張彤彤,王 蒙,鄭玉杰,杜佳勉,王 昕
(西北農林科技大學 動物科技學院,陜西 楊凌 712100)
羊絨是山羊皮膚次級毛囊產生的無髓纖維[1],影響羊絨產量和品質的因素很多,其中次級毛囊數(shù)量和特性對羊絨生產具有重要影響。毛囊的發(fā)生起始于胚胎期,期間依賴于表皮和真皮間充質細胞間的相互作用,可分為誘導、結構形成與分化3個階段[2]。已有的研究表明,陜北白絨山羊毛囊在胚胎期65 d(E65)處于誘導階段,胚胎期120 d(E120)處于分化階段[3]。毛囊發(fā)生發(fā)育過程是眾多基因時空表達的過程,不僅受到信號、轉錄因子和表觀遺傳的調節(jié)[4-5],還受到microRNA (miRNA)的調控[6-8]。
MiRNA是一類內生的、長度約為20~24 nt的小RNA,其種子序列通過與靶mRNA的3' UTR區(qū)結合,導致靶mRNA的降解或翻譯起始的抑制,進而調控基因的表達[9]。近年來的大量研究表明, miRNA 參與毛囊的發(fā)生及周期性發(fā)育過程,如miR-140-5p[10]、miR-26a[11]和miR-29a[12]等。
課題組前期對陜北白絨山羊E65和E120的皮膚樣品進行miRNA測序,得到許多差異表達的miRNA,包括miR-199a-5p。已有研究表明,miR-199a-5p靶向調控cyclinB1促進小鼠角質細胞增殖[13]。由此推測,miR-199a-5p可能參與調控陜北白絨山羊毛囊的發(fā)生發(fā)育。為了進一步研究miR-199a-5p在陜北白絨山羊毛囊發(fā)生發(fā)育過程中的作用,本研究利用生物信息學方法對miR-199a-5p進行同源性分析及靶基因預測。通過雙熒光素酶報告系統(tǒng)和qPCR驗證miR-199a-5p與靶基因的靶向關系,為進一步研究陜北白絨山羊毛囊發(fā)生發(fā)育過程中miR-199a-5p調控作用的分子機制奠定基礎。
試驗用羊來自于陜西省榆林學院陜北白絨山羊工程技術研究中心。選擇6只2歲左右、體重基本相同的妊娠母羊,手術法采集胚胎期65 d和120 d的胎兒皮膚組織,將組織浸潤到RNA/DNA保護液中,-80 ℃低溫保存。毛乳頭細胞為新分離的陜北絨山羊原代細胞, HEK293T細胞和psiCHECK-2載體均系本實驗室保存。
從miRBase中檢索人(Homosapiens, hsa)、小鼠(Musmusculus, mmu)、大鼠(Rattusnorvegicus, rno)、山羊(Caprahircus, chi)、雞(Gallusgallus, gga)、馬(Equuscaballus, eca)、婆羅州猩猩(Pongopygmaeus, ppy)、黑猩猩(Pantroglodytes, ptr)、大猩猩(Gorillagorilla, ggo)、獼猴(Macacamulatta, mml)和豬(Susscrofa, ssc)等的miR-199a-5p序列,分析其保守性。
將TargetScan7.0 ( http://www.targetscan.org /vert _ 71 /)、PicTar ( http://pictar.mdcberlin.de /)和miRanda ( http://www.microrna.org /microrna/getDownloads.do)預測的miR-199a-5p的靶基因取交集,結合課題組前期轉錄組測序結果以及文獻報道,初步確定miR-199a-5p的靶基因為JUNB。
參照Chen等的方法設計miR-199a-5p莖環(huán)結構反轉錄引物,利用Primer Premier 6.0軟件設計miR-199a-5p、U6、JUNB和β-actin的qPCR引物,引物序列詳見表1。上述引物均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
表1 引物序列信息Table 1 Primer sequences information
HEK293T細胞和毛乳頭細胞復蘇后接種于培養(yǎng)皿中,待細胞長滿后用胰酶消化,然后分別用含10% FBS 的 DMEM和DMEM-F12培養(yǎng)基重懸細胞,后接種于6孔板。待細胞密度達到約70%~80%時,按照Lipofectamine 2000說明書轉染miR-199a-5p mimics /mimics NC和inhibitor/inhibitor NC至細胞。試驗共設4個組,每組3個重復,48 h后收集細胞,提取RNA。根據(jù)miRBase數(shù)據(jù)庫得到miR-199a-5p的成熟體序列,由上海吉瑪制藥技術有限公司設計合成miR-199a-5p mimic /mimics NC和inhibitor/inhibitor NC,序列信息詳見表2。
