陳二方 常會(huì)敏 安曉剛 邱建華 查定軍
摘要 [目的] 建立一種更適用于活體斑馬魚成像的固定方法,為活體斑馬魚成像研究提供技術(shù)支持。[方法]通過比較4種不同的斑馬魚體位固定方法及成像觀察效果,觀察不同固定方法的可操作性和成像觀察效果。[結(jié)果]使用6%甲基纖維素固定時(shí),對(duì)斑馬魚進(jìn)行拍照時(shí)容易產(chǎn)生擺動(dòng);使用0.05%MS-222固定時(shí),斑馬魚很難保持合適的體位;使用1%的低熔點(diǎn)瓊脂糖,相對(duì)費(fèi)時(shí); 使用6%甲基纖維素/0.05%MS-222固定時(shí),既可以使斑馬魚保持濕潤的環(huán)境,又可以保持理想的靜止?fàn)顟B(tài)。[結(jié)論]通過比較4種固定方法發(fā)現(xiàn),使用6%甲基纖維素/0.05%MS-222固定斑馬魚仔魚可操作性最好,該方法可為斑馬魚活體研究提供良好的活體成像觀察保障,有助于獲取高質(zhì)量的活體成像圖片。
關(guān)鍵詞 斑馬魚;活體成像;甲基纖維素;固定方法
中圖分類號(hào) S 917.4? 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A? 文章編號(hào) 0517-6611(2021)23-0124-03
doi:10.3969/j.issn.0517-6611.2021.23.033
A New Fixation Method for in vivo Imaging and Observation of Zebrafish
CHEN Er-fang1, CHANG Hui-min2, AN Xiao-gang1 et al
(1.Otolaryngology,Head and Neck Surgery, Xijing Hospital, PLA Air Force Military Medical University,Xi’an, Shaanxi 710032; 2. Department of Otolaryngology,Head and Neck Surgery,The First Affiliated Hospital of Xi’an Medical University,Xi’an,Shaanxi 710077)
Abstract [Objective] To introduce a new fixation method for in vivo imaging of zebrafish, and provide technical supports for in vivo imaging research of zebrafish.[Method] Though comparing the position fixation methods and imaging observation effects of four different methods, the feasibility and imaging observation effects of different fixation methods were observed.[Result]6% methyl cellulose fixation method was used, it was easy to produce wobble in the process of taking pictures. When zebrafish was fixed with 0.05%MS-222, it was difficult to maintain the proper position.When 1% agarose with a low melting point was used, it was relatively time-consuming. When 6% methyl-cellulose /0.05%MS-222 were used for the fixation, it could not only keep zebrafish in a moist environment, but it could maintain an ideal static state. [Conclusion] By comparing four fixation methods, it was found that fixing zebrafish with 6% methylcellulose /0.05%MS-222 were the most maneuverable.This method could provide a good in vivo imaging observation guarantee for in vivo research of zebrafish, and it was helpful to obtain? in vivo imaging pictures with high-quality.
