王大華 何茜 趙凱 程思 何清
1 中國礦業(yè)大學(xué)
2 中國礦業(yè)大學(xué)附屬醫(yī)院
3 鄂東醫(yī)療集團(tuán)黃石市中心醫(yī)院
4 鄂東醫(yī)療集團(tuán)黃石市婦幼保健院
聽力損傷是人類最常見的感覺神經(jīng)損傷,它影響了超過6%的世界人口[1],因此,這種殘疾造成了非常嚴(yán)重的社會和經(jīng)濟(jì)影響[2]。聽力損傷有許多原因,其中最常見的是老年性耳聾[3,4]。除了這些因素,越來越多的證據(jù)表明聽力損傷是糖尿病的另一種致殘性并發(fā)癥[5,6]。大多數(shù)聽力損傷病例是由于內(nèi)耳中的機(jī)械感受器——感覺毛細(xì)胞的退化造成的[7-9]。
Gjb2基因位于染色體13q12上,Gjb2基因突變是聽力障礙的最常見原因[10,11]。有文獻(xiàn)研究將Gjb2小鼠的聽覺表型與耳蝸導(dǎo)管中的細(xì)胞凋亡和氧化損傷聯(lián)系起來[12],但是Gjb2對耳蝸毛細(xì)胞的凋亡和氧化應(yīng)激的調(diào)控作用尚不明確。因此在本課題中,選取HEI-OC1細(xì)胞株,通過高糖處理,并在細(xì)胞中過表達(dá)Gjb2,深入研究Gjb2在高糖誘導(dǎo)的HEIOC1細(xì)胞株凋亡與氧化應(yīng)激中的作用,為保護(hù)高糖引起的HEI-OC1細(xì)胞株損傷提供了新的潛在靶點。
House Ear Institute-Organ of Corti 1 (HEI-OC1)細(xì)胞在37℃,5% CO2的培養(yǎng)條件培養(yǎng),在對數(shù)生長期收集細(xì)胞用于后續(xù)實驗[13]。對于血糖處理,HEIOC1細(xì)胞用不同濃度 (5.5、11、22、33 mM)的血糖處理24 h。根據(jù)葛均波等主編的內(nèi)科學(xué)(第9版)可知有效血漿滲透壓公式為:Posm=2×(Na++K+)+Glu。其中血糖濃度對其影響較小,血鈉濃度對其影響較高。根據(jù)公式可估算出實驗中各組血糖對應(yīng)的有效血漿滲透壓分別:control組-295mOsm;5.5mM組-300.5mOsm;11mM組-306mOsm;22mM組-317mOsm;33mM組-328mOsm。
過表達(dá)Gjb2的質(zhì)粒 (pcDNA-Gjb2)和對照質(zhì)粒 (pcDNA-NC)均購自 GenePharma Co.(上海,中國)。按照Lipofectamine 2000 (Invitrogen)說明書轉(zhuǎn)染pcDNA-NC和pcDNA-Gjb2[14]。細(xì)胞轉(zhuǎn)染48h后進(jìn)行后續(xù)實驗。
用2%福爾馬林在37℃固定各組細(xì)胞24h,用0.1% Triton X‐100在冰上滲透2min,然后在37℃黑暗條件下用50 μl Tunel反應(yīng)混合物孵育1h,加入DAPI染核 5min。在熒光顯微鏡(LSM880,Zeiss,Germany)下觀察結(jié)果[15]。
按照Annexin-V-FITC細(xì)胞凋亡檢測試劑盒(4030ES20,Sigma,San Francisco,California,USA)的說明,按 1:2:50 比例將 Annexin-V-FITC、PI、HEPES緩存液配成Annexin-V-FITC/PI染液。每100 μL染液重懸1×106個細(xì)胞,振蕩混勻,室溫孵育15 min后加入1 mL HEPES緩存液,振蕩混勻。以488 nm波長激發(fā)525、620 nm帶通濾片分別檢測FITC、PI熒光,檢測細(xì)胞凋亡情況。
采 用 RNeasy Mini Kit(Qiagen,Valencia,CA,USA)提取總RNA,使用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒 (RR047A,Takara,Japan)進(jìn) 行逆 轉(zhuǎn) 錄 得到 cDNA。 使 用SYBR? Premix Ex TaqTM II(Perfect Real Time)kit(DRR081,Takara,Japan)和實時熒光定量 PCR 儀(ABI 7500,ABI,F(xiàn)oster City,CA,USA)中進(jìn)行qRTPCR反應(yīng),引物由上海生工合成(引物序列見表1)。記錄各孔 Ct值,以 GAPDH[17]為內(nèi)參,采用公式 2-ΔΔCt法計算產(chǎn)物相對表達(dá)量。
