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    數(shù)量遺傳性狀基因定位方法研究進(jìn)展

    2021-12-06 12:16:53田玉馬春紅宋麗華溫之雨董文琦趙璞
    河北農(nóng)業(yè)科學(xué) 2021年5期
    關(guān)鍵詞:作圖基因組遺傳

    田玉,馬春紅,宋麗華,溫之雨,董文琦,趙璞*

    (1.河北省農(nóng)林科學(xué)院,河北 石家莊 050031;2.河北省農(nóng)林科學(xué)院生物技術(shù)與食品科學(xué)研究所/河北省植物轉(zhuǎn)基因中心,河北石家莊 050051;3.饒陽(yáng)縣農(nóng)業(yè)農(nóng)村局,河北 饒陽(yáng) 053900)

    植物的大部分農(nóng)藝性狀、產(chǎn)量性狀和品質(zhì)性狀屬于數(shù)量遺傳性狀[1,2]。數(shù)量遺傳性狀由多基因調(diào)控,在分離群體中表現(xiàn)為連續(xù)分布,且易受到環(huán)境影響。數(shù)量遺傳性狀的深度解析與現(xiàn)代分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展密切相關(guān),分子標(biāo)記、作圖群體以及統(tǒng)計(jì)分析方法的應(yīng)用和發(fā)展顯著提高了數(shù)量遺傳性狀基因定位效率。

    1 分子標(biāo)記

    分子標(biāo)記反映不同個(gè)體間DNA序列的變異,可以較為直觀(guān)地反映DNA水平的遺傳多態(tài)性,具有共顯性的特點(diǎn)[3]。與利用表型進(jìn)行目標(biāo)性狀篩選相比,分子標(biāo)記具有不影響目標(biāo)性狀表達(dá)、不受環(huán)境影響、數(shù)量極多、能夠?qū)﹄[性遺傳性狀準(zhǔn)確篩選、與基因變異直接相關(guān)、不與其他性狀連鎖等優(yōu)點(diǎn)。分子標(biāo)記檢測(cè)手段簡(jiǎn)單、迅速,因此作為作物遺傳改良的重要工具廣泛應(yīng)用于遺傳育種、基因挖掘、基因定位、基因庫(kù)的設(shè)計(jì)與構(gòu)建等方面。根據(jù)其基礎(chǔ)技術(shù)發(fā)展的過(guò)程,分子標(biāo)記可分為3代:

    第1代:以分子雜交技術(shù)為基礎(chǔ)的RFLP標(biāo)記。DNA序列改變時(shí)酶切位點(diǎn)會(huì)同時(shí)發(fā)生變化,從而產(chǎn)生RFLP標(biāo)記擴(kuò)增條帶的多態(tài)性。RFLP標(biāo)記因其要求DNA模板量大、分析過(guò)程繁瑣、價(jià)格高昂、靈敏度不高等問(wèn)題,目前逐漸被新興分子標(biāo)記所取代[4]。

    第2代:以PCR技術(shù)為基礎(chǔ)的分子標(biāo)記。第2代分子標(biāo)記主要有RAPD標(biāo)記、ISSR標(biāo)記、SSR標(biāo)記、STS標(biāo)記、AFLP標(biāo)記、SCAR標(biāo)記、SRAP標(biāo)記和CAPS標(biāo)記等。其中,SSR標(biāo)記在整個(gè)基因組中分布較為均勻,具有較高的重復(fù)率和可靠性,是熱門(mén)遺傳標(biāo)記[5],廣泛應(yīng)用于遺傳多樣性分析,以及種子純度和品種鑒定等方面。利用SSR標(biāo)記進(jìn)行遺傳背景分析時(shí)需要大量覆蓋目標(biāo)區(qū)段的引物,而引物的設(shè)計(jì)需建立在明確簡(jiǎn)單重復(fù)序列兩端核酸信息的基礎(chǔ)上,因此在實(shí)際應(yīng)用中受到了一定限制[6,7]。AFLP標(biāo)記利用特異性引物對(duì)限制性?xún)?nèi)切酶酶切片段進(jìn)行PCR擴(kuò)增來(lái)鑒定DNA多態(tài)性[8],具有穩(wěn)定可靠、易重復(fù)、操作簡(jiǎn)單便捷、成本較低等優(yōu)點(diǎn),被廣泛應(yīng)用于植物遺傳育種、遺傳多樣性分析以及種質(zhì)資源鑒定等方面[9],但由于受專(zhuān)利保護(hù),目前僅在非盈利性的研究中應(yīng)用。

