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    三個楸樹優(yōu)良無性系的組培快繁技術(shù)研究

    2021-12-05 03:10:34趙天宇張新葉耿若楠洪聰慧杜克兵
    關(guān)鍵詞:楸樹腋芽莖段

    胡 倩,趙天宇,張新葉,耿若楠,洪聰慧,劉 同,杜克兵*

    (1.華中農(nóng)業(yè)大學 園藝林學學院,武漢 430070;2.湖北省林業(yè)信息技術(shù)研究中心(華中農(nóng)業(yè)大學),武漢 430070;3.襄陽市林業(yè)科學研究所,湖北 襄陽 441052;4.湖北省林業(yè)科學研究院,武漢 430075)

    楸樹(Catalpabungei)是紫葳科(Bignoniaceae)梓樹屬(Catalpa)的高大落葉喬木,常作為優(yōu)質(zhì)的用材樹種,也是著名的園林觀賞樹種,已有2000余年的栽培歷史[1-3].楸樹樹干高聳,樹冠濃密,樹姿優(yōu)美,春季嫁接苗當年可高達3~4 m,成年楸樹可高達30 m,不僅觀賞效果極佳,且其木材質(zhì)地適中、堅韌致密、耐腐蝕、耐潮濕,在各種行業(yè)中被廣泛應(yīng)用[4-5].此外,楸樹還具有極高的藥用價值,葉、樹皮、種子均可做中藥藥材,綜合利用價值極高[6].

    由于楸樹自花不孕,結(jié)實量極少,種子自身的發(fā)芽率也不高,所以通過實生繁殖較困難[7].目前,生產(chǎn)上多采用嫁接和扦插的方法生產(chǎn)種苗,但楸樹扦插生根較困難,嫁接成本高,而且受季節(jié)限制,所以這些方法都無法滿足短期內(nèi)提供大量苗木的需求.采用組織培養(yǎng)的方法,不僅可以提高繁殖系數(shù),而且速度快、成本低、不受季節(jié)環(huán)境的限制[8-10].目前,雖有一些關(guān)于楸樹的組培快繁研究的報道,但不同品種的基因型不同,其內(nèi)源激素的種類和濃度存在差異,組培過程中所需要的營養(yǎng)和外源激素用量也不完全相同,從而導致不同品種的離體快繁體系存在差異[11-13].因此,有必要針對特定優(yōu)良品種建立相應(yīng)的組培快繁體系.本研究以開花量大的楸樹優(yōu)良單株為試材,進行組織培養(yǎng)快繁研究,以期建立完整高效的離體快繁技術(shù),為苗木的生產(chǎn)應(yīng)用提供參考.

    1 材料與方法

    1.1 試驗材料

    楸樹優(yōu)良單株1#(簡稱DH1)、2#(簡稱DH2)和5#(簡稱DH5),這3個優(yōu)良單株均由襄陽市林業(yè)科學研究所從當?shù)匾吧衢辟Y源中篩選得到,具有開花量大的特點,可作為園林觀賞材料.

    1.2 基本培養(yǎng)基

    在植物組織培養(yǎng)中,常使用MS、1/2MS、N6、DKW和WPM培養(yǎng)基,根據(jù)不同材料選用合適的培養(yǎng)基,一般來說,MS培養(yǎng)基含的營養(yǎng)元素適合大部分植物生長,DKW和WPM培養(yǎng)基適合一般木本植物生長,因此本試驗選用MS、DKW、WPM三種常用的培養(yǎng)基作為基本培養(yǎng)基.在7-9月,晴天采集DH1、DH2和DH5的幼嫩帶芽莖段,用少量洗潔精浸泡2 min,刷去表面灰塵,之后放入大燒杯中,用無紡紗布封口后,蒸餾水沖洗2 h;隨后用100 mg/L PVP浸泡5 min,200 mg/L鏈霉素+400 mg/L青霉素液浸泡15 min,用蒸餾水再次清洗30 s.轉(zhuǎn)入超凈工作臺中,用70%乙醇消毒30 s,無菌水沖洗2次,30 s/次;再用0.1%氯化汞消毒6.5 min,無菌水沖洗5次,30 s/次,用無菌濾紙吸干外植體表面水分,切成1~2 cm的帶芽莖段,分別接種到MS、DKW、WPM基本培養(yǎng)基中(不添加任何激素).培養(yǎng)20 d后統(tǒng)計外植體的污染率(P)與褐化率(B),以篩選合適的基本培養(yǎng)基.P=(N1/N)×100,其中,P表示污染率,N1表示污染外植體數(shù)量,N表示接種時外植體總數(shù).B=(N2/N)×100,B表示褐化率,N2表示褐化外植體數(shù)量,N表示接種時外植體總數(shù).

