋白與轉(zhuǎn)錄激活區(qū)融合表達的載體，并使其在酵母中表達，根據(jù)報告基因在酵母細胞內(nèi)表達活性的強弱，分析轉(zhuǎn)錄因子與DNA結(jié)合的情況[64]。劉兵等[65]利用酵母單雜交實驗驗證了WRKY40和WRKY75轉(zhuǎn)錄因子能與葡萄抗霜病VpPR4b基因啟動子結(jié)合。懷寶玉等[66]對小麥條銹菌Tastp3啟動子進行酵母單雜交，成功篩選出5個候選轉(zhuǎn)錄因子。

凝膠阻滯遷移率實驗是研究DNA或RNA與蛋白質(zhì)相互作用的常用技術(shù)。其主要原理是蛋白質(zhì)與探針復(fù)合物結(jié)合后分子質(zhì)量變大，在凝膠電泳過程中遷移率較慢。DNaseⅠ足跡實驗可用于鑒別RNA聚合酶等蛋白質(zhì)在DNA上的結(jié)合位點，能找到與DNA特異結(jié)合的目的蛋白，以此來確定轉(zhuǎn)錄因子。其原理是與轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合的DNA不會被DNase破壞，在電泳凝膠的放射性自顯影圖片上，使其沒有放射性標(biāo)記帶。凌敏等[67]通過EMSA技術(shù)確定了康氏木霉纖維素酶轉(zhuǎn)錄因子ACEI和Xyr。呂新星等[68]通過EMSA和酵母單雜交實驗分析出里氏木霉纖維素酶基因轉(zhuǎn)錄因子Xyr1。

染色質(zhì)免疫共沉淀法是在活細胞內(nèi)固定DNA與蛋白質(zhì)的復(fù)合物，將其隨機切割成染色質(zhì)小片段，利用免疫學(xué)方法沉淀，特異性地富集與目的蛋白結(jié)合的DNA片段，經(jīng)純化、測序即可獲得蛋白質(zhì)結(jié)合的DNA序列[64，69]。曹艷麗等[70]通過EMSA、DNaseⅠ足跡實驗鑒定了里氏木霉中的轉(zhuǎn)錄因子Rce1在Cbh1啟動子上的結(jié)合位點，通過染色質(zhì)免疫共沉淀實驗發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)錄因子Rce1在纖維素誘導(dǎo)表達過程中與轉(zhuǎn)錄因子Xyr1相競爭結(jié)合纖維素酶基因啟動子，進而實現(xiàn)對纖維素酶表達的抑制作用。

4.2.4 啟動子的甲基化和多態(tài)性分析DNA甲基化最早是由Hotchkiss等[71]發(fā)現(xiàn)的。真核生物主要以5-甲基胞嘧啶（5mC）的形式存在[72]。絲狀真菌啟動子DNA甲基化是一種重要的可遺傳的表觀遺傳修飾[73]。啟動子DNA甲基化能改變?nèi)旧|(zhì)結(jié)構(gòu)、DNA構(gòu)像的穩(wěn)定性以及DNA與蛋白質(zhì)的互作方式，從而調(diào)控基因表達[74]。檢測DNA甲基化的方法主要有限制性內(nèi)切酶法、重亞硫酸鹽法、芯片技術(shù)等[75]。限制性內(nèi)切酶法比較敏感，主要利用部分限制性核酸難以將甲基化DNA序列切開的原理。SmaI-XmaI能識別并切開序列CCCGGG（SmaI-XmaI識別序列較少而不常用），HpaⅡ-MspⅠ能識別CCGG序列進行酶切，當(dāng)序列中的胞嘧啶產(chǎn)生甲基化時，CCGG序列便不能被HpaⅡ切開，通過southern、PCR等方法可以確定甲基化狀態(tài)[76-77]。HpaⅡ-MspⅠ可作為分析甲基化的工具，此法操作簡單、成本低，但有較大缺點。重亞硫酸鹽法將非甲基化的胞嘧啶C轉(zhuǎn)化為尿嘧啶U，經(jīng)PCR反應(yīng)形成TA配對。重亞硫酸鹽不能將已甲基化的胞嘧啶U改變，DNA中的甲基化信息通過DNA序列的差異表現(xiàn)出來?；蛐酒椒ㄊ菍⒛茏R別甲基化和非甲基化CpG的探針固定在芯片上，經(jīng)過重亞硫酸鹽轉(zhuǎn)化后的DNA片段經(jīng)擴增后與探針結(jié)合，從而檢測甲基化位點[78]。

啟動子由于單個核苷酸的變化會出現(xiàn)多態(tài)性（SNPs）。啟動子序列的變化可能會引起轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點發(fā)生改變，從而影響基因表達。SNP與生物的性狀及某些疾病密切相關(guān)，SNP標(biāo)記在遺傳學(xué)研究、致病基因定位、易感基因檢測、絲狀真菌致病機制研究中具有重要作用[79]。

5 結(jié)語與展望

在基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控中，啟動子作為順式作用元件的重要組成部分，控制著基因表達時間、表達部位、表達強度及表達方式[1]。在研究基因功能前，應(yīng)先對啟動子的結(jié)構(gòu)、功能等進行研究。近年來對啟動子的研究已經(jīng)形成了一套較為完整的體系。在獲取啟動子的序列后，利用各種在線數(shù)據(jù)庫對啟動子進行生物信息分析及預(yù)測，從而了解啟動子的轉(zhuǎn)錄起始位點、順式作用元件、核心啟動子區(qū)域、轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點等信息。然而專門用于絲狀真菌啟動子研究的數(shù)據(jù)庫及分析工具還很少，研究者們往往需要借鑒一些真核生物數(shù)據(jù)庫，這往往使得預(yù)測結(jié)果的準(zhǔn)確性不夠高，需要使用多個數(shù)據(jù)庫進行聯(lián)合分析，并通過各種實驗方法對預(yù)測結(jié)果加以驗證。

啟動子的篩選可以使人們準(zhǔn)確了解啟動子的序列及位置信息，啟動子的PCR克隆為研究啟動子的功能提供了材料支撐。通過點突變分析、逐段缺失分析、啟動子與轉(zhuǎn)錄因子互作分析等各種方法對啟動子功能進行研究，從而判斷該啟動子轉(zhuǎn)錄活性的強弱，研究啟動子轉(zhuǎn)錄活性最強的區(qū)域，某個順式作用元件對基因是正向調(diào)節(jié)還是負向調(diào)節(jié)、某個轉(zhuǎn)錄因子能否與啟動子結(jié)合。這些研究為絲狀真菌啟動子的開發(fā)利用提供了參考依據(jù)，如利用誘導(dǎo)型強啟動子、構(gòu)建雙向啟動子或改造啟動子構(gòu)建過表達載體來高效表達目的產(chǎn)物[25]。近年在絲狀真菌中發(fā)現(xiàn)的U6啟動子能有效提高基因編輯效率[80]。隨著基因組學(xué)、計算機科學(xué)、分子生物學(xué)的不斷發(fā)展，進行絲狀真菌啟動子研究的方法會更加簡便、快捷，在未來將會有更多絲狀真菌啟動子被挖掘出來，不斷推動絲狀真菌啟動子的應(yīng)用與發(fā)展。