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    基于Caco-2 細(xì)胞模型對DPP-IV抑制肽IPQVS 的活性評價(jià)研究

    2022-01-07 08:54:28徐斐然徐寶才鞠興榮
    關(guān)鍵詞:實(shí)驗(yàn)

    徐斐然, 徐寶才, 鞠興榮

    (1. 合肥工業(yè)大學(xué)食品與生物工程學(xué)院, 安徽合肥 230601;2. 合肥工業(yè)大學(xué)農(nóng)產(chǎn)品生物化工教育部工程研究中心,安徽合肥 230601;3. 江南大學(xué)食品學(xué)院,江蘇無錫 214122)

    當(dāng)前,基于反應(yīng)底物甘氨酰-脯氨酰-對硝基苯(Gly-Pro-p-nitroanilide) 的體外酶促法測定IPQVS的活性存在不足與局限性。 其主要體現(xiàn)在腸道中的若干環(huán)境因素可能會限制寡肽對DPP-IV 的抑制活性,例如,小腸消化酶的水解作用會破壞寡肽的一級序列結(jié)構(gòu),寡肽在小腸上皮細(xì)胞中的滲透率會影響DPP-IV 抑制反應(yīng)的進(jìn)行[1-2],此外,大多體外實(shí)驗(yàn)使用的DPP-IV 源自豬胰腺, 與人類DPP-IV 存在少許差異。

    文獻(xiàn)報(bào)道,分化的人類結(jié)腸癌細(xì)胞系(Caco-2細(xì)胞)中DPP-IV 的mRNA 表達(dá)水平較高,接近于正常人體小腸細(xì)胞的表達(dá)水平,重要的是該細(xì)胞系分化后還可以形成擁有緊密連接蛋白的致密單層與小腸細(xì)胞腸腔側(cè)刷狀緣絨毛結(jié)構(gòu)[3]。 此外,Caco-2細(xì)胞分化為極化的腸上皮細(xì)胞后可以表達(dá)與人腸上皮細(xì)胞相同的刷狀邊緣酶、肽酶、堿性磷酸酶和二糖酶等[4]。因此,Caco-2 細(xì)胞單層模型是一種成熟的包括抑制劑在內(nèi)的眾多口服藥物的篩選工具,通過它可以研究藥物的吸收率、降解和轉(zhuǎn)化[5-6]。 近年來,有大量關(guān)于活性寡肽的小腸吸收與轉(zhuǎn)運(yùn)機(jī)制的研究, 其中就包括利用Caco-2 細(xì)胞單層模型鑒定并研究雞蛋蛋白源DPP-IV 抑制肽IRDLLER、YAEERYP 和IRNVLQPS[7];鳙魚蛋白源DPP-IV 抑制肽IADHFL[8]。

    在先前研究中[9],菜籽蛋白源IPQVS 被證實(shí)具有出色的DPP-IV 抑制活性 (IC50=(52.16±5.91)μmol/L)。 基于分化的Caco-2 細(xì)胞模型對IPQVS 的DPP-IV 抑制活性進(jìn)行測定, 闡明其在模擬小腸上皮細(xì)胞中的吸收與降解機(jī)制,使用分子對接方法揭示小腸吸收、腸肽酶降解作用對IPQVS 活性的影響及規(guī)律。 這項(xiàng)研究的創(chuàng)新之處在于使用了體外Caco-2 細(xì)胞單層模型,該模型不僅更準(zhǔn)確地測定了IPQVS 的活性,還提供了其在小腸中吸收、降解的相關(guān)參數(shù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    氫氧化鈉、鹽酸、Tris-HCl:中國國藥集團(tuán)公司產(chǎn)品;人體結(jié)腸癌細(xì)胞系Caco-2 細(xì)胞株:中國科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院細(xì)胞資源中心產(chǎn)品;胎牛血清(FBS)、胰蛋白酶(含體積分?jǐn)?shù)0.25%的EDTA)、DMEM 1x(Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium)高糖(4.5 g/L D-葡萄糖)培養(yǎng)基:美國Gibco 公司產(chǎn)品;重組人類DPP-IV(EC 3.4.14.5)、3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴鹽(MTT)、TRIzol試劑、Diprotin A (Ile-Pro-Ile, 純度≥95%): 美國Sigma 公司產(chǎn)品;三氟乙酸(TFA)、乙腈、甲醇均為色譜級:德國Merck 公司產(chǎn)品;無RNA 酶水:國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司產(chǎn)品;FMOC 固相合成的IPQVS 及其降解產(chǎn)物PQVS、QVS、VS: 合肥國肽生物有限公司產(chǎn)品;DPP-IV GloTM 測定試劑盒、siRNA (DPP-IV)、Lipofectamine 2000 轉(zhuǎn)染試劑、普通細(xì)胞培養(yǎng)板、離心管(50、15、2 mL):美國Thermo Fisher 公司產(chǎn)品;12 孔Transwell?培養(yǎng)板(聚酯膜,孔徑0.4 μm,膜面積1.12 cm2)、25 cm2密封蓋細(xì)胞培養(yǎng)皿、0.22 μm 有機(jī)微孔濾膜:美國康寧公司產(chǎn)品。

