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    泡沫分離法純化葫蘆巴中薯蕷皂苷及抗氧化性的研究

    2021-12-21 05:22:02王志娟甘文梅乜世成
    中國(guó)糧油學(xué)報(bào) 2021年11期
    關(guān)鍵詞:葫蘆巴裝液氣速

    王志娟 張 煒 甘文梅 乜世成 高 紅 宋 林

    (青海師范大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,西寧 810008)

    葫蘆巴(Trigonellafoenum-graeeum, L.),又名大葉蕓香草、香苜蓿,是一種生存力極強(qiáng)的一年生草本植物,系豆科植物蝶形花亞科[1],它起源于南歐、西亞和地中海地區(qū),自古以來(lái)被用作香料及調(diào)味劑[2]。葫蘆巴種子具有祛寒除濕、溫腎補(bǔ)陽(yáng)、抗腫瘤、降血糖等多種藥用價(jià)值,已被多版《中國(guó)藥典》收錄[3]。隨著葫蘆巴膠和葫蘆巴薯蕷皂素資源的開(kāi)發(fā),葫蘆巴被廣泛應(yīng)用于食品工業(yè)[4]。

    葫蘆巴種子中含有多種營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)和活性成分,其中,薯蕷皂苷為主要化學(xué)成分[5],具有舒筋活血、消食利水、脫敏、抗炎、抗腫瘤、抗病毒、抗氧化等作用[6]。因薯蕷皂苷提取液中雜質(zhì)較多,產(chǎn)品純度低,需經(jīng)純化才能對(duì)其進(jìn)行后續(xù)產(chǎn)品的開(kāi)發(fā)。皂苷是一種優(yōu)良的天然非離子型表面活性成分,具有親水性的糖體和疏水性的皂苷元,因此具有良好的起泡性,泡沫分離法(foam separation)作為一種基于溶液中溶質(zhì)組分間表面活性的差異進(jìn)行分離的新型技術(shù),因具有設(shè)備簡(jiǎn)單和適于大規(guī)模工業(yè)化生產(chǎn)等優(yōu)點(diǎn),已被成功應(yīng)用于蛋白質(zhì)、皂苷及中藥有效成分的分離富集[7,8]。

    本實(shí)驗(yàn)以利用超高壓提取技術(shù)提取出的薯蕷皂苷溶液為原料,富集比和回收率作為評(píng)價(jià)指標(biāo),通過(guò)單因素實(shí)驗(yàn)及Box-Behnken響應(yīng)面優(yōu)化實(shí)驗(yàn),確定出最佳條件,并對(duì)其體外抗氧化活性進(jìn)行研究,為葫蘆巴中薯蕷皂苷的藥理活性研究提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    葫蘆巴種子:西寧市九康藥材市場(chǎng) (經(jīng)青海省食品藥品檢定所鑒定);薯蕷皂苷標(biāo)準(zhǔn)品、無(wú)水乙醇(AR)、香草醛(AR)、高氯酸(AR)、冰醋酸(AR)。

    GX-04多功能粉碎機(jī),101A-1E 電熱鼓風(fēng)干燥箱,BSA224S-CW 電子天平,TU-1901 雙光束紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì),IKA旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,實(shí)驗(yàn)室自制泡沫分離裝置如圖1所示。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 工藝流程

    1.2.2 葫蘆巴中薯蕷皂苷泡沫分離的評(píng)價(jià)指標(biāo)

    采用香草醛-高氯酸顯色法[9]對(duì)葫蘆巴中薯蕷皂苷的濃度進(jìn)行測(cè)定,分別按式(1)、式(2)計(jì)算葫蘆巴中薯蕷皂苷的的回收率和富集比。

    (1)

    圖1 泡沫分離裝置圖

    (2)

    式中:ρf、ρs為泡沫層、殘留層中薯蕷皂苷的質(zhì)量濃度/μg/mL,V0、Vs、Vf為原液、殘留層、泡沫層的體積/mL。

    1.2.3 泡沫分離葫蘆巴中薯蕷皂苷單因素實(shí)驗(yàn)

    1.2.3.1 上樣濃度對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響

    在裝液量為350 mL,氣速為500 mL/min,溫度為30 ℃條件下進(jìn)行泡沫分離操作,考察上樣質(zhì)量濃度在0.01、0.02、0.03、0.04、0.05 mg/mL時(shí)對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響。