Key words Zebrafish;In vivo imaging;Methyl cellulose;Fixation method
基金項(xiàng)目 國家自然科學(xué)基金面上項(xiàng)目(81870732);學(xué)科助推計(jì)劃-先進(jìn)學(xué)科建設(shè)項(xiàng)目(XJZT18X23)。
作者簡介 陳二方(1984—),女,安徽宿州人,技師,碩士,從事耳聾的基礎(chǔ)研究。通信作者,教授,博士,從事耳科基礎(chǔ)與臨床研究。
收稿日期 2021-07-28
斑馬魚作為一種熱帶魚,胚胎發(fā)育速度快、養(yǎng)殖成本低、能大規(guī)模繁育[1-3]。研究發(fā)現(xiàn),斑馬魚基因與人類基因的相似度在70%以上[4],因此它受到生物學(xué)家的重視,已經(jīng)成為最受重視的脊椎動(dòng)物發(fā)育生物學(xué)研究的動(dòng)物模型之一[5]。目前全球范圍內(nèi)有超過1 500個(gè)斑馬魚實(shí)驗(yàn)室,我國有300個(gè)以上的實(shí)驗(yàn)室利用斑馬魚開展相關(guān)試驗(yàn)[6]。
斑馬魚體表含有神經(jīng)丘毛細(xì)胞,同時(shí)內(nèi)耳也存在毛細(xì)胞,常被用于內(nèi)耳毛細(xì)胞損傷與保護(hù)的試驗(yàn)研究中。但是,在斑馬魚動(dòng)物模型造模過程中,對(duì)斑馬魚毛細(xì)胞進(jìn)行特異性染料標(biāo)記后發(fā)現(xiàn),如何固定斑馬魚使其在激光共聚焦顯微鏡、體式顯微鏡下成像觀察及拍照、獲取高質(zhì)量的圖片尤為重要。筆者通過比較4種活體斑馬魚成像觀察的固定方法,嘗試找出一種最佳適用于活體斑馬魚成像觀察的固定方法。
1 材料與方法
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物
AB品系野生型斑馬魚在中國人民解放軍空軍軍醫(yī)大學(xué)第一附屬醫(yī)院耳鼻咽喉頭頸外科全軍航空航天醫(yī)學(xué)內(nèi)耳研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室養(yǎng)育,并進(jìn)行繁育傳代;斑馬魚在28.5 ℃恒溫環(huán)境中生長,光照∶黑暗時(shí)間為14∶10,胚胎用胚胎培養(yǎng)液培養(yǎng),養(yǎng)殖方法參照《Zebrafish Book》(http://www.zfin.org)常規(guī)方法進(jìn)行。
1.2 試驗(yàn)材料與設(shè)備
試驗(yàn)材料:甲基纖維素(M6385,Sigma);苯基硫脲(P7629,Sigma);低熔點(diǎn)瓊脂糖(A9414,Sigma);乙基3-氨基苯甲酸酯甲烷磺酸鹽(MS-222,A5040);氫氧化鈉購自天津市天力化學(xué)試劑有限公司;突觸素TMC4(FM1-43,Sigma,S6814)。主要設(shè)備:激光共聚焦顯微鏡(FV-1000,奧林巴斯,日本);體式顯微鏡(M205 FA,萊卡,德國);精密電子天平(Sartorius,德國);GZX型光照培養(yǎng)箱(北京中興偉業(yè));愛生斑馬魚養(yǎng)殖系統(tǒng)。
1.3 胚胎養(yǎng)殖
在交配前一晚,在交配盒中按照雌雄比1∶1或1∶2配魚(圖1)。交配當(dāng)日,抽掉交配盒中間的隔離擋板,讓雌、雄魚互相追逐,產(chǎn)下胚胎,并收集胚胎。收集過程中去除死卵及糞便等,將胚胎置于胚胎培養(yǎng)液中,放置在28.5 ℃的光照培養(yǎng)箱中,待發(fā)育至24 hpf(hours post fertilization)時(shí),換成0.003%的苯基硫脲(PTU)溶液,其作用是抑制黑色素形成,排除其對(duì)活體成像的干擾。
1.4 6%甲基纖維素/0.05% MS-222的配制
將MS-222配制成5%的儲(chǔ)存液,使用時(shí)濃度稀釋至0.05%。將140 mL 0.05% MS-222置于磁力攪拌器上加熱至沸騰,將12 g甲基纖維素緩慢加入,一邊加入一邊用玻璃棒攪拌,以促使其溶解,繼續(xù)攪拌3 min左右,直至甲基纖維素充分溶解分散,加入3~5滴5 moL/L的NaOH溶液,促使其溶解,在此期間繼續(xù)攪拌,此時(shí)溶液逐漸呈乳白色;將溶液和預(yù)先放置在冰箱冷藏室中的60 mL 0.05% MS-222充分混合、預(yù)冷,溶液顏色從乳白色變成半透明色,繼續(xù)將溶液放置在制冰機(jī)或者冷凍中,處理2 h左右,溶液變成透明的淡黃色。
1.5 FM1-43染色
首先將FM1-43配制成10 mg/mL的儲(chǔ)存液,避光冷凍儲(chǔ)存,使用時(shí)稀釋成濃度3 μmoL/L。將發(fā)育至5 dpf(days post fertilization)的斑馬魚仔魚,置于6孔板上,吸除斑馬魚養(yǎng)殖用水,加入5 mL 3 μmoL/L的FM1-43,避光染色10 min;最后,吸除染液,用斑馬魚養(yǎng)殖用水洗滌3次,每次10 min,采用不同的固定方法將仔魚固定在共聚焦培養(yǎng)皿或者凹玻片上,顯微鏡下成像觀察及拍照。