    Beckman Coulter J6 冷凍離心機(jī):貝克曼庫爾特有限公司產(chǎn)品;SX-500 快速自動高壓滅菌鍋:日本Tomy Digital Biology 公司產(chǎn)品;FE20K 精密pH 計(jì):梅特勒儀器公司產(chǎn)品;SpectraMax M2e 多功能酶標(biāo)儀: 美國Molecular Devices 公司產(chǎn)品;7500 實(shí)時(shí)熒光定量PCR 儀: 美國AB SCIEX 公司產(chǎn)品;Class II Type B2 生物安全柜、3701 型二氧化碳恒溫培養(yǎng)箱、超低溫冰箱:美國Thermo Fisher 公司產(chǎn)品;凝膠成像系統(tǒng):美國UVP imagaing 公司產(chǎn)品;LSM700 激光共聚焦顯微鏡:德國Zeiss 公司產(chǎn)品。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 Caco-2 細(xì)胞吸收實(shí)驗(yàn) 將Caco-2 細(xì)胞以5×104個(gè)/cm2的密度接種在Transwell?細(xì)胞培養(yǎng)平板的插入物(上室,AP 側(cè),即基底內(nèi)側(cè))上,在12 孔細(xì)胞培養(yǎng)板的上下室的每個(gè)孔中加入0.5 mL DMEM, 每隔1 d 更換細(xì)胞培養(yǎng)基。 培養(yǎng)21 d 后,Caco-2 細(xì)胞完全分化為致密單層結(jié)構(gòu)。在進(jìn)行跨細(xì)胞轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)測定之前,通過用Millicell ERS-2 測量跨上皮電阻(TEER)來評估Transwell?上室中細(xì)胞單層的完整性與致密性。 跨膜電阻值TEER 高于400 Ω 的Caco-2 細(xì)胞單層可以被用于模擬小腸上皮細(xì)胞吸收、轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)。 丟棄完全分化的細(xì)胞單層中的培養(yǎng)基,使用PBS 洗滌細(xì)胞單層兩次。 隨后,將0.5 mL 含IPQVS 或其降解產(chǎn)物的HBSS 溶液(最終濃度為5 mmol/L)添加到AP 側(cè),并將1.5 mL 不含測試樣品的HBSS 溶液添加到BL 側(cè) (基底外側(cè))。Caco-2 細(xì)胞單層模擬小腸上皮細(xì)胞吸收、轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)共進(jìn)行120 min,在90 min 時(shí)從Caco-2 細(xì)胞單層的AP 側(cè)回收培養(yǎng)液, 在120 min 時(shí)從Caco-2 細(xì)胞單層的BL 側(cè)回收培養(yǎng)液,進(jìn)行液質(zhì)聯(lián)用(HPLC-MS)分析。 為了確定IPQVS 及其降解產(chǎn)物經(jīng)Caco-2 細(xì)胞吸收的機(jī)制, 在Caco-2 細(xì)胞單層中添加了降低細(xì)胞間緊密連接的松弛素D(0.5 μg/mL)、轉(zhuǎn)胞吞抑制劑渥曼青霉素 (500 nmol/L) 和肽轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白1(PepT1)競爭抑制劑Gly-Pro(10 mmol/L)。以上試劑與Caco-2 細(xì)胞單層培養(yǎng)1 h 后, 在AP 側(cè)添加5 mmol/L IPQVS 或其降解產(chǎn)物。 Papp 計(jì)算公式如下:

