馬美榮,劉小改,李洪媛,周林艷,單 群,王小偉,張 坤
(北京紅星股份有限公司,北京 101400)
扣囊復膜酵母(Saccharomycopsis fibuligera)屬于復膜孢酵母科(Saccharomycopsidaceae),復膜孢酵母屬(Saccharomycopsis),又名擬內孢霉,是一類能產生子囊孢子的二形態(tài)酵母[1],其通過多極出芽、菌絲體形成來增殖,子囊為球狀,游離于體細胞或附著于菌絲尾部或壁上。每個子囊可形成兩個到四個帽狀子囊孢子,成熟時釋放[2]。扣囊復膜酵母可在各種淀粉基質中存活,是白酒酒曲[3?5]、黃酒酒藥[6]、甜酒曲[7]、韓國酒曲Nuruk[8?10]、泰國酒曲Loog-pang[11]、食醋大曲[12?13]等酒曲中的重要菌種。
麩曲酒是以麩曲為糖化劑,加酵母(釀酒干酵母)為發(fā)酵劑,或以麩曲為糖化發(fā)酵劑釀制而成的白酒[14]。清香型麩曲白酒是以黑曲霉制備的麩曲為糖化劑,釀酒酵母為發(fā)酵劑釀制而成。由于該麩曲白酒發(fā)酵菌種較為單一,酒體辛辣,欠醇厚綿柔,后味短,限制了一部分消費者對麩曲酒的喜愛??勰覐湍そ湍改軌虍a生一定的香氣,能產生多種甜味物質,其應用于清香型麩曲白酒發(fā)酵,能夠改善麩曲酒的醇甜感,提升原酒的品質。
本文以優(yōu)選的兩株扣囊復膜酵母制備麩曲,對麩曲進行感官評價、風味成分分析,并對其產酸能力、糖化力、發(fā)酵力進行分析研究??勰覐湍そ湍耕熐鷳糜谇逑阈望熐拙瓢l(fā)酵,研究其對清香型麩曲白酒出酒率、原酒品質的影響。通過酒樣風味成分的分析,為扣囊復膜酵母提升原酒品質提供理論依據(jù)。
扣囊復膜酵母T(Saccharomycopsis fibuligeraT,簡稱NT)、扣囊復膜酵母L(Saccharomycopsis fibuligeraL,簡稱NL)、釀酒酵母 HX006(Saccharomyces cerevisiaeHX006) 北京紅星股份有限公司分離保存;高粱、稻殼、釀酒麩曲 北京紅星股份有限公司釀造車間生產提供。
HP6890 氣相色譜儀 安捷倫公司;LA230S 電子天平 賽多利斯公司;LRH-250 生化培養(yǎng)箱 上海一恒科學儀器有限公司;DMA5000M 全自動密度儀 安東帕公司;ICS-3000 離子色譜儀 美國Dionex公司。
1.2.1 培養(yǎng)基制備 扣囊復膜酵母種曲、淺盤麩曲培養(yǎng)基[15]:麩皮與水以1:1 比例拌勻,121 ℃滅菌30 min;扣囊復膜酵母發(fā)酵力培養(yǎng)基[16]:參考釀酒大曲發(fā)酵力分析方法,選用葡萄糖含量128 g/L 的玉米糖化液:1 kg 玉米面加入5 L 水,加入0.02%的液化酶在80 ℃保溫液化1 h,降溫至60 ℃加入0.3%的糖化酶保溫糖化2 h,棄去殘渣,清液121 ℃滅菌20 min;酵母液體種子培養(yǎng)基[17]:按照發(fā)酵力培養(yǎng)基制備方法制備玉米糖化液,根據(jù)原液的糖度降度到10oBrix,121 ℃滅菌20 min。
1.2.2 扣囊復膜酵母三角瓶種曲制備 根據(jù)1.2.1 配制扣囊復膜酵母種曲培養(yǎng)基,250 mL 三角瓶中裝入20 g 麩皮、20 mL 水,拌勻,121 ℃滅菌30 min。降溫至30 ℃左右,從扣囊復膜酵母斜面挑1~2 環(huán)菌接入培養(yǎng)基中,30 ℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)3~4 d。