2 結(jié)果與分析
2.1 4種固定活體斑馬魚方法的比較
用一次性的巴氏吸
管將發(fā)育至5 dpf的斑馬魚仔魚從養(yǎng)殖盒中緩緩吸出,置于凹
玻片或共聚皿上,用濾紙條將多余的水分吸除。使用以下4種固定方法分別固定斑馬魚仔魚,見表1。①使用巴氏吸管將預(yù)先配制好的6%甲基纖維素滴在仔魚上,用牙探針或鑷子將斑馬魚調(diào)整至合適的成像體位。甲基纖維素具有一定的黏性,可使魚體擺放成特定的成像體位,但支撐力度欠缺,在拍照過程中會(huì)有輕微擺動(dòng),影響拍照效果。②使用移液器將0.05%MS-222吸出,滴加在仔魚上,用上述同樣方法調(diào)整體位,仔魚在麻醉劑的作用下保持靜止,但是由于缺乏支撐,很難將仔魚擺放成適合拍照的體位,且在拍照過程中,由于載物臺(tái)的移動(dòng),體位容易改變。③將配制的1%低熔點(diǎn)瓊脂糖冷卻至30 ℃以下后,用巴氏吸管吸出,滴在斑馬魚上,用工具調(diào)整好體位,等待瓊脂糖凝固。該方法的優(yōu)點(diǎn)是可以給仔魚提供適宜的濕度及支撐,缺點(diǎn)是此瓊脂糖在65 ℃左右會(huì)溶解,在26~30 ℃下會(huì)凝結(jié),溫度不好控制。溫度過高時(shí)容易造成仔魚死亡,溫度過低時(shí)瓊脂糖凝結(jié)較快,不方便固定。④使用巴氏吸管將6%甲基纖維素/0.05%MS-222滴加在斑馬魚仔魚上,按照同樣方法調(diào)整體位。此方法不僅可快速固定斑馬魚仔魚,而且甲基纖維素提供的濕度可使仔魚存活相當(dāng)長的時(shí)間。另外,MS-222可使仔魚麻醉,并保持靜止?fàn)顟B(tài),方便成像觀察及拍照記錄。通過比較上述4種固定方法發(fā)現(xiàn),使用6%甲基纖維素/0.05%MS-22固定斑馬魚仔魚的方法更具優(yōu)勢(shì),可操作性更強(qiáng),更適用于活體斑馬魚成像觀察。
2.2 甲基纖維素/MS-222聯(lián)合固定仔魚結(jié)果
將斑馬魚仔魚包埋在含0.05%MS-222的6%甲基纖維素中,仔魚可在較長時(shí)間內(nèi)保持相同的姿勢(shì),同時(shí)甲基纖維素也不會(huì)影響成像觀察及拍照視野。無論使用激光共聚焦拍照(圖2),還是使用體式顯微鏡拍照(圖3),均能取得較滿意的拍攝效果。
3 討論
近年來斑馬魚動(dòng)物模型常被用于發(fā)育、毒理等方面的研究中[7-10]。由于斑馬魚具有與哺乳動(dòng)物類似功能的內(nèi)耳結(jié)構(gòu),且其體表側(cè)線上分布著感受聲音、震動(dòng)及水流等的神經(jīng)丘毛細(xì)胞,所以斑馬魚越來越受到耳科領(lǐng)域研究者的青睞。另外,斑馬魚毛細(xì)胞是可以再生的,且具有胚胎產(chǎn)量多、發(fā)育快等優(yōu)點(diǎn),因此被越來越廣泛應(yīng)用于內(nèi)耳毛細(xì)胞損傷及保護(hù)性藥物篩選中。Vlasits等[11]利用斑馬魚動(dòng)物模型,從FDA批準(zhǔn)的藥物庫中篩選出可以保護(hù)毛細(xì)胞免受順鉑和氨基糖苷類藥物損傷的化合物。Namdaran等[12]用新霉素?fù)p傷斑馬魚側(cè)線神經(jīng)丘,建立毛細(xì)胞損傷與再生模型,從1 680種化合物中篩選出地塞米松、強(qiáng)的松龍2種可以促進(jìn)再生的化合物和氟苯達(dá)唑、拓?fù)涮婵档?種抑制再生的化合物。
然而,在斑馬魚動(dòng)物模型造模成功后,如何對(duì)斑馬魚進(jìn)行良好的體位固定,以便觀察成像及獲取理想的圖片成為研究學(xué)者亟待解決的問題。傳統(tǒng)固定活體斑馬魚的方法主要包括:①先用麻藥將魚麻醉,再用甲基纖維素固定[13];②單純使用魚麻醉劑(MS-222)麻醉[14];③使用低熔點(diǎn)瓊脂糖固定[15]。有些試驗(yàn)研究并未提及使用的具體固定方法。該研究采用4種不同的固定方法,比較其在斑馬魚活
體成像研究中的固定效果,結(jié)果發(fā)現(xiàn)使用6%甲基纖維素/
0.05%MS-222固定方法較其他3種固定方法更為有效,使
用固定液無須現(xiàn)配現(xiàn)
用,固定仔魚所需時(shí)間短,操作過程中魚體位不易變化,且仔
魚不容易震動(dòng)。這種固定方法可操作性更強(qiáng),更適用于活體斑馬魚成像觀察,為活體斑馬魚成像觀察研究建立了一種新方法。
參考文獻(xiàn)
[1] VARGAS R A,SARMIENTO K,VSQUEZ I C.Zebrafish(Danio rerio):A potential model for toxinological studies[J].Zebrafish,2015,12(5):320-326.