表2 miR-199a-5p相關序列信息Table 2 Information of miR-199a-5p related sequence
采用Trizol法提取皮膚和細胞總RNA后,將RNA稀釋到同一濃度,按照 PrimeScriptTMRT reagent Kit with gDNA Eraser(TaKaRa)試劑盒說明書反轉錄合成cDNA。使用SYBR Premix Ex Taq Ⅱ試劑盒(TaKaRa)進行實時熒光定量PCR(qPCR),每個樣本重復3次。 qPCR反應體系為15 μL:cDNA 1.2 μL,上、下游引物(10 μmol/L)各0.3 μL,2×SYBR Ex Taq Ⅱ 7.5 μL,ddH2O補足體系。qPCR反應程序:95 ℃ 3 min;95 ℃ 30 s,60 ℃ 30 s,共40個循環(huán)。分別以U6和β-actin為內參計算miRNA和mRNA的相對表達量。使用2-ΔΔCT法計算基因相對表達量,通過GraphPad Prism 7.0軟件的t-test檢驗分析數(shù)據(jù)并作圖。
以絨山羊皮膚組織DNA為模板,PCR擴增miR-199a-5p靶基因JUNB3' UTR序列,設計引物如下,F(xiàn):CCCTCGAGGACCTGAGGGCGCAACAAAC;R:ATTTGCGGCCGCTCCACAGTACGGTGCAGAGG。將擴增產物膠回收后和psiCHECK2質粒使用XhoⅠ和NotⅠ內切酶進行酶切,將擴增片段連接到psiCHECK2質粒上,構建重組質粒。
HEK293T細胞復蘇后接種于培養(yǎng)皿中,待細胞長滿后用胰酶消化,然后用含10% FBS 的 DMEM培養(yǎng)基重懸細胞后接種于48孔板。待細胞密度達到約70%~80%時,按照 Lipofectamine 2000說明書將miR-199a-5p mimics /mimics NC和inhibitor/inhibitor NC分別與JUNB3' UTR重組質粒兩兩共轉染至細胞。共設4個試驗組,每組3個重復。按照Dual-Luciferase? Reporter Assay System (Promega)試劑盒說明書進行細胞裂解和雙熒光素酶活性檢測。
通過SPSS統(tǒng)計分析軟件對基因表達水平進行差異顯著性檢驗,組間比較采用獨立樣本t檢驗法,后利用GraphPad Prism 7.0軟件進行作圖。結果以平均值±標準誤表示,P<0.05為差異顯著,P<0.01為差異極顯著。
通過qPCR技術檢測miR-199a-5p在絨山羊毛囊發(fā)生過程中不同階段的表達情況,結果表明miR-199a-5p在E65(誘導階段)高表達,E120(分化階段)低表達(P<0.05)(圖1)。
圖1 miR-199a-5p在絨山羊胚胎期65 d和120 d皮膚組織中的表達情況* 表示P<0.05, **表示P<0.01。下圖同F(xiàn)ig. 1 Expression of miR-199a-5p in the skin tissuesof cashmere goat embryos at 65 d and 120 d* indicate significant difference(P<0.05), ** indicatehighly significant difference(P<0.01). The same below
從表3中人、小鼠、大鼠、山羊、雞、馬、婆羅州猩猩、黑猩猩、大猩猩、獼猴和豬等物種的miR-199a-5p序列可以看出,miR-199a-5p在進化中非常保守,成熟體序列完全一致。
表3 不同物種的miR-199a-5p序列Table 3 Sequence of miR-199a-5p from different species
利用TargetScan、PicTar和miRanda預測miR-199a-5p的靶基因,取三者的交集共有151個基因(圖2A),合并已研究證實的60個靶基因[14-21](表4),共獲得193個基因。將靶基因集合與課題組胚胎期轉錄組測序數(shù)據(jù)聯(lián)合分析[3],取交集獲得88個靶基因(圖2B)。GO富集分析發(fā)現(xiàn)靶基因主要富集在細胞組分、細胞進程和大分子結合等過程(圖3),而 KEGG pathway富集分析發(fā)現(xiàn)這些靶基因主要富集在調節(jié)干細胞多能性、TNF及MAPK等通路上(圖4)。