    式中:Papp 為表觀滲透系數(shù),cm/s;Cd0是Transwell?小室AP 側(cè)的初始肽濃度,mmol/L;MR是Transwell?小室BL 側(cè)轉(zhuǎn)運(yùn)后寡肽的濃度,mmol/L;t 是時(shí)間,s;A 是Transwell?小室AP 側(cè)細(xì)胞單層的表面積,cm2。

    1.2.2 細(xì)胞培養(yǎng)與毒性實(shí)驗(yàn)復(fù)蘇一瓶Caco-2 細(xì)胞(2.0 mL),將其置于型號為T75 的細(xì)胞培養(yǎng)瓶中,培養(yǎng)液為含有FBS(體積分?jǐn)?shù)10%)、青霉素(100 U/mL)和鏈霉素(100 μg/mL)的DMEM,每2 d 更換一次培養(yǎng)液。 將Caco-2 細(xì)胞在體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2及37 ℃的細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育。當(dāng)細(xì)胞生長至瓶底面積的80%~90%,使用胰蛋白酶(含體積分?jǐn)?shù)0.25%的EDTA) 以1∶2 或1∶3 的分流比對細(xì)胞進(jìn)行傳代,每次傳代的密度限定為1×105個(gè)/cm2。 使用的Caco-2細(xì)胞均在第10 至25 代。 通過MTT 比色分析法[10]對Caco-2 細(xì)胞相對活力進(jìn)行了測定。 將Caco-2 細(xì)胞以每孔5×104個(gè)的密度接種在96 孔板中,并在體積分?jǐn)?shù)5%的CO2及37 ℃環(huán)境中孵育。 培養(yǎng)21 d 后,移出培養(yǎng)基, 分別用200 μL 含有不同濃度(0.5、2.0、5.0 mmol/L) 的IPQVS 及其降解產(chǎn)物, 以及Diprotin A 培養(yǎng)基替換,進(jìn)一步孵育2 h 或24 h。 僅加入DMEM 的孔作為對照組。 再將200 μL MTT(5.0 mg/mL) 加入每個(gè)孔,Caco-2 細(xì)胞在37 ℃下繼續(xù)孵育4 h。 接著除去含有MTT 的培養(yǎng)基,并向每個(gè)孔中加入150 μL 的DMSO 溶液。 將96 孔板放置在臺式振蕩器上振蕩0.5 h。 最后,在酶標(biāo)儀中于570 nm處測量96 孔板吸光度。 與對照相比,細(xì)胞相對活力降低超過10%的肽樣品濃度被認(rèn)為具有細(xì)胞毒性。

    1.2.3 DPP-IV 抑制活性測定參照文獻(xiàn)[11]進(jìn)行DPP-IV 抑制率的測定。整個(gè)實(shí)驗(yàn)在37 °C 恒溫條件下進(jìn)行,使用Diprotin A 作為陽性對照物。實(shí)驗(yàn)組為50 μL 含有反應(yīng)底物Gly-Pro-p-nitroanilide 的測試樣品,底物最終濃度0.2 mmol/L。陰性對照包含100 mmol/L Tris-HCl 緩沖液(pH 8.0,50 μL)和反應(yīng)底物。 通過添加DPP-IV(質(zhì)量濃度0.002 5 mg/mL)來引發(fā)反應(yīng),反應(yīng)1 h 后立即加入1 mol/L 的醋酸-醋酸鈉緩沖液(pH 4.0)中止反應(yīng)。 所有試劑和樣品均在100 mmol/L Tris-HCl 緩沖液(pH 8.0)中稀釋。 使用酶標(biāo)儀在405 nm 下讀取96 孔板的吸光度。 不同樣品中DPP-IV 的IC50通過測試樣品濃度對數(shù)值-相對活性的函數(shù)作圖, 計(jì)算50%DPP-IV 被抑制所需的測試樣品濃度。 參考已有的對體外DPP-IV 活性的研究[9],使用DPP-IV GloTM 測定試劑盒評估IPQVS 的抑制活性。 將Caco-2 細(xì)胞以5×104個(gè)/cm2的密度接種到12 孔Transwell?板中,用25~250μmol/L IPQVS 或其降解產(chǎn)物處理Caco-2 細(xì)胞24 h。 然后使用BCA 蛋白質(zhì)分析試劑盒評估每個(gè)樣品的蛋白質(zhì)質(zhì)量濃度,使用Tris-HCl 緩沖液(pH 8.0)調(diào)節(jié)最終體積, 將Caco-2 細(xì)胞提取物和上清液中的蛋白質(zhì)質(zhì)量濃度歸一化。 使用上層培養(yǎng)液和細(xì)胞裂解液的混合物測量DPP-IV 的含量。 使用酶標(biāo)儀在10 min內(nèi)測量吸光度,該吸光度與DPP-IV 活性成正比。將處理樣品與對照樣品進(jìn)行比較,對照組樣品中僅含有加入DMEM 的細(xì)胞裂解物和細(xì)胞上清液。