    1.3 培養(yǎng)條件

    接種時,每個處理3次重復,每次重復5瓶,每瓶培養(yǎng)基接種2個外植體,即每種材料接種30個莖段.培養(yǎng)基均進行高壓蒸汽滅菌(121 ℃,100 kPa)20 min.接種后,將材料置于(25±2)℃的組培室內(nèi)培養(yǎng),光照強度為1 500~2 000 lx,光照時間為16 h/d.

    1.4 初代培養(yǎng)

    通過預(yù)實驗發(fā)現(xiàn),當NAA濃度高于0.05 mg/L時,不利于腋芽萌發(fā),且根據(jù)張燁然等[14]研究數(shù)據(jù),將激素種類設(shè)置為6-BA(1.0、2.0 mg/L)、IBA(0、0.1、0.2 mg/L)、NAA(0、0.01、0.03 mg/L),共8種培養(yǎng)基(IM1~IM8;表1),以DKW為基本培養(yǎng)基,添加1.0 g/L活性炭+0.8%瓊脂+2.5%蔗糖,pH=5.8;用DH1、DH2和DH5幼嫩帶芽莖段為試材,經(jīng)初代消毒后接種于培養(yǎng)基中.接種30 d后統(tǒng)計腋芽萌發(fā)率(G),以篩選合適的初代培養(yǎng)基.G=(N3/N)×100%,其中,G表示腋芽萌發(fā)率,N3表示萌芽外植體數(shù)量,N表示接種時外植體總數(shù).

    表1 初代培養(yǎng)基、增殖培養(yǎng)基和生根培養(yǎng)基中的激素設(shè)置

    1.5 增殖培養(yǎng)

    張燁然等[14]研究顯示6-BA和IBA對楸樹試材的增殖系數(shù)影響顯著,本試驗在其基礎(chǔ)上依照張蕊等[15]對NAA梯度篩選的試驗結(jié)論,進一步篩選不同濃度NAA與6-BA、IBA組合對其增殖系數(shù)的影響,因此將激素種類設(shè)置6-BA(0、2、3 mg/L)、IBA(0、0.1、0.2、0.4 mg/L)、NAA(0、0.05、0.20 mg/L),共11種培養(yǎng)基(PM1~PM11;表1),以DKW為基本培養(yǎng)基,添加2.5%蔗糖+0.8%瓊脂,pH=5.8;以初代培養(yǎng)中萌發(fā)的腋芽為試材,在腋芽高1~2 cm時,切下腋芽接種于增殖培養(yǎng)基中.培養(yǎng)35 d后統(tǒng)計增殖系數(shù)(M),以篩選適宜的增殖培養(yǎng)基,M=(M1/M2)×100%.其中,M表示增殖系數(shù),M1表示培養(yǎng)35 d時的有效芽數(shù),高于1 cm的芽記為有效芽;M2表示接種時的總芽數(shù).

    1.6 生根培養(yǎng)

    以DH1、DH2和DH5高于2 cm的試管苗為試材,接種于生根培養(yǎng)基中.以DKW為基本培養(yǎng)基,添加2.5%蔗糖+0.8%瓊脂,pH=5.8;激素種類設(shè)置NAA(0、0.1、0.2 mg/L)、IBA(0、0.1、0.2、0.3 mg/L),共7種培養(yǎng)基(RM1~RM7;表1)培養(yǎng)30 d后統(tǒng)計根系數(shù)量、根長和生根率(R),以篩選適宜的生根培養(yǎng)基.R=(R1/R2)×100%,其中R表示生根率,R1表示培養(yǎng)30 d生根苗數(shù),R2表示接種時總芽數(shù).

    1.7 數(shù)據(jù)分析

    表格中的數(shù)據(jù)為平均值±標準誤(n=3).所有試驗數(shù)據(jù)采用SAS8.1統(tǒng)計軟件進行方差分析(ANOVA)、多重比較(Duncan’s).百分數(shù)經(jīng)過反正弦轉(zhuǎn)換后再用于方差分析.

    2 結(jié)果與分析

    2.1 基本培養(yǎng)基篩選

    DH1、DH2和DH5莖段接種20 d后的褐化率和污染率,以及接種30 d后的腋芽萌發(fā)率見表2.3種材料在MS與WPM培養(yǎng)基中的腋芽萌發(fā)率相對較低,幼芽弱小,大小不均一,部分葉片黃綠,且玻璃化幼芽比例較高,而在DKW培養(yǎng)基中腋芽萌發(fā)率相對較高,且幼芽生長健壯,大小均一,葉片深綠.DH1、DH2和DH5的表現(xiàn)基本一致,認為DKW更適合作為3種材料的基本培養(yǎng)基(表2).