表1 qPCR引物Table 1 qPCR primers
蛋白用10% SDS-PAGE進(jìn)行分離電轉(zhuǎn)移到PVDF膜,5% BSA室溫封閉2 h,分別加入稀釋的一抗,4℃孵育過夜,洗膜后,二抗IgG室溫孵育1 h,ECL工作液 (美國EMD Millipore公司)顯影。用Image Pro Plus 6.0進(jìn)行灰度定量,β-actin作為內(nèi)參。所有抗體均購自Abcam (Cambridge,UK),每次實驗重復(fù)3次[18]。
用PBS洗滌細(xì)胞,并在50μL反應(yīng)體積中以105個細(xì)胞重懸。5-(and-6)-chloromethyl-20,70-di‐chlorodihydrofluorescein diacetate (CM-H2DCFDA)在最終濃度為5μM時用于測量細(xì)胞質(zhì)活性氧水平。細(xì)胞在黑暗中于37℃孵育30min,在C6 Accuri?流式細(xì)胞儀上,在λem=530±30nm處測量CMH2DCFDA的熒光。使用FlowJo軟件分析數(shù)據(jù)。
所有數(shù)據(jù)均采用SPSS21.0統(tǒng)計學(xué)軟件(USA)進(jìn)行處理,計量資料采用均值±標(biāo)準(zhǔn)差的形式表示,多組間比較采用one-way ANOVA分析。P<0.05表示差異具有顯著性統(tǒng)計學(xué)意義。
HEI-OC1細(xì)胞經(jīng)高糖處理后,首先通過Tunel實驗檢測了HEI-OC1細(xì)胞的凋亡情況,結(jié)果顯示與Control組比較,HG組HEI-OC1細(xì)胞凋亡率顯著升高(圖1A)。同時流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞凋亡結(jié)果也顯示與Control組比較,高糖處理后,凋亡率顯著升高(圖 1B)。RT-qPCR 結(jié)果顯示,與 Control組比較,高糖處理后BCL2的mRNA表達(dá)顯著降低,而BAX、Caspase-3、Caspase-9的mRNA表達(dá)則顯著升高(圖1C)。Western blot實驗也呈現(xiàn)了類似的結(jié)果,高糖處理后BCL2的蛋白表達(dá)顯著降低,而BAX、Cleaved-Caspase-3、Cleaved-Caspase-9的蛋白表達(dá)則顯著升高(圖1D)。上述所有結(jié)果提示高糖處理誘導(dǎo)HEI-OC1細(xì)胞的凋亡。
圖1 高糖誘導(dǎo)HEI-OC1細(xì)胞凋亡。A.Tunel實驗檢測HEI-OC1細(xì)胞的凋亡情況;B.流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞凋亡;C.RT-qPCR檢測了BCL2、BAX、Caspase-3、Caspase-9的mRNA表達(dá);D.Western blot檢測BCL2、BAX、Cleaved-Caspase-3、Cleaved-Caspase-9的蛋白表達(dá);與Control組比較,*表示P<0.05,**表示P<0.01,n=3。Fig.1 High glucose induces apoptosis of HEI-OC1 cells.A.Tunel experiment to detect the apoptosis of HEI-OC1 cells;B.Flow cytometry to detect cell apoptosis;C.RT-qPCR to detect the mRNA expression of BCL2,BAX,Caspase-3 and Caspase-9;D.Western blot detected the protein expression of BCL2,BAX,Cleaved-Caspase-3,and Cleaved-Caspase-9;compared with the Control group,*P<0.05,**P<0.01,n=3.