    1.2.3.2 溫度對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響

    在裝液量為350 mL,氣速為500 mL/min,上樣質(zhì)量濃度為0.04 mg/mL條件下進(jìn)行泡沫分離操作,考察溫度在25、30、35、40、45 ℃時(shí)對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響。

    1.2.3.3 氣速對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響

    在裝液量為350 mL,溫度為30 ℃,上樣質(zhì)量濃度為0.04 mg/mL條件下進(jìn)行泡沫分離操作,考察溫度在350、400、450、500、550 mL/min時(shí)對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響。

    1.2.3.4 裝液量對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響

    在氣速為500 mL/min,溫度為30 ℃,上樣質(zhì)量濃度為0.04 mg/mL條件下進(jìn)行泡沫分離操作,考察裝液量在350、350、350、350、350 mL時(shí)對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響。

    1.2.4 Box-Behnken響應(yīng)面優(yōu)化實(shí)驗(yàn)

    根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,設(shè)計(jì)了以保壓時(shí)間(A)、保壓壓力(B)、乙醇體積分?jǐn)?shù)(C)、固液比(D)為因素,薯蕷皂苷的回收率和富集比為指標(biāo),采用響應(yīng)面Box-Behnken中心組合實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)優(yōu)化方案,因素水平設(shè)計(jì)表見(jiàn)表1。

    表1 因素水平設(shè)計(jì)表

    1.2.5 體外抗氧化活性測(cè)定

    1.2.5.1 DPPH自由基清除能力的測(cè)定

    參考王雅等[10]的方法,將未純化的提取液、純化的提取液、VC分別稀釋成0.01、0.02、0.03、0.04、0.05 mg/mL溶液備用。取0.025 mg/mL DPPH 溶液2.5 mL與2.5 mL無(wú)水乙醇混合,測(cè)定溶液在 517 nm的吸光值(A0);精確吸取上述不同質(zhì)量濃度的待測(cè)液 2.5 mL與質(zhì)量濃度0.025 mg/mL的 DPPH 溶液2.5 mL 混合,搖勻后放置30 min,測(cè)定上述溶液在最大吸收峰處吸光值(Ai);精確吸取上述不同質(zhì)量濃度的待測(cè)液2.5 mL,分別與2.5 mL 無(wú)水乙醇混合均勻后,測(cè)定各溶液在最大吸收峰波長(zhǎng)處的吸光值(Aj)。按式(3)計(jì)算清除率。

    (3)

    1.2.5.2 羥自由基清除能力的測(cè)定

    參考盧彬等[11]的方法,將未純化的提取液、純化的提取液、VC分別稀釋成0.01、0.02、0.03、0.04、0.05 mg/mL溶液備用。取待測(cè)液2 mL,然后精確加入2 mL水楊酸-乙醇溶液(9 mmol/L),2 mL 硫酸亞鐵溶液(9 mmol/L),2 mL H2O2溶液(8.8 mmol/L),混勻后在37 ℃下避光反應(yīng)30 min,510 nm處測(cè)其吸光值(Ai)。同時(shí)將對(duì)照將2 mL H2O2溶液換成2 mL蒸餾水,測(cè)其吸光值(Aj);空白組將2 mL樣品溶液換成2 mL蒸餾水,測(cè)其吸光值(A0)。按式(4)計(jì)算清除率。

    (4)

    1.2.5.3 超氧陰離子清除能力的測(cè)定

    參考盧彬等[12]的方法,將未純化的提取液、純化的提取液、VC分別稀釋成0.01、0.02、0.03、0.04、0.05 mg/mL溶液備用。取待測(cè)液1 mL,依次加入50 mmol/L Tris-HCl (pH 8.2) 緩沖溶液4.5 mL,充分混勻之后在37 ℃的水浴中10 min后,移取0.4 mL鄰苯三酚溶液并搖勻,當(dāng)反應(yīng)達(dá)到4 min后用1.0 mL濃鹽酸終止反應(yīng)(A1)。空白組將1 mL待測(cè)液換成1 mL蒸餾水,測(cè)其吸光值(A0)。按式(5)計(jì)算清除率。

    (5)