圖2 miR-199a-5p靶基因預測情況A. 3種軟件預測miR-199a-5p的靶基因結果;B. 靶基因集合與轉錄組測序結果的聯(lián)合分析結果Fig. 2 Prediction of miR-199a-5p target genesA. Prediction results of miR-199a-5p target genes using 3 kinds of bioinformatics tools;B. Combined analysis of target gene set and transcriptome sequencing results
圖3 miR-199a-5p靶基因的GO富集分析結果Fig. 3 GO enrichment analysis results of miR-199a-5p target genes
圖4 miR-199a-5p靶基因的KEGG pathway分析結果Fig. 4 KEGG pathway enrichment analysis results of miR-199a-5p target genes
表4 研究證實的miR-199a-5p靶基因統(tǒng)計Table 4 Statistics of research confirmed miR-199a-5p target gene
將miR-199a-5p mimics /mimics NC和inhibitor/inhibitor NC轉染HEK293T細胞,轉染48 h后利用qPCR技術檢測,結果表明,mimics組與mimics NC組相比,miR-199a-5p的表達量極顯著升高(P<0.01);inhibitor組與inhibitor NC組相比,miR-199a-5p的表達量顯著降低(P<0.05)(圖5)。
圖5 轉染mimics/mimics NC和inhibitor/inhibitorNC后miR-199a-5p的表達情況Fig. 5 Expression of miR-199a-5p after transfection withmimics/mimics NC and inhibitor/inhibitor NC
由于轉錄因子JUNB在毛囊分化過程中起重要作用[3,22],因此將JUNB基因作為候選靶基因進一步研究。TargetScan分析表明,JUNB基因的3' UTR包含miR-199a-5p的結合位點(圖6A),PCR擴增JUNB基因3' UTR片段,長度為296 bp(圖6B)。將擴增的JUNB基因3' UTR片段克隆至psiCHECK2載體上,構建psiCHECK2-JUNB3' UTR重組載體。經(jīng)測序驗證(圖6C),雙熒光素酶報告載體構建成功。
圖6 psiCHECK2-JUNB 3' UTR載體構建A. miR-199a-5p與JUNB 3' UTR的結合位點;B. PCR擴增JUNB 3' UTR片段;C, psiCHECK2-JUNB 3' UTR載體測序結果M. DL5000 DNA Marker; 1. 絨山羊皮膚DNA的PCR產物;圖6C中顏色標記部分為PCR擴增JUNB基因3' UTR片段序列Fig. 6 psiCHECK2-JUNB 3'UTR vector constructionA. The binding site of miR-199a-5p and JUNB 3' UTR;B. PCR amplification of the JUNB 3' UTR fragment;C. psiCHECK2-JUNB 3' UTR vector sequencing resultsM. DL5000 DNA Marker; 1. PCR product from skin DNA of cashmere goat;fig. 6C, color labeled sequence of JUNB gene 3' UTR amplified by PCR
將psiCHECK2-JUNB3' UTR重組載體和miR-199a-5p mimics/mimics NC/inhibitor/inhibitor NC分別共轉染HEK293T細胞,每組設置3個重復,轉染48 h后按照雙熒光素酶報告系統(tǒng)試劑盒說明書進行細胞裂解和雙熒光素酶活性檢測。結果表明,miR-199a-5p-mimics+JUNB3' UTR共轉染組與對照組相比,熒光素酶活性顯著降低(P<0.05);miR-199a-5p inhibitor +JUNB3' UTR共轉染組與對照組相比,熒光素酶活性顯著升高(P<0.05),表明JUNB基因的3' UTR存在miR-199a-5p的結合位點,JUNB基因是miR-199a-5p的潛在靶基因(圖7)。