    第3代:基于全基因組測(cè)序技術(shù)的分子標(biāo)記。隨著測(cè)序技術(shù)的進(jìn)步,作為第3代分子標(biāo)記代表的SNP標(biāo)記被越來(lái)越多地應(yīng)用于QTL定位。其多態(tài)性表現(xiàn)為單堿基變異,即不同等位基因間同一位點(diǎn)的單個(gè)堿基插入、缺失或者替換[10]。與前2代分子標(biāo)記相比,第3代分子標(biāo)記具有一定的優(yōu)越性:(1)數(shù)量更多,密度更大,在全基因組分布更加均勻;(2)突變率低,穩(wěn)定性高;(3)大部分情況下表現(xiàn)為二等位多態(tài)性,組成的堿基類(lèi)型少;(4)SNP本身就可能是候選基因位點(diǎn),當(dāng)SNP發(fā)生在基因內(nèi)部時(shí)就有可能影響基因表達(dá)或?qū)е碌鞍踪|(zhì)結(jié)構(gòu)發(fā)生變化。SNP標(biāo)記主要依托基因組測(cè)序或者基因芯片,檢測(cè)成本和技術(shù)要求較高,目前廣泛應(yīng)用于群體結(jié)構(gòu)和群體親緣關(guān)系、種質(zhì)資源遺傳演化等方面[11,12]。根據(jù)不同應(yīng)用技術(shù),SNP標(biāo)記具有不同的開(kāi)發(fā)方式。

    混合群體分離分析法(BSA)是利用具有2個(gè)極端性狀的個(gè)體分別組成混池測(cè)序來(lái)開(kāi)發(fā)SNP標(biāo)記的一種方法。其主要原理是通過(guò)對(duì)比群體中極端性狀或代表性性狀個(gè)體組成的混池的DNA序列,篩選顯著的差異位點(diǎn)。隨著技術(shù)革新使得測(cè)序成本降低,目前BSA技術(shù)已成為QTL定位、候選基因挖掘等研究的有力工具[13~15]。

    簡(jiǎn)化基因組測(cè)序技術(shù)也是SNP標(biāo)記開(kāi)發(fā)的一類(lèi)方法,其中SLAF-Seq技術(shù)、RAD-seq技術(shù)和GBS-seq應(yīng)用較為廣泛。該方法首先通過(guò)限制性?xún)?nèi)切酶分割基因組,選擇性地回收一定長(zhǎng)度范圍內(nèi)的酶切片段進(jìn)行測(cè)序,從而將基因組的復(fù)雜程度大幅簡(jiǎn)化,操作相對(duì)更簡(jiǎn)便,對(duì)特定區(qū)域鑒定到SNP位點(diǎn)密度更高,試驗(yàn)周期短,不要求必須是具有參考基因組的物種,適用于大樣本量研究,從而有效地實(shí)現(xiàn)遺傳進(jìn)化基因分析以及重要性狀候選基因的預(yù)測(cè)[16~22]。

    全基因組重測(cè)序技術(shù)是對(duì)已知基因組序列物種中的個(gè)體再次進(jìn)行基因測(cè)序并分析比較個(gè)體間的遺傳差異性,是開(kāi)發(fā)SNP標(biāo)記的另一類(lèi)方法。與簡(jiǎn)化基因組技術(shù)測(cè)序采用酶切技術(shù)不同,重測(cè)序技術(shù)利用超聲波將DNA隨機(jī)打斷,獲得不受酶切位點(diǎn)的限制DNA片段,從而大大提高獲取SNP的數(shù)量以及密度[23,24]。

    SNP標(biāo)記還可以通過(guò)芯片方式進(jìn)行DNA多態(tài)性檢測(cè)。該種芯片的開(kāi)發(fā)需要全基因組信息,根據(jù)參考基因組序列設(shè)計(jì)包含特定SNP位點(diǎn)的熒光信號(hào)探針。參試樣本DNA與芯片上被標(biāo)記的核酸探針進(jìn)行雜交,根據(jù)產(chǎn)生的信號(hào)強(qiáng)弱即可判斷樣本DNA與核酸探針互補(bǔ)序列的區(qū)段是否存在SNP突變?;谌蚪M開(kāi)發(fā)的SNP芯片,通常包含數(shù)以萬(wàn)計(jì)的SNP位點(diǎn),具有高效、便捷的特點(diǎn)[25~30]。