    1.2.5.4總還原能力的測(cè)定

    參考?xì)W陽(yáng)凱等[13]的方法,將未純化的提取液、純化的提取液、VC分別稀釋成0.01、0.02、0.03、0.04、0.05 mg/mL溶液備用。取 1 mL待測(cè)液,依次加入pH 6.6,0.2 mol/L 的磷酸緩沖液 2.5 mL,1%鐵氰化鉀溶液 2.5 mL,混勻,50 ℃ 水浴 20 min,加入 10%三氯乙酸溶液2.5 mL,取2.5 mL 上清液,加入蒸餾水2.5 mL,10%三氯化鐵溶液,700 nm 測(cè)定吸光度,以吸光值的大小來(lái)表示樣品還原能力的大小。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果

    2.1.1 上樣濃度對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響

    上樣濃度對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響如圖2所示,富集比隨濃度的增大而逐漸降低,而回收率隨濃度的增大而逐漸升高。當(dāng)溶液濃度較低時(shí),泡沫穩(wěn)定性較差,溶液黏度較小,泡沫持液率較低[14,15],因此呈現(xiàn)富集比高而回收率低的現(xiàn)象。隨著溶液濃度的不斷增大泡沫穩(wěn)定性逐漸提高,同時(shí)溶液的黏度不斷增大,泡沫夾帶率變高,液體不易回流[16],因此回收率逐漸升高。

    圖2 濃度對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響

    2.1.2 溫度對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響

    溫度對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響如圖3所示,富集比隨溫度的升高先增大后減小,回收率不斷減小。當(dāng)溫度較低時(shí),溶液黏度及泡沫穩(wěn)定性高,泡沫具有較高持液率,因此回收率較高[17]。當(dāng)溫度較高時(shí),泡沫持液率降低,泡沫層夾帶的薯蕷皂苷含量降低,因此回收率降低[18]。

    圖3 溫度對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響

    2.1.3 氣速對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響

    氣速對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響如圖4所示,隨著氣速的增加,富集比不斷降低,回收率先升高后降低。當(dāng)氣速較低時(shí),泡沫在分離柱中停留的時(shí)間較長(zhǎng),氣泡并聚、排液較充分,可攜帶出的薯蕷皂苷較少,因此富集比高,回收率低。當(dāng)氣速增大時(shí),泡沫的生成速度及上升速度加快,持液率較高,因此,回收率升高[19]。

    圖4 氣速對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響

    圖5 裝液量對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響

    2.1.4 裝液量對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響

    裝液量對(duì)泡沫分離薯蕷皂苷的影響如圖5所示,當(dāng)裝液量較少時(shí),泡沫在分離柱中停留的時(shí)間較長(zhǎng),泡沫中攜帶的薯蕷皂苷較大程度上回流至原液中,因此,富集比升高。而當(dāng)裝液量增加時(shí),泡沫的持液率較高,泡沫中的夾帶液在回流前被鼓出來(lái),因此,回收率升高[20]。

    2.2 響應(yīng)面優(yōu)化實(shí)驗(yàn)結(jié)果

    2.2.1 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和結(jié)果

    選取濃度(A)、溫度(B)、氣速(C)、裝液量(D)進(jìn)行四因素三水平的Box-Behnken響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì),響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果見(jiàn)表2。

    表2 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果

    2.2.2 回歸模型的建立與檢驗(yàn)

    對(duì)表2進(jìn)行多元線性回歸擬合后,得到回歸方程并對(duì)此方程進(jìn)行方差分析,方差分析結(jié)果,富集比的線性回歸表見(jiàn)表3和表回收率的線性回歸表見(jiàn)4。富集比(E)=+1.85-0.83A+ 0.15B-0.52C-0.21D-0.040AB+0.32AC+0.21AD-0.017BC+0.070BD+0.080CD-1.083E-003A2-0.050B2+0.23C2+0.50D2;回收率(R)=+89.13+2.69A+1.96B+0.87C+1.19D-0.54AB-3.02AC-4.24AD+ 2.62BC-6.70BD-5.33CD-1.50A2-6.80B2-1.89C2-3.11D2。