為了證實高糖處理對細(xì)胞氧化應(yīng)激的影響,采用流式細(xì)胞術(shù)檢測高糖處理后HEI-OC1細(xì)胞內(nèi)ROS的生成。結(jié)果顯示,與Control組比較,高糖處理后細(xì)胞內(nèi)ROS水平顯著升高(圖2A)。RT-qPCR和Western blot結(jié)果顯示,高糖處理顯著誘導(dǎo)了SOD2和catalase的mRNA和蛋白表達(dá)(圖2B,C)。
圖2 高糖誘導(dǎo)HEI-OC1細(xì)胞發(fā)生氧化應(yīng)激。A.流式細(xì)胞術(shù)檢測HEI-OC1細(xì)胞內(nèi)ROS的生成;B.RT-qPCR檢SOD2和catalase的mRNA表達(dá);C.Western blot檢測高糖處理后HEI-OC1細(xì)胞中SOD2和catalase的蛋白表達(dá);與Control組比較,*表示P<0.05,**表示P<0.01,n=3。Fig.2 High glucose induces oxidative stress in HEI-OC1 cells.A.Flow cytometry to detect ROS generation in HEI-OC1 cells;B.RT-qPCR to detect SOD2 and catalase mRNA expression;C.Western blot to detect SOD2 and catalase protein expression in HEI-OC1 cells after high glucose treatment;compared with the Control group,*P<0.05,**P<0.01,n=3.
為了確認(rèn)高糖處理對細(xì)胞凋亡和氧化應(yīng)激的作用機(jī)制,不同濃度的血糖處理細(xì)胞后,通過RT-qPCR檢測Gjb2的表達(dá),結(jié)果顯示與Control組比較,隨著血糖濃度的升高Gjb2的表達(dá)顯著降低,在血糖濃度為22 mM時Gjb2的表達(dá)達(dá)到最低(圖3A)。接下來選擇22 mM血糖濃度處理不同時間后,通過RT-qPCR檢測Gjb2的表達(dá),結(jié)果顯示與0h比較,22 mM血糖分別處理細(xì)胞8、16、24h時,Gjb2的表達(dá)顯著降低,24h后,隨著處理時間的延長,Gjb2的表達(dá)無顯著變化(圖3B)。22 mM血糖處理24h作為后續(xù)細(xì)胞實驗條件。
圖3 高糖影響Gjb2的表達(dá)。A.不同濃度血糖處理細(xì)胞后,RT-qPCR檢測Gjb2的表達(dá);與Control組比較,*表示P<0.05,**表示P<0.01。B.22 mM血糖濃度處理不同時間后,RT-qPCR檢測細(xì)胞中Gjb2的表達(dá);與0h比較,*表示P<0.05,**表示P<0.01,n=3。Fig.3 High glucose affects the expression of Gjb2.A.After treating the cells with different concentrations of blood glucose,RT-qPCR detects the expression of Gjb2;compared with the Control group,*P<0.05,**P<0.01;B.After 22 mM blood glucose concentration treatment for different time,RT-qPCR detects the expression of Gjb2 in the cells;compared with 0h,*P<0.05,**P<0.01,n=3.
為了進(jìn)一步確認(rèn)Gjb2在高糖誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡中的作用,在過表達(dá)Gjb2的同時用高糖處理細(xì)胞。Tunel和流式細(xì)胞術(shù)被用來檢測細(xì)胞凋亡的變化,結(jié)果顯示與pcDNA-NC組比較,高糖能夠顯著誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,而過表達(dá)Gjb2則能逆轉(zhuǎn)高糖誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡(圖4A,B)。RT-qPCR檢測結(jié)果顯示,高糖能夠顯著誘導(dǎo)細(xì)胞中BAX、Caspase-3、Caspase-9的mRNA表達(dá),BCL2的mRNA表達(dá)則被顯著抑制(圖4C)。Western blot實驗結(jié)果顯示,高糖能夠顯著誘導(dǎo)細(xì)胞中 BAX、Cleaved-Caspase-3、Cleaved-Caspase-9的蛋白表達(dá),而過表達(dá)Gjb2則能逆轉(zhuǎn)高糖對BAX、Cleaved-Caspase-3、Cleaved-Caspase-9表達(dá)的促進(jìn)作用;BCL2的檢測結(jié)果則于BAX趨勢相反(圖4D)。
圖4 過表達(dá)Gjb2抑制高糖誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡。A.Tunel實驗檢測HEI-OC1細(xì)胞的凋亡情況;B.流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞凋亡;C.RT-qPCR檢測了BCL2、BAX、Caspase-3、Caspase-9的mRNA表達(dá);D.Western blot檢測BCL2、BAX、Cleaved-Caspase-3、Cleaved-Caspase-9的蛋白表達(dá);與pcDNA-NC組比較,*表示P<0.05,**表示P<0.01;與pcDNA-NC+HG組比較,#表示P<0.05,##表示P<0.01,n=3。Fig.4 Overexpression of Gjb2 inhibits cell apoptosis induced by high glucose.A.Tunel experiment to detect the apoptosis of HEI-OC1 cells;B.Flow cytometry to detect cell apoptosis;C.RT-qPCR to detect the mRNA expression of BCL2,BAX,Caspase-3 and Caspase-9;D.Western blot detection of protein expression of BCL2,BAX,Cleaved-Caspase-3,Cleaved-Caspase-9;compared with pcDNA-NC group,*P<0.05,**P<0.01;compared with pcDNA-NC+Comparison of HG group,#P<0.05,##P<0.01,n=3.