    2 作圖群體

    大部分QTL定位方法均需要構(gòu)建遺傳群體,遺傳群體是構(gòu)建遺傳圖譜和QTL定位的基石。根據(jù)遺傳背景的差異大小,遺傳群體被分為初級(jí)群體和高級(jí)群體2種。

    初級(jí)作圖群體個(gè)體間遺傳背景差異較大,根據(jù)遺傳穩(wěn)定性又可分為臨時(shí)性分離群體和永久性分離群體,主要包括F2、F3、BC1、單倍體群體(DH)、重組自交系群體(RIL)等。其中,F(xiàn)2群體及其衍生家系、回交群體屬于臨時(shí)性分離群體,具有易配制、群體基因型豐富、作圖分析效率高的特點(diǎn),但重復(fù)率低,不能進(jìn)行有效連續(xù)性研究;DH、RIL和永久F2群體(IF2)屬于永久性群體,具有后代穩(wěn)定、可開(kāi)展多年多點(diǎn)試驗(yàn)的特點(diǎn),但也存在一定缺點(diǎn),如DH群體構(gòu)建時(shí)易受誘導(dǎo)加倍影響造成群體遺傳背景偏分離而影響作圖的準(zhǔn)確性,RIL群體只能計(jì)算加性效應(yīng)但不能夠計(jì)算顯性效應(yīng),IF2群體變異豐富但不適于精細(xì)定位。

    高級(jí)作圖群體的群體基因組背景高度一致且與輪回親本相同,個(gè)體僅含少量供體親本片段,主要包括近等基因系類(lèi)群體(NILs)、單片段代換系(SSSL)群體和染色體片段置換系(CSSL)群體。高級(jí)作圖群體具有精度高、群體遺傳背景穩(wěn)定、檢測(cè)效率高的特點(diǎn),被廣泛應(yīng)用于QTL精細(xì)定位和圖位克隆,但存在群體構(gòu)建周期長(zhǎng)、工作量大的缺點(diǎn)。

    3 數(shù)量遺傳性狀基因定位分析方法

    3.1 連鎖分析

    連鎖分析基于遺傳的連鎖原理。QTL連鎖分析常用的統(tǒng)計(jì)分析方法有區(qū)間作圖法(IM)、復(fù)合區(qū)間作圖法(CIM)、混合線(xiàn)性模型(MLM)、完備區(qū)間作圖法(ICIM)等。IM以回歸模型為基礎(chǔ),通過(guò)遺傳群體開(kāi)發(fā)多態(tài)性標(biāo)記并構(gòu)建連鎖圖譜,每2個(gè)相鄰標(biāo)記間存在QTL的可能性(LOD值)依據(jù)極大似然函數(shù)進(jìn)行分析并對(duì)其進(jìn)行假設(shè)檢測(cè),當(dāng)LOD值高于給定閾值時(shí)即認(rèn)為檢測(cè)到了相關(guān)QTL;其缺點(diǎn)是同一條染色體上存在多個(gè)調(diào)控性狀QTL的情況時(shí),精度會(huì)下降。CIM是在IM中引入多元線(xiàn)性回歸分析,可以大幅度提高作圖的精度。MLM是基于混合線(xiàn)性模型的CIM,其通過(guò)多環(huán)境下的QTL定位聯(lián)合分析,使作圖精度和效率都得到有效提高。ICIM是王建康課題組在前人研究的基礎(chǔ)上提出的,可以對(duì)各種效應(yīng)成分進(jìn)行有效預(yù)測(cè),還能接近無(wú)偏估計(jì),更重要的是提高了QTL的精度和效率。