    1.2.4 DPP-IV 基因表達(dá)分析使用Lipofectamine 2000 和不含血清的優(yōu)化DMEM 培養(yǎng)基配置得到混合物(siRNA(DPP-IV)濃度為40 pmol/L)。取出接種了Caco-2 細(xì)胞的6 孔板,用PBS 清洗兩次,再用不含血清的優(yōu)化DMEM 培養(yǎng)基清洗一次。 吸棄清洗液,每孔加入不含血清的優(yōu)化DMEM 培養(yǎng)基,再加0.5 mL 含siRNA(DPP-IV)的混合液。 輕輕搖勻,放入細(xì)胞培養(yǎng)箱孵育6 h (體積分?jǐn)?shù)5% CO2,37 ℃)。6 h 后吸棄孔板中液體, 換入正常的含血清培養(yǎng)液繼續(xù)孵育24 h,再用不同濃度的IPQVS 處理Caco-2細(xì)胞24 h,隨后Caco-2 細(xì)胞可用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。 通過蛋白質(zhì)印跡法結(jié)果可以表征siRNA 對DPP-IV 基因的沉默效率[12]。

    1.2.5 免疫熒光實(shí)驗(yàn)用250 μmol/L IPQVS 和50 μmol/L Diprotin A 處理Caco-2 細(xì)胞單層, 再用DPBS 洗滌3 次, 用體積分?jǐn)?shù)4%的多聚甲醛水溶液固定10 min, 用體積分?jǐn)?shù)0.5%Triton X-100 在25℃下放置5 min。 在25 ℃下用體積分?jǐn)?shù)5%的牛血清白蛋白(BSA)封閉1 h 后,將Caco-2 細(xì)胞單層與一抗(濃度比1∶50,在體積分?jǐn)?shù)5%BSA 中稀釋)在4℃下孵育過夜。 接下來,將一抗吸棄,用PBST 溶液洗滌Caco-2 細(xì)胞3 次,將山羊抗鼠FITC 二抗的稀釋液加入,25 ℃下避光孵育2 h。 二抗孵育完畢以后,以PBST 洗滌Caco-2 細(xì)胞3 次,將DAPI 染色液加入,25 ℃下避光孵育10 min。 最后用PBST 洗滌Caco-2 細(xì)胞3 次, 使用激光共聚焦顯微鏡獲取Caco-2 細(xì)胞單層圖像。

    1.2.6 模擬分子對接使用分子對接軟件(MOE)對IPQVS 及其代謝物進(jìn)行分子對接并優(yōu)化到DPPIV(PDB ID:1X70)的結(jié)合位點(diǎn)。 對接口袋與已發(fā)表的文章一致[13-15]。 DPP-IV 的3D 結(jié)構(gòu)可從RCSB 蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫 (www.rcsb.org) 下載。 使用Accelrys Discovery Studio 1.1.2 版軟件來去除水分子并優(yōu)化肽的空間結(jié)構(gòu)。 選擇產(chǎn)生的具有最小結(jié)合能的構(gòu)象進(jìn)行分析,并使用PyMOL 軟件生成分子結(jié)構(gòu)。 根據(jù)一級配體的位置, 確定DPP-IV 活性位點(diǎn)的坐標(biāo)為center_x =-10.733,center_y =12.416 和 center_z =68.829,其中size_x=20,size_y=20,size_z=20。使用活性位點(diǎn)和底物之間的總相互作用能評估最終穩(wěn)定肽-底物復(fù)合物的分?jǐn)?shù)。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    所有實(shí)驗(yàn)至少重復(fù)3 次, 采用SPSS 21.0 軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,兩組間比較應(yīng)用t 檢驗(yàn),多組間比較應(yīng)用單因素方差分析。