    表2 基本培養(yǎng)基篩選結(jié)果

    2.2 初代培養(yǎng)效果

    與DKW基本培養(yǎng)基相比,添加外源激素(6-BA、NAA、IBA)顯著提高了外植體的腋芽萌發(fā)率.DH1、DH2和DH5在接種后6~8 d腋芽開始萌發(fā).8種初代培養(yǎng)基中,DH1和DH2以IM5的腋芽萌發(fā)率最高,分別達到83.33%和86.67%,顯著高于其余7種培養(yǎng)基(P<0.05;表3);DH5與DH1、DH2有所不同,以IM6的腋芽萌發(fā)率最高,達到80.00%,但與IM5的腋芽萌發(fā)率(70.00%)差異不顯著(P>0.05).因此,認為可選擇IM5,即DKW+0.8%瓊脂+1.0 g/L活性炭+2.5%蔗糖+1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA作為3種材料的初代培養(yǎng)基,其萌發(fā)的幼芽生長健壯(圖1).

    表3 初代培養(yǎng)的腋芽萌發(fā)率

    圖1 DH1、DH2和DH5的初代培養(yǎng)

    2.3 增殖培養(yǎng)效果

    與不添加激素的PM1相比,外源激素(6-BA、NAA、IBA)顯著提高了DH1、DH2和DH5的增殖系數(shù)(表4),但3種材料之間的表現(xiàn)不完全一致.培養(yǎng)35 d時,DH1和DH2均以PM10的增殖系數(shù)為最高,分別達到6.53和6.70,為PM1的4.77倍和3.79倍,且幼苗健壯.DH5則以PM11的增殖系數(shù)為最高,達到5.73,為PM1的4.66倍,但與PM10的增殖系數(shù)(5.47)差異不顯著(P>0.05).綜合而言,認為PM10,即DKW+0.6%瓊脂+2.5%蔗糖+3.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L IBA較適宜3種材料的增殖培養(yǎng)(圖2).

    圖2 DH1、DH2和DH5的增殖培養(yǎng)

    表4 增殖培養(yǎng)的增殖系數(shù)

    2.4 生根培養(yǎng)效果

    與不添加激素的RM1相比,外源激素(NAA、IBA)顯著促進了DH1、DH2和DH5的生根率、生根數(shù)量與長度(P<0.05;表5).接種30 d時,在RM1中,DH1、DH2和DH5的生根率分別為20%、6.67%和0,且根系數(shù)量少,長度短.在RM2~RM7中,三者的生根情況均優(yōu)于RM1,但不同材料的表現(xiàn)不完全相同.DH1以RM5的生根效果最好,生根率最高(100%),根系數(shù)量最多(9.37),根長最長(4.96 cm).DH2在RM5中的生根率最高(100%),根系數(shù)量最多(8.50),而在RM6中根長最長(5.14 cm),但與RM5(4.87 cm)中的根長差異不顯著(P>0.05).對于DH5,在RM6中的生根效果最好,生根率最高(100%),根系數(shù)量最多(7.70),根長最長(4.83 cm).總體而言,DH1、DH2和DH5在RM5和RM6中均能夠獲得較好的生根效果,除DH1與DH2的生根數(shù)量在兩種培養(yǎng)基之間存在顯著差異外,其余指標的差異均不顯著.因此,RM5和RM6均適宜3種材料的生根培養(yǎng),即DKW+0.8%瓊脂+2.5%蔗糖+0.2 mg/L NAA+0.1 mg/L IBA或DKW+0.8%瓊脂+2.5%蔗糖+0.2 mg/L NAA+0.2 mg/L IBA(圖3).

    表5 生根培養(yǎng)試驗結(jié)果

    注:表中的數(shù)據(jù)為平均值±標準誤(n=3);位于同列中的不同字母表示差異顯著(P<0.05).

    圖3 DH1、DH2和DH5的生根培養(yǎng)

    3 結(jié)論與討論

    不同基本培養(yǎng)基所提供的營養(yǎng)成分有所不同,培養(yǎng)的效果亦不同,是決定組培成敗的關(guān)鍵因素.目前,楸樹中已報道的基本培養(yǎng)基主要包括1/2 MS、MS、WPM、DKW和N6[16-20].李小艷等[16]研究了N6、DKW和WPM 3種培養(yǎng)基對楸樹初代腋芽萌發(fā)的影響,發(fā)現(xiàn)在N6培養(yǎng)基中,外植體萌芽較快,但20 d后開始出現(xiàn)頂芽變褐,繼而壞死的現(xiàn)象;在DKW培養(yǎng)基中,腋芽分化較N6的慢,接種15 d后大部分葉片才開始生長,但25 d后葉片大而綠,莖粗壯,新葉生長旺盛;在WPM培養(yǎng)基中,腋芽分化最慢,誘導率最低,后期還易出現(xiàn)玻璃化現(xiàn)象.本研究中,DH1、DH2和DH5在DKW培養(yǎng)基中的腋芽萌發(fā)率明顯高于MS和WPM培養(yǎng)基,且幼芽生長健壯,大小均一,葉片深綠,該結(jié)果與李小艷[16]的研究結(jié)果相似.因此,認為DKW更適合作為DH1、DH2和DH5的基本培養(yǎng)基.