為了確認(rèn)Gjb2在高糖誘導(dǎo)的細(xì)胞氧化應(yīng)激中的作用,HEI-OC1細(xì)胞中過表達(dá)Gjb2后,通過流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞內(nèi)ROS的生成。結(jié)果顯示,高糖處理顯著提高了ROS,而過表達(dá)Gjb2則能逆轉(zhuǎn)高糖誘導(dǎo)的ROS的生成(圖5A)。RT-qPCR和Western blot結(jié)果顯示高糖處理能夠顯著促進(jìn)SOD2和catalase的mRNA和蛋白表達(dá),而過表達(dá)Gjb2則能逆轉(zhuǎn)高糖對SOD2和catalase表達(dá)的促進(jìn)作用(圖5B,C)。
圖5 過表達(dá)Gjb2抑制高糖誘導(dǎo)的細(xì)胞氧化應(yīng)激。A.流式細(xì)胞術(shù)檢測高糖處理后HEI-OC1細(xì)胞內(nèi)ROS的生成;B.RT-qP‐CR檢測高糖處理后HEI-OC1細(xì)胞中SOD2和catalase的mRNA表達(dá);C.Western blot檢測高糖處理后HEI-OC1細(xì)胞中SOD2和catalase的蛋白表達(dá);與pcDNA-NC組比較,**表示P<0.01;與pcDNA-NC+HG組比較,#表示P<0.05,##表示P<0.01,n=3。Fig.5 Overexpression of Gjb2 inhibits cell oxidative stress induced by high glucose.A.Flow cytometry to detect the generation of ROS in HEI-OC1 cells after high glucose treatment;B.RT-qPCR to detect the mRNA expression of SOD2 and catalase in HEI-OC1 cells after high glucose treatment;C.Western blot detection The protein expression of SOD2 and catalase in HEI-OC1 cells after high glucose treatment;compared with pcDNA-NC group,**P<0.01;compared with pcDNA-NC+HG group,#P<0.05,##P<0.01,n=3.
聽力損傷和糖尿病是世界上最普遍的兩種致殘情況[20]。在基于人口的研究中發(fā)現(xiàn),糖尿病和聽力損傷之間有很大程度的關(guān)聯(lián)[21]。眾所周知,糖尿病與神經(jīng)病變和微血管損傷有關(guān),尤其影響周圍血管和神經(jīng)的功能[22,23]。在糖尿病發(fā)展過程中,耳蝸和聽覺神經(jīng)也有很高的損傷風(fēng)險,如毛細(xì)胞數(shù)量減少,導(dǎo)致永久性聽力損失或平衡障礙[6],然而,糖尿病和聽力損傷過程之間的關(guān)聯(lián)的潛在機(jī)制在很大程度上仍然未知。
因此,本研究利用高血糖處理HEI-OC1細(xì)胞株,進(jìn)一步研究高血糖誘導(dǎo)HEI-OC1細(xì)胞凋亡與氧化應(yīng)激的作用機(jī)制,為保護(hù)高血糖引起的HEIOC1細(xì)胞損傷提供了新的潛在靶點。