    表3 富集比的線性回歸表

    表4 回收率的線性回歸表

    2.2.3 響應(yīng)曲面分析及最佳工藝條件的確定

    利用Design-Experter 8.0.6軟件對(duì)葫蘆巴中薯蕷皂苷的純化工藝條件進(jìn)行優(yōu)化,得到最佳純化工藝參數(shù)為:上樣濃度0.03 mg/mL,溫度28.36 ℃,氣速450 mL/min,裝液量400 mL,在此條件下,薯蕷皂苷的回收率為88.31%,富集比為3.65。為驗(yàn)證預(yù)測(cè)模型的可靠性,從實(shí)際情況出發(fā),將最佳工藝條件進(jìn)行調(diào)整:上樣質(zhì)量濃度0.03 mg/mL,溫度28 ℃,氣速450 mL/min,裝液量400 mL。在此條件下,薯蕷皂苷的回收率為86.57%,富集比為3.82,接近其預(yù)測(cè)值,說(shuō)明由Design-Expert 8.0.6設(shè)計(jì)軟件得到的最佳工藝條件可行。

    2.3 體外抗氧化活性分析

    2.3.1 薯蕷皂苷對(duì)DPPH自由基的清除能力

    圖6 薯蕷皂苷對(duì)DPPH自由基的清除能力

    薯蕷皂苷對(duì)DPPH自由基的清除能力如圖6所示,未純化的薯蕷皂苷、純化后的薯蕷皂苷、VC對(duì)DPPH自由基的清除能力隨而增強(qiáng),與李霄等[21]的結(jié)論一致。在0.01~0.05 mg/mL范圍內(nèi),VC對(duì)DPPH自由基的清除率最高,但當(dāng)溶液質(zhì)量濃度達(dá)0.05 mg/mL時(shí),純化后的薯蕷皂苷對(duì)DPPH自由基的清除效果與VC相接近。

    2.3.2 薯蕷皂苷對(duì)羥自由基的清除能力

    薯蕷皂苷對(duì)羥自由基的清除能力如圖7所示,在0.02~0.04 mg/mL范圍內(nèi),未純化的薯蕷皂苷與純化后的薯蕷皂苷對(duì)羥自由基的清除效果相接近,與VC相比略低。

    圖7 薯蕷皂苷對(duì)羥自由基的清除能力

    2.3.3 薯蕷皂苷對(duì)超氧陰離子的清除能力

    薯蕷皂苷對(duì)超氧陰離子的清除能力如圖8所示,薯蕷皂苷對(duì)超氧陰離子的清除能力隨濃度的增大而增加,這與王占一等[22]的研究結(jié)果一致。但在所測(cè)濃度范圍內(nèi),VC對(duì)超氧陰離子的清除效果明顯高于薯蕷皂苷。

    圖8 薯蕷皂苷對(duì)超氧陰離子的清除能力

    圖9 薯蕷皂苷的總還原能力

    2.3.4 薯蕷皂苷的總還原能力

    薯蕷皂苷的總還原能力如圖9所示,在較低濃度時(shí),純化后的薯蕷皂苷與VC的總還原能力極其吻合。吸光度值越大,表明總還原能力越強(qiáng),薯蕷皂苷的總還原能力隨濃度的增大而增加,這與鄒小靈等[23]的研究結(jié)果一致。當(dāng)純化后的薯蕷皂苷質(zhì)量濃度達(dá)到0.04 mg/mL,總還原能力趨于平緩,低于VC但高于未純化的薯蕷皂苷。

    薯蕷皂苷的總還原能力如圖10所示,在較低濃度時(shí),純化后的薯蕷皂苷與VC的總還原能力極其吻合。吸光度值越大,表明總還原能力越強(qiáng),薯蕷皂苷的總還原能力隨濃度的增大而增加,這與鄒小靈等[23]的研究結(jié)果一致。當(dāng)純化后的薯蕷皂苷濃度達(dá)到0.04 mg/mL,總還原能力趨于平緩,低于VC但高于未純化的薯蕷皂苷。

    3 結(jié)論

    本實(shí)驗(yàn)以葫蘆巴中薯蕷皂苷為研究對(duì)象,采用響應(yīng)面設(shè)計(jì)試驗(yàn)優(yōu)化泡沫分離法純化葫蘆巴中薯蕷皂苷的工藝條件,得出最佳工藝條件為:上樣質(zhì)量濃度0.03 mg/mL,溫度28 ℃,氣速450 mL/min,裝液量400 mL,在此條件下,薯蕷皂苷的回收率為86.57%,富集比為3.82。其體外抗氧化活性研究結(jié)果表明,經(jīng)純化后的薯蕷皂苷對(duì)DPPH·、·OH、超氧陰離子有較好的清除效果,具有較強(qiáng)的還原能力,且體外抗氧化活性與皂苷質(zhì)量濃度相關(guān)性顯著。

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