    表格中結(jié)果以平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)偏差(SD)表示,圖中數(shù)據(jù)以平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)誤差表示。 以P<0.05 作為具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義的差異判定。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 IPQVS 及其降解產(chǎn)物在Caco-2 細(xì)胞模型中的吸收

    IPQVS 在Caco-2 細(xì)胞單層(經(jīng)過21 d 培養(yǎng))上孵育90 min 后,52%的IPQVS 在Transwell?的上室AP 側(cè)保持結(jié)構(gòu)完整,然而轉(zhuǎn)運(yùn)至下室BL 側(cè)并保留其原始結(jié)構(gòu)的只占初始量的2.7%, 見圖1 (a)~(c)。 Transwell?小室的AP 側(cè)和BL 側(cè)發(fā)現(xiàn)了IPQVS 的3 個(gè)主要降解片段, 經(jīng)HPLC-MS 鑒定IPQVS(保留時(shí)間為12.90 min)降解的3 個(gè)肽片段分別是PQVS(保留時(shí)間為11.07 min)、QVS(保留時(shí)間為13.99 min)和VS(保留時(shí)間為17.10 min)。表1為IPQVS 及其降解產(chǎn)物跨小腸上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)運(yùn)的相關(guān)數(shù)據(jù),IPQVS 的Papp 為(1.35±0.09)×10-6cm/s,降解肽PQVS、QVS、VS 的Papp 分別為(1.46±0.18)×10-6、(0.95±0.08)×10-6、(3.01±0.15)×10-6cm/s。 不難發(fā)現(xiàn),氨基酸殘基數(shù)越少的寡肽在小腸吸收上更具優(yōu)勢。如圖1(d)所示,細(xì)胞松弛素D 顯著增加了IPQVS及其降解產(chǎn)物的吸收量(P<0.05),表明細(xì)胞旁路均是4 條肽的吸收方式。其中疏水性最強(qiáng)的IPQVS 與二肽VS 的吸收量在渥曼青霉素預(yù)處理的情況下被顯著抑制,表明轉(zhuǎn)胞吞作用可能也是它們的吸收方式。值得注意的是,VS 存在3 種可能的吸收途徑(細(xì)胞旁路、胞吞轉(zhuǎn)運(yùn)和PepT1 轉(zhuǎn)運(yùn)),這主要因?yàn)槠浒被釟埢鶖?shù)小于3,且為疏水性氨基酸。

    圖1 IPQVS 跨Caco-2 細(xì)胞單層膜吸收作用的分析Fig. 1 Analysis of the transepithelial transport of IPQVS across Caco-2 cell monolayer

    2.2 IPQVS 及其降解產(chǎn)物對Caco-2 單層細(xì)胞的毒性

    用不同濃度(0.5、2.0、5.0 mmol/L)的IPQVS 處理單層Caco-2 細(xì)胞后, 使用MTT 法確定單層Caco-2 細(xì)胞相對活力。 如圖2(a)所示,濃度為5.0 mmol/L 的PQVS、QVS、VS 持續(xù)作用24 h 會顯著降低Caco-2 細(xì)胞的相對活力 (P<0.05); 濃度為2.0 mmol/L 及以上的Diprotin A 作用24 h 對單層Caco-2 細(xì)胞有毒性,細(xì)胞相對活力均低于90%。 但是, 同樣濃度的上述寡肽作用于Caco-2 細(xì)胞2 h,細(xì)胞相對活力沒有顯著降低(見圖2(b),P>0.05)。因此,使用濃度為5.0 mmol/L 的寡肽IPQVS 及其降解產(chǎn)物進(jìn)行2 h 的模擬小腸上皮細(xì)胞吸收實(shí)驗(yàn)是安全且無生物毒性的。 雞蛋蛋白源降血壓肽LKP 和IQW 模擬小腸上皮細(xì)胞吸收、轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)的結(jié)果與上述相似,Caco-2 細(xì)胞與目標(biāo)肽 (濃度為2.0、5.0 mmol/L)的短時(shí)間共同孵育(2h)不會誘導(dǎo)細(xì)胞毒性[16]。