[2] HOLTZMAN N G,IOVINE M K,LIANG J O,et al.Learning to fish with genetics:A primer on the vertebrate model Danio rerio[J].Genetics,2016,203(3):1069-1089.
[3] GRUNWALD D J,EISEN J S.Headwaters of the zebrafish-emergence of a new model vertebrate[J].Nature reviews genetics,2002,3(9):717-724.
[4] HOWE K,CLARK M D,TORROJA C F,et al.The zebrafish reference genome sequence and its relationship to the human genome[J].Nature,2013,496(7446):498-503.
[5] 李雯,何英姿,孫珊,等.斑馬魚側(cè)線神經(jīng)丘毛細(xì)胞發(fā)育的研究[J].聽力學(xué)及言語疾病雜志,2014,22(1):60-66.
[6] 李闊宇,潘魯湲,孫永華.斑馬魚魚房和養(yǎng)殖系統(tǒng)建設(shè)標(biāo)準(zhǔn)[J].中國比較醫(yī)學(xué)雜志,2020,30(6):121-127.
[7] 諶晶晶,唐旭霞,徐慧芳,等.馬兜鈴酸對(duì)斑馬魚的耳毒性及腎毒性研究[J].聽力學(xué)及言語疾病雜志,2020,28(1):57-61.
[8] 羋肖肖,嚴(yán)健,李圓,等.順鉑誘導(dǎo)斑馬魚側(cè)線毛細(xì)胞損傷及再生模型的建立[J].中華耳科學(xué)雜志,2016,14(5):670-673.
[9] 甘津凡,吳永梅,李淑蓉,等.不同濃度的二甲基亞砜對(duì)斑馬魚胚胎及其多巴胺能神經(jīng)元發(fā)育的影響[J].第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2019,41(16):1538-1544.
[10] 鐘健,朱佳瑞,何欣宇,等.斑馬魚模型在納米毒理學(xué)中的研究應(yīng)用與進(jìn)展[J].中國比較醫(yī)學(xué)雜志,2020,30(8):107-113,118.
[11] VLASITS A L,SIMON J A,RAIBLE D W,et al.Screen of FDA-approved drug library reveals compounds that protect hair cells from aminoglycosides and cisplatin[J].Hearing research,2012,294(1/2):153-165.
[12] NAMDARAN P,REINHART K E,OWENS K N,et al.Identification of modulators of hair cell regeneration in the zebrafish lateral line[J].Journal of neuroscience,2012,32(10):3516-3528.
[13] 陳颯,周金章,翁宇航,等.H2O2對(duì)斑馬魚側(cè)線毛細(xì)胞再生的影響[J].臨床耳鼻咽喉頭頸外科雜志,2016,30(23):1881-1884.
[14] 周婷婷,范純新,鄒莎,等.Eya1-Six1信號(hào)在斑馬魚側(cè)線神經(jīng)丘毛細(xì)胞再生過程中的表達(dá)[J].上海海洋大學(xué)學(xué)報(bào),2013,22(6):801-806.
[15] ROMERO-CARVAJAL A,ACEDO J N,JIANG L J,et al.Regeneration of sensory hair cells requires localized interactions between the Notch and Wnt pathways[J].Developmental cell,2015,34(3):267-282.