    3.2 關(guān)聯(lián)分析

    連鎖分析可以解析兩親本間的遺傳變異,但在挖掘種質(zhì)資源中等位變異時(shí)效率低、成本高,且由于連鎖分析依賴(lài)作圖群體,在群體數(shù)量和研究目標(biāo)性狀方面仍存在一定的缺陷。關(guān)聯(lián)分析法很好地解決了這些問(wèn)題。全基因組關(guān)聯(lián)分析(GWAS)是一種通過(guò)檢驗(yàn)全基因組遺傳標(biāo)記與表型變異關(guān)聯(lián)的顯著性來(lái)定位與性狀相關(guān)的遺傳位點(diǎn),在群體水平上解析性狀遺傳基礎(chǔ)的方法[31]。關(guān)聯(lián)分析具有許多優(yōu)點(diǎn),如,可以直接使用自然群體或種質(zhì)資源,不需要專(zhuān)門(mén)構(gòu)建作圖群體;檢測(cè)效率高,可同時(shí)檢測(cè)同一座位的多個(gè)等位基因;節(jié)省研究時(shí)間;分辨率高。但相應(yīng)地,GWAS也存在一定的缺點(diǎn),如,當(dāng)群體結(jié)構(gòu)分化明顯時(shí)容易造成假陽(yáng)性;需要的樣本量較大,足夠多的樣本才能保證p值足夠低,從而避免假陽(yáng)性和假陰性。同時(shí),精確的表型鑒定是GWAS成功定位的重要保障。

    近年來(lái),QTL定位發(fā)展出了新的策略,如Ho-LAMap(ho index unified linkage and association mapping)、Pool-Seq、QTG-Seq等。Ho-LAMap是一種GWAS與連鎖分析相結(jié)合的、快速鑒定控制復(fù)雜農(nóng)藝性狀候選基因的方法,由中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué)李自超教授團(tuán)隊(duì)提出。水稻大部分農(nóng)藝性狀是由多基因控制的數(shù)量性狀,隨著測(cè)序技術(shù)和數(shù)量性狀定位分析方法的發(fā)展,大量水稻種質(zhì)資源深度測(cè)序的完成使得水稻種質(zhì)資源群體中存在的自然等位變異得以通過(guò)GWAS鑒定。但是,由于水稻基因組的LD衰減較慢,因此造成關(guān)聯(lián)分析的精度無(wú)法達(dá)到單基因的水平。李自超教授團(tuán)隊(duì)利用水稻種質(zhì)資源和海量SNP數(shù)據(jù)進(jìn)行產(chǎn)量相關(guān)基因的挖掘,將GWAS與連鎖分析相結(jié)合,鑒定了2個(gè)控制水稻子粒長(zhǎng)度的新基因OsLG3b和OsLG3。Pool-seq混池測(cè)序,即混合樣本測(cè)序,其原理是假設(shè)每個(gè)樣本的檢測(cè)概率相等,理想情況下表型差異顯著的混合樣本,其相關(guān)基因等位基因頻率的差異也顯著。Pool-seq一般是選擇表型極端或目標(biāo)性狀具有差異的個(gè)體混合,構(gòu)建一個(gè)文庫(kù)進(jìn)行測(cè)序,在混合樣本量足夠大且測(cè)序深度提高的情況下,能夠準(zhǔn)確評(píng)估等位基因頻率。QTG-Seq由QTL-Seq發(fā)展而來(lái),能夠更快、更精確地進(jìn)行基因定位。Zhang等通過(guò)QTG-Seq,構(gòu)建2個(gè)親本的F2群體初步定位到4個(gè)株高相關(guān)QTL。之后構(gòu)建兩親本的BC1F1群體,并選擇其余3個(gè)QTL純合而目標(biāo)QTL雜合的單株繼續(xù)構(gòu)建BC2F2家系,從中篩選獲得近1 200個(gè)具有極端株高表型的單株作為混池。通過(guò)對(duì)極端表型單株混池進(jìn)行全基因組測(cè)序,并通過(guò)最大似然算法(smoothLOD)直接鑒定候選基因,僅用4個(gè)世代就從雙親組配的群體中挖掘出候選基因,極大地節(jié)省了時(shí)間[32]。

    4 發(fā)展策略與展望

    分子標(biāo)記技術(shù)是解析重要性狀基因遺傳效應(yīng),分析基因間、基因與環(huán)境間互作的重要手段,在進(jìn)行數(shù)量性狀分析和分子標(biāo)記育種方面具有不可或缺的作用。創(chuàng)新分子標(biāo)記開(kāi)發(fā)技術(shù),獲得更多的分子標(biāo)記和有利用價(jià)值的新基因,明析基因功能,可以提高我國(guó)分子育種效率,逐步建立并完善植物基因組選擇[33],并在植物育種中發(fā)揮重要作用。

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