    圖2 MTT 法檢測IPQVS 及其降解產(chǎn)物在Caco-2 細(xì)胞中的細(xì)胞毒性Fig. 2 Cytotoxicity of IPQVS and its degradation products in Caco-2 cells by MTT assay

    2.3 基于Caco-2 細(xì)胞單層對IPQVS 的DPP-IV抑制活性

    如圖3(a)及表1 所示,IPQVS 以劑量依賴型方式抑制Caco-2 細(xì)胞單層中的DPP-IV 活性,IC50為(101.66±6.02) μmol/L,數(shù)值高于體外化學(xué)底物法測量值。 Diprotin A 的IC50也從(3.62±0.37) μmol/L 增加至 (12.18±0.36) μmol/L。 當(dāng)IPQVS 的濃度超過250 μmol/L 時(shí),抑制率曲線趨于平緩。 圖3(d)表明濃度為250 μmol/L 的IPQVS 在Caco-2 細(xì)胞單層中孵育60、90、180、360 min 后, 細(xì)胞內(nèi)DPP-IV 的相對活性分別降低了36.49%、42.37%、62.71%和64.70%。 IPQVS 調(diào)節(jié)DPP-IV 基因表達(dá)的能力亦在Caco-2 細(xì)胞單層上進(jìn)行了測試。 如圖3(b)所示,蛋白質(zhì)印跡法結(jié)果表明siRNA(DPP-IV)顯著降低了Caco-2 細(xì)胞中DPP-IV 的表達(dá)。 與對照組相比,siRNA(DPP-IV)組DPP-IV 的mRNA 表達(dá)水平下降了50%以上,并具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。 不難發(fā)現(xiàn),IPQVS 不會影響Caco-2 細(xì)胞單層中DPP-IV的mRNA 表達(dá)。

    圖3 IPQVS 對體外Caco-2 細(xì)胞中DPP-IV 活性的影響Fig. 3 Effects of IPQVS on DPP-IV activity in vitro in Caco-2 cell

    IPQVS 及其降解產(chǎn)物在體外對DPP-IV 的IC50如表1 所示, 其中PQVS 和VS 的IC50分別為(120.74±8.60) μmol/L 和 (68.59±4.28) μmol/L,均高于IPQVS,QVS 的體外IC50甚至超過了500 μmol/L。Caco-2 細(xì)胞實(shí)驗(yàn)中,PQVS (IC50=(195.69±6.37)μmol/L)和QVS(IC50>500 μmol/L)對DPP-IV 的抑制活性顯著低于IPQVS。 VS 在Caco-2 細(xì)胞單層模型測定中的IC50小于IPQVS, 但由于VS 含量是IPQVS 降解產(chǎn)物中最低的,所以并不能改變IPQVS在Caco-2 細(xì)胞單層模型中DPP-IV 抑制率降低的結(jié)果。 免疫熒光是研究細(xì)胞內(nèi)源蛋白酶表達(dá)的一種有效方法[17]。 如圖4 所示,與對照組相比,濃度為250 μmol/L 的IPQVS 和50 μmol/L Diprotin A 能夠使Caco-2 細(xì)胞單層的DPP-IV 對應(yīng)的熒光強(qiáng)度下降60%以上(P<0.01)。 此外,兩者處理后的Caco-2細(xì)胞邊緣和培養(yǎng)空隙中的綠色熒光亮度大幅降低(見圖4(a))。

    圖4 激光共聚焦掃描顯微鏡的二維熒光檢測與定量分析Fig. 4 Confocal laser scanning microscopy depicting two-dimensional fluorescence detection and quantification

    結(jié)合表1 中IPQVS 及其降解產(chǎn)物對DPP-IV的IC50,推測IPQVS 在Caco-2 細(xì)胞模型中對DPPIV 抑制活性降低的原因是在小腸吸收過程中發(fā)生了降解作用, 新產(chǎn)生的肽段碎片PQVS 和QVS 的DPP-IV 抑制活性較IPQVS 發(fā)生了不同程度的降低。 同樣, 有研究者發(fā)現(xiàn)乳源DPP-IV 抑制肽LPYPY 在Caco-2 細(xì)胞單層模型中的降解產(chǎn)物YPY、LP、YP 的抑制活性均不如IPQVS,其中抑制活性最強(qiáng)的二肽YP 的酶抑制率相較于IPQVS 也下降了63%[18]。 當(dāng)然,也有特殊的肽被發(fā)現(xiàn),來自鳙魚蛋白的DPP-IV 抑制肽IADHFL 產(chǎn)生了相反的現(xiàn)象,其片段IADHF 不僅具有更好的DPP-IV 抑制活性,而且還具有減弱DPP-IV 基因表達(dá)的能力[8]。