1.2.3 扣囊復膜酵母淺盤麩曲制備 根據(jù)1.2.1 配制扣囊復膜酵母淺盤麩曲培養(yǎng)基,取1 kg 麩皮、1 L水,拌勻,121 ℃滅菌30 min。降溫至35 ℃左右,接入6~10 g 種曲,拌勻后裝入淺盤,在曲室內培養(yǎng),前期(0~24 h)品溫控制在32 ℃左右,后期(24~40 h)品溫控制在36 ℃左右。
培養(yǎng)好的麩曲置于陰涼、干燥、通風處貯存,貯存時間不超過2 個月。
1.2.4 扣囊復膜酵母在清香型麩曲白酒生產中的應用
按照糖化發(fā)酵劑組成分為三個方案進行發(fā)酵實驗,以不加扣囊復膜酵母麩曲為對照。
對照:釀酒麩曲8%、釀酒酵母4%;方案1:釀酒麩曲8%、釀酒酵母4%、NT 麩曲1%、NL 麩曲1%;方案2:釀酒麩曲8%、釀酒酵母4%、NT 麩曲2%;方案3:釀酒麩曲8%、釀酒酵母4%、NL 麩曲2%。
釀酒酵母斜面接種于裝有酵母液體種子培養(yǎng)基的液體試管中,28 ℃培養(yǎng)24 h,培養(yǎng)好的液體試管種子液轉接于裝有酵母液體種子培養(yǎng)基的液體三角瓶中,28 ℃培養(yǎng)20~24 h。
操作要點:將高粱粉碎成粉狀,酒糟、高粱粉按照4:1 的配比混合均勻,加入稻殼、水,稻殼添加量為高粱粉質量的25%,適當加水調節(jié)醅料水分至55%左右,拌勻后悶料30 min,然后100 ℃蒸糧40 min,蒸糧完成后物料經攤涼、降溫至30 ℃左右,按高粱粉質量50 kg 加入相應的麩曲、酵母,并再次翻拌均勻后入0.8 m3槽車發(fā)酵。自然發(fā)酵,發(fā)酵7 d。發(fā)酵完成后,將酒醅從槽車中取出,裝入甑鍋中蒸餾取酒,蒸酒后酒糟按20%比例作為丟糟棄用,剩余80%酒糟作為回糟再次配糧后進行后續(xù)發(fā)酵應用。蒸餾后的酒樣進行風味成分分析和感官評價。
1.2.5 扣囊復膜酵母麩曲感官評價 取培養(yǎng)成熟的麩曲,由8 位具有專業(yè)知識的技術人員(年齡20~50歲,5 男3 女,高級釀酒師5 人,釀酒師3 人)觀察成曲顏色、表面及斷面生長情況,并聞其香氣情況[18?19]。
成曲評價標準:顏色發(fā)白,表面及斷面皆有白點,結塊較密,無酸臭味、無雜菌感染現(xiàn)象。
1.2.6 氣相色譜分析風味成分
1.2.6.1 樣品前處理 取10 g 絕干的麩曲樣品置于磨口三角瓶中,加入200 mL 70%voL 的乙醇溶液,室溫浸泡24 h,取清液備用。白酒樣品不需前處理。
1.2.6.2 色譜條件 DB-WAX UI 石英毛細管色譜柱(30 m×0.25 mm×0.5 μm);氫火焰離子化檢測器(flame ionization detector,F(xiàn)ID),檢測器溫度240 ℃;進樣口溫度250 ℃;升溫程序:35 ℃保持4 min,以5 ℃/min 升至100 ℃,再以10 ℃/min 升至230 ℃,保持13 min;載氣為氮氣(N2);吹掃流量為3 mL/min;分流比為1:30。載氣流速:氮氣36.5 mL/min,氫氣40 mL/min,空氣400 mL/min。根據(jù)保留時間定性,采用內標法定量,內標物為叔戊醇(質量濃度198.27 mg/L)、乙酸正戊酯(質量濃度174.93 mg/L)和2-乙基丁酸(質量濃度198.20 mg/L)。
1.2.7 多元醇分析
1.2.7.1 樣品前處理 取樣品2.00 g 及30 mL 蒸餾水,置于50 mL 離心管中,2000 r/min,15 min,取上清液備用。