圖7 雙熒光素酶試驗檢測miR-199a-5p與JUNB 3'UTR的關系Fig. 7 The dual luciferase assay detected the relationshipbetween miR-199a-5p and JUNB 3' UTR
將miR-199a-5p mimics /mimics NC和inhibitor/inhibitor NC轉染至毛乳頭細胞中,通過qPCR檢測靶基因JUNB的表達量。結果表明,mimics組與mimics NC組相比,JUNB的表達量極顯著下降(P<0.01);inhibitor組與inhibitor NC組相比,JUNB的表達量顯著升高(P<0.05),即miR-199a-5p抑制JUNB基因的表達(圖8)。
毛囊是皮膚組織重要的附屬可再生器官,控制著動物毛發(fā)的生長、品質和產量[23]。毛囊發(fā)生始于早期的胚胎階段,表皮與真皮間充質細胞之間相互作用,期間毛囊形態(tài)學變化較為復雜,可分為誘導、結構形成和分化3個階段[2]。已有研究表明,miRNA在毛囊發(fā)生發(fā)育過程中起關鍵作用。miR-30b-5p通過靶向CaMKIIδ抑制毛乳頭細胞的增殖,進而參與絨山羊毛囊發(fā)育[24]。miR-218-5p通過靶向SFRP2增強Wnt信號通路活性,并在皮膚和毛囊發(fā)育過程中發(fā)揮動態(tài)調控作用[25]。miR-148a和miR-10a抑制真皮乳頭細胞增殖,并且靶向調控BMP7基因[26]。
研究表明,在人類皮膚鱗狀細胞癌中,miR-199a-5p 過表達可抑制皮膚角質形成細胞的增殖,并下調靶基因Bcam、Fzd6和Ddr1的表達[27]。但miR-199a-5p的研究大多集中于人和小鼠,在山羊上的研究較少。課題組前期對陜北白絨山羊胚胎期皮膚組織進行了miRNA測序,發(fā)現(xiàn)miR-199a-5p在胚胎期65 d的表達量較高,在120 d的表達量較低。本研究利用qPCR技術檢測miR-199a-5p在陜北白絨山羊胎兒皮膚組織中的表達情況,結果與測序結果相一致,提示miR-199a-5p可能在毛囊發(fā)生發(fā)育過程中起重要作用。通過對多個物種間miR-199a-5p序列進行對比,發(fā)現(xiàn)miR-199a-5p在多個物種中序列高度保守,提示其可能在山羊上具有重要的生物學功能。
miRNA通常與靶基因mRNA 3′UTR結合,以負調控的方式作用于靶基因,繼而發(fā)揮其調控作用[28]。本研究對miR-199a-5p的靶基因進行預測和篩選,并進行功能富集分析,發(fā)現(xiàn)其靶基因顯著富集于調控干細胞多能性、TNF及MAPK信號通路等。TNF家族參與毛囊的發(fā)生發(fā)育,其家族成員Eda及其受體Edar發(fā)揮主要調控作用,誘導毛囊發(fā)生并維持基板結構[29],推測miR-199a-5p可能通過調控TNF信號通路相關基因的表達影響毛囊的發(fā)生。MAPK信號通路在細胞增殖、分化和遷移等多種生理學過程中發(fā)揮調控作用,且在真核生物中高度保守[30]。有研究發(fā)現(xiàn)MAPK信號通路在毛囊干細胞的自我更新中起重要作用[31],推測miR-199a-5p能夠通過調控MAPK信號通路參與毛囊的生長發(fā)育。
轉錄因子JUNB是二聚體轉錄因子AP-1(activator protein-1, 激活蛋白-1)家族的成員,是構成轉錄激活蛋白 AP-1的重要亞基。已有研究表明糖皮質激素受體在多種細胞類型(包括角質形成細胞)中與轉錄因子JUNB結合并抑制其表達,能夠顯著影響毛囊的發(fā)育[22]。本研究以JUNB基因作為miR-199a-5p的潛在靶標,研究miR-199a-5p在毛囊分化過程中的重要作用,發(fā)現(xiàn)miR-199a-5p能夠靶向下調JUNB的表達,提示miR-199a-5p可能通過調控JUNB的表達參與毛囊的分化。但miR-199a-5p在毛囊發(fā)生發(fā)育中的功能尚不清楚,有待研究。
本研究利用qPCR技術檢測到miR-199a-5p在絨山羊毛囊發(fā)生不同階段中差異表達,并通過生物信息學對miR-199a-5p的靶基因進行預測和分析。從中篩選并鑒定JUNB基因是miR-199a-5p的靶基因。這些結果為進一步研究miR-199a-5p調控陜北白絨山羊毛囊發(fā)生發(fā)育奠定基礎。