    表1 IPQVS 及其降解產(chǎn)物的鑒定、抑制活性及PappTable 1 Amino acid reside sequence, IPQVS activity, and Papp value of IPQVS and its degradation products

    2.4 IPQVS 及其降解產(chǎn)物與DPP-IV 的分子對接

    分子對接實(shí)驗(yàn)結(jié)果揭示了IPQVS 及其降解產(chǎn)物與DPP-IV 之間的相互作用和關(guān)鍵結(jié)合位點(diǎn)信息。 表2 中詳細(xì)列出了4 條寡肽(IPQVS、PQVS、QVS 和VS)的分子建模參數(shù)與對接信息。 IPQVS 和DPP-IV 相互作用并形成的復(fù)合物具有最高的親和力絕對值。 4 條肽的結(jié)合能分別為-8.95、-7.99、-6.87、-8.24 kJ/mol。Pymol 3D 圖上標(biāo)記了分子間能量低于-2.0 kJ/mol 的結(jié)合位點(diǎn)(見圖5)。 IQPVS 與DPP-IV 的氨基酸殘基位點(diǎn)Arg125、Tyr631、His740、Glu205 和Glu206 形成了5 個(gè)氫鍵;此外,IPQVS 的N 端與Glu205 形成了離子鍵。IPQVS 的3 種降解產(chǎn)物和DPP-IV 之間的氨基酸殘基相互作用位點(diǎn)的數(shù)量相對于IPQVS 發(fā)生了減少, 特別是對于QVS,其氨基酸作用位點(diǎn)的數(shù)量最少(僅Glu205 和Glu206),見圖5(c)。IPQVS 活性在小腸細(xì)胞中衰減的現(xiàn)象與先前報(bào)道的DPP-IV 抑制肽ELHQEEPL 一致[19]。

    圖5 分子對接結(jié)果的Pymol 3D 圖Fig. 5 Pymol 3D graphs for the information of molecular docking

    表2 計(jì)算模型對接能量得分和相互作用結(jié)果Table 2 Computational-modeling energy scores and interaction results

    IPQVS 的降解產(chǎn)物PQVS、QVS 與DPP-IV 相互作用中的氫鍵、π-Cation(陽離子和芳香性體系之間的相互作用)數(shù)量減少,進(jìn)而導(dǎo)致它們與DPP-IV之間結(jié)合能的絕對值降低。說明IPQVS 在腸道吸收過程中無法維持其體外原有的DPP-IV 抑制活性,原因可能是Caco-2 細(xì)胞中包括二肽基肽酶在內(nèi)的氨基肽酶、內(nèi)肽酶等腸肽酶會破壞其原有結(jié)構(gòu)[20-21]。

    另外, 前文涉及的Caco-2 細(xì)胞實(shí)驗(yàn)與分子對接實(shí)驗(yàn)相結(jié)合的方法對DPP-IV 的篩選與鑒定具有快速、簡便且精準(zhǔn)的優(yōu)勢[15]。盡管模擬分子對接技術(shù)已作為標(biāo)準(zhǔn)化計(jì)算工具廣泛應(yīng)用于DPP-IV 抑制肽的篩選與研究中,但仍需通過體內(nèi)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證預(yù)測[22]。

    3 結(jié) 語

    基于Caco-2 細(xì)胞研究了DPP-IV 抑制肽IPQVS 的活性與小腸吸收機(jī)制, 主要從IPQVS 在Caco-2 細(xì)胞單層中的DPP-IV 抑制活性較體外化學(xué)底物法的測定結(jié)果顯著降低這一現(xiàn)象入手,揭示了其小腸吸收途徑、表觀滲透系數(shù),評價(jià)了其降解肽片段對DPP-IV 抑制活性的影響。 總體來說,Caco-2 細(xì)胞模型可被作為一種全面評價(jià)IPQVS 活性的有效生物技術(shù)與工具。

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