1.2.7.2 色譜條件 CarboPac MA1 型分離柱(250 mm×4 mm);流動相:480 mmol/L NaOH 淋洗液;柱溫:30 ℃;流速:0.4 mL/min;進樣量:25 μL;電化學檢測器和Chromeleon 6.80 色譜工作站[20]。根據(jù)保留時間定性,外標法定量。
1.2.8 扣囊復膜酵母麩曲酸度測定 稱取試樣10 g(精確至0.01 g),于250 mL 燒杯中,準確加水100 mL,于室溫浸泡30 min(每隔10 min 攪拌1 次),用脫脂棉過濾后的清液進行酸度測定[21]。
酸度定義:每100 g 曲消耗1 mmol 氫氧化鈉為1 度酸度。
1.2.9 扣囊復膜酵母麩曲糖化力測定 稱取5 g 麩曲樣品,加入90 mL 水和10 mL 醋酸-醋酸鈉緩沖溶液,攪勻。35 ℃水浴1 h,用脫脂棉過濾,棄去最初5 mL,接收其余澄清濾液進行淀粉酶解糖測定,測定方法參照斐林定糖法[22]。
式中:V0表示加空白溶液后消耗標準葡萄糖溶液的體積(mL);V 表示加麩曲糖化液后消耗標準葡萄糖溶液的體積(mL);C 表示標準葡萄糖溶液濃度(g/mL);糖化酶活力為U/g。
糖化酶活力單位:1.0 g 干曲在35 ℃、pH4.6 條件下,反應1 h,將可溶性淀粉分解為葡萄糖1 mg 所需的酶量稱為1 個酶活力單位,符號為U。
1.2.10 扣囊復膜酵母麩曲發(fā)酵力測定 以葡萄糖含量128 g/L 的玉米糖化液為發(fā)酵培養(yǎng)基,按照釀酒大曲發(fā)酵力測定方法測定[16]。
發(fā)酵力活力單位:在30 ℃,72 h 內0.5 g 麩曲利用可發(fā)酵糖類所產生的二氧化碳克數(shù)為一個單位,符號為U。
1.2.11 酒樣酒精度測定 樣品使用Anton Paar DMA 5000 M 全自動密度儀進行自動檢測[23]。
1.2.12 原料出酒量、出酒率的測定 蒸餾后的酒樣稱重,測定原酒酒樣的酒精度,計算出酒量、原料出酒率。
出酒量(kg)=原酒酒樣酒精度折算為65%voL原酒的換算系數(shù)×原酒產量
原料出酒率(%)=折算為65%vol 原酒產量/原料用量×100[17]。
1.2.13 酒樣感官評價 根據(jù)GB/T 33404-2016 白酒感官品評導則進行品評描述[24]。由10 位具有專業(yè)知識的技術人員(年齡20~40 歲,5 男5 女,國家品酒評委4 人,一級品酒師2 人,二級品酒師2 人,三級品酒師2 人)從原酒風味方面進行感官評價。
所有的試驗結果均以平均數(shù)±標準差(Means 士SD)形式表示,n=5,以方差分析ANOVA 來檢測平均值之間的差異,以P<0.05 為差異顯著。統(tǒng)計分析使用SPSS23. 0 統(tǒng)計分析軟件。
2.1.1 扣囊復膜酵母麩曲感官評價 以優(yōu)選的兩株扣囊復膜酵母NL、NT 制備麩曲,從外觀上觀察兩種麩曲,兩者都呈白色,從顏色上無法區(qū)分,但聞香差別較大,NL 麩曲呈奶油香、花香,花香較明顯,NT 麩曲呈奶油香、曲香,曲香較明顯(表1),這應該與兩種麩曲在培養(yǎng)過程中產生的香味物質種類與含量存在差異有關。
表1 扣囊復膜酵母麩曲感官評價Table 1 Sensory evaluation of Saccharomycopsis fibuligera fuqu