本研究將HEI-OC1細(xì)胞株進(jìn)行高糖處理后,檢測了HEI-OC1細(xì)胞的凋亡和氧化應(yīng)激。結(jié)果顯示,高糖處理后HEI-OC1細(xì)胞凋亡率顯著升高,細(xì)胞內(nèi)ROS水平顯著增加,同時伴隨著細(xì)胞凋亡和氧化應(yīng)激相關(guān)基因和蛋白表達(dá)的升高。氧自由基的形成是導(dǎo)致多種類型聽力損傷的關(guān)鍵介質(zhì)[24,25]。研究表明耳蝸組織中的ROS是由線粒體產(chǎn)生的[26,27]?;钚匝醯姆e累阻斷了內(nèi)源性解毒途徑,導(dǎo)致脂質(zhì)、蛋白質(zhì)和核酸的氧化修飾和損傷。最終,激活凋亡信號通路,包括c-Jun-N末端激酶和P38 MAPK通路被激活,這可能誘導(dǎo)HEI-OC1細(xì)胞凋亡[28]。氧化應(yīng)激以及隨之而來的組織損傷,持續(xù)的高葡萄糖水平導(dǎo)致氧化應(yīng)激和耳蝸毛細(xì)胞的不可逆損傷[29]。與這一觀點相一致,一些抗氧化劑和增強(qiáng)內(nèi)在抗氧化防御的試劑已被證明能夠保護(hù)耳蝸HEI-OC1細(xì)胞免于凋亡[30]。
為了進(jìn)一步檢測高糖誘導(dǎo)HEI-OC1細(xì)胞凋亡和氧化應(yīng)激的深入機(jī)制,本研究用不同濃度的血糖處理HEI-OC1細(xì)胞不同時間后,檢測了Gjb2的表達(dá)變化,發(fā)現(xiàn)高血糖會抑制Gjb2的表達(dá)。編碼縫隙連接蛋白Cx26的基因Gjb2的突變是感音神經(jīng)性聽力損傷的最常見原因[12]。Gjb2基因的突變占不同人群中所有非綜合征性耳聾病例的四分之一[31]。先前的研究表明,出生后早期Gjb2基因的敲除可導(dǎo)致小鼠模型外毛細(xì)胞的丟失[32]。有文獻(xiàn)報道縫隙連接蛋白的敲除,導(dǎo)致能量代謝出現(xiàn)障礙,高耗能細(xì)胞出現(xiàn)葡萄糖短缺,進(jìn)而導(dǎo)致ATP不足,導(dǎo)致大量的超氧化物產(chǎn)生,而超氧化物的聚集,通過凋亡途徑會導(dǎo)致耳蝸中細(xì)胞凋亡并最終導(dǎo)致耳蝸聽覺功能的喪失[33]。Gjb2基因過度表達(dá),會誘導(dǎo)機(jī)體蛋白激酶(PKC)的活化,進(jìn)而發(fā)揮抗凋亡抗氧化應(yīng)激的作用[34]。
研究已經(jīng)發(fā)現(xiàn),Cx26在耳蝸縫隙連接中高度表達(dá),Cx26缺陷引起耳蝸細(xì)胞之間的連接障礙進(jìn)而導(dǎo)致縫隙連接通道的滲透性改變,而細(xì)胞間的連接又依賴于細(xì)胞外基質(zhì),Cx26缺陷會引起細(xì)胞外基質(zhì)的異常,進(jìn)而細(xì)胞間的連接出現(xiàn)障礙和異常[35]。近幾年,有文獻(xiàn)報道,Cx30(-/-)小鼠中缺乏縫隙連接蛋白connexin30(Cx30)會導(dǎo)致血管紋內(nèi)皮細(xì)胞屏障的破壞,進(jìn)而影響聽力[36,37]。耳蝸毛細(xì)胞一旦失去周圍細(xì)胞的連接和支持,失去細(xì)胞-基質(zhì)之間的正常相互作用,必然造成耳蝸毛細(xì)胞的位置改變,并引起所謂的“厭食”性“自殺”行為[38,39]。本研究的結(jié)果顯示,在高血糖處理HEI-OC1細(xì)胞的同時,在細(xì)胞中過表達(dá)Gjb2后,結(jié)果發(fā)現(xiàn)過表達(dá)Gjb2能夠抑制高糖誘導(dǎo)的HEI-OC1細(xì)胞凋亡和氧化應(yīng)激。與文獻(xiàn)報道相一致。細(xì)胞外基質(zhì)表達(dá)異常,引發(fā)細(xì)胞間的電荷選擇性改變和信號傳遞及營養(yǎng)和能量供應(yīng)障礙,進(jìn)而造成“失聯(lián)”細(xì)胞因細(xì)胞間連接的外基質(zhì)損害而發(fā)生失巢凋亡[40]。
綜上所述,在高糖誘導(dǎo)的HEI-OC1細(xì)胞凋亡和氧化應(yīng)激中,過表達(dá)Gjb2能夠發(fā)揮HEI-OC1細(xì)胞保護(hù)作用,這為保護(hù)高糖引起的HEI-OC1細(xì)胞損傷提供了新的潛在靶點。