    從已報道的楸樹初代培養(yǎng)結(jié)果來看,不同楸樹種類或品種對培養(yǎng)基成分,尤其是激素種類與濃度的要求有所不同.例如,孟路等[13]發(fā)現(xiàn)朝霞楸(Catalpabungei‘Zhaoxia’)和云朵楸(Catalpabungei‘Yunduo’)的莖段在2.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA上腋芽效果較好,萌發(fā)率達80%以上,而洛楸1號(Catalpabungei‘Luoqiu1’)和魯楸1號(Catalpabungei‘Luqiu1’)的莖段在1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA上腋芽萌發(fā)較好,可達100%.張燁然[14]等發(fā)現(xiàn)6-BA+NAA組合并不能促進楸樹(QS2)和滇楸(DQ72)的腋芽萌發(fā),而6-BA+IBA有利于促進腋芽萌發(fā),且1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA較適合初代培養(yǎng).本研究發(fā)現(xiàn),1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA較適宜DH1、DH2和DH5的初代培養(yǎng),接種30 d后腋芽萌發(fā)率均達到80%左右,但不同無性系之間存在一定差異,這與孟路[13]和張燁然[15]的研究結(jié)果相似.

    繼代增殖培養(yǎng)是組培快繁的關(guān)鍵,其中增殖系數(shù)是衡量繁殖效率的重要指標,與外源激素的種類與濃度密切相關(guān)[17-19].目前報道的用于楸樹增殖培養(yǎng)的激素主要包括IBA、NAA和6-BA等[20-21],但不同楸樹材料適宜的激素種類與濃度有所不同,增殖效果亦存在較大差異,這可能與材料的基因型以及幼嫩程度有關(guān)[22-23].例如,孟路等[13]發(fā)現(xiàn)在含0.1 mg/L IBA的培養(yǎng)基中,不同楸樹品種增殖所需適宜的6-BA濃度有所不同,1.0 mg/L 6-BA最適宜洛楸1號增殖,增殖系數(shù)為4.70;1.5 mg/L 6-BA 最適宜云朵楸和魯楸1號增殖,增殖系數(shù)分別為3.38和5.68;3.0 mg/L 6-BA最適宜朝霞楸增殖,增殖系數(shù)可達5.49.張蕊等[15]研究發(fā)現(xiàn)6-BA和NAA的交互作用對周楸20號增殖系數(shù)的影響不顯著,而NAA和6-BA對其增殖系數(shù)的影響顯著,兩者濃度的比值與增殖系數(shù)有一定關(guān)系,當NAA為 0.15 ~ 0.20 mg/L,6-BA為0.8~1.6 mg/L時,增殖系數(shù)較高.在本研究中,3種材料對6-BA和IBA濃度的需求亦不完全相同.DH1和DH2以培養(yǎng)基中添加3.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L IBA時的增殖系數(shù)最高,分別達到6.53和6.70,而DH5則以添加3.0 mg/L 6-BA+0.4 mg/L IBA時的增殖系數(shù)最高,為5.73.

    生根培養(yǎng)是建立高效組培快繁體系的重要步驟,直接影響組培苗的生產(chǎn)應(yīng)用效率.從已有文獻來看,楸樹組培苗生根并不十分困難,現(xiàn)已報道的楸樹生根率大部分在70%~100%之間,生根數(shù)量介于2.0~20.0條,根長介于3~10 cm,但不同楸樹種類或品種適宜的生根培養(yǎng)基成分并不完全相同[12-13,23].例如,孟路等[12]發(fā)現(xiàn)朝霞楸在WPM+0.1 mg/L NAA+0 g/L活性炭培養(yǎng)基上,生根率最高達97%,平均根系數(shù)量可達6.7條,根長最大達4.88 cm.聶琳等[23]在1/2 MS+0.5 mg/L NAA培養(yǎng)基上培養(yǎng)楸樹幼芽,生根率可達100%,平均根數(shù)10條,平均根長4.00 cm.本研究發(fā)現(xiàn),以DKW+0.2 mg/L NAA+0.1 mg/L IBA或DKW+0.2 mg/L NAA+0.2 mg/L IBA培養(yǎng)DH1、DH2和DH5均可取得較好的生根效果,接種6~7 d即開始生根,30 d時三者的生根率均達到95%以上,生根數(shù)量介于7.13~9.37條,根長介于4.6~5.0 cm.

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