2.1.2 扣囊復膜酵母麩曲風味物質分析 扣囊復膜酵母麩曲70%vol 乙醇提取液的氣相色譜分析結果見表2,從兩種麩曲中共檢測到21 種物質,其中酯類化合物7 種,醛類化合物2 種,酮類化合物2 種,酸類化合物5 種,醇類化合物5 種,大部分物質呈現(xiàn)特殊的香氣,含量較高的物質有乙縮醛、戊酸乙酯、亞油酸乙酯、乙醛、乙酸等,其中乙縮醛、戊酸乙酯和乙酸是清香型白酒中重要的風味物質。麩曲中還含有可使酒具有甜感的2,3-丁二醇(左旋)、2,3-丁二醇(內消旋)等物質,但含量較低。NL 麩曲的酯類物質、酮類物質、酸類物質的含量比NT 麩曲分別高6.56%、16.59%、32.28%,但其醛類物質、醇類物質的含量比NT 麩曲分別低5.67%、2.67%。
表2 扣囊復膜酵母麩曲提取液氣相色譜分析結果Table 2 GC analysis results of Saccharomycopsis fibuligera fuqu extraction liquid
由表3 可知,兩種麩曲中含有丙三醇和阿拉伯糖醇,丙三醇的含量遠高于阿拉伯糖醇的含量。NT 麩曲多元醇的含量要高于NL 麩曲多元醇的含量,約高31.79%。多元醇是形成白酒中甜味的主要來源,甜度隨羥基數(shù)增多而增強。在酒精度較高的白酒中,微甜味能使酒體顯得綿柔醇厚[20]。
表3 扣囊復膜酵母麩曲多元醇分析結果Table 3 Polyhydric alcohols analysis results of Saccharomycopsis fibuligera fuqu
2.1.3 扣囊復膜酵母麩曲理化性能研究 對制備的扣囊復膜酵母麩曲進行酸度、糖化力、發(fā)酵力測定,可見所應用的扣囊復膜酵母具有一定的產酸能力、糖化能力、發(fā)酵能力。NT 的發(fā)酵力要高于NL,約高19.74%,但其酸度、糖化力要低于NL,且其糖化力遠遠低于NL,糖化力約低30.34%,酸度約低8.85%(表4)。
表4 扣囊復膜酵母麩曲理化指標Table 4 Physicochemical indexes of Saccharomycopsis fibuligera fuqu
2.2.1 生產數(shù)據(jù)分析 從表5 可以看出,在不同實驗條件下,與對照相比,各方案的平均出酒率都高于對照,其中方案1 的平均出酒率最高,約比對照高2.10%,相對提高了4.62%。應用扣囊復膜酵母后,平均出酒率提高,這可能與菌種具有同化淀粉能力、發(fā)酵產乙醇能力有關。
表5 不同實驗方案的生產數(shù)據(jù)Table 5 The production data of different experimental schemes
2.2.2 實驗酒樣風味物質分析 通過氣相色譜分析,從酒樣中共檢測到41 種物質,其中酯類化合物13 種,醛類化合物5 種,醇類化合物14 種,酮類化合物2 種,酸類化合物7 種,含量較高的物質有乙酸乙酯、異戊醇、異丁醇、乙酸、正丙醇、活性戊醇、乙縮醛、乙醛等。在清香型麩曲白酒的酯類化合物中,乙酸乙酯作為主體香味物質,是產品標準的重要指標,幾個實驗方案的乙酸乙酯含量都高于對照,方案1 最高,比對照相對提高了14.40%。在含量較高的醛類化合物中,幾種實驗方案的乙醛、乙縮醛含量都比對照高,方案3 最高,其乙醛含量比對照提高了51.84%,其乙縮醛含量比對照提高了47.72%。在醇類化合物中,一般關注高級醇(正丙醇、異丁醇、活性戊醇、異戊醇)含量變化情況,幾種實驗方案的高級醇含量都高于對照,方案1 含量最高,約比對照提高了14.73%。幾種實驗方案的酮類化合物含量都比對照高,方案3 含量最高,約比對照提高了70.80%。在酸類化合物中,乙酸含量遠遠高于其他酸類,幾種實驗方案的乙酸含量都比對照高,方案2 含量最高,約比對照提高了20.56%。
從表6 可以看出,酒樣中含有可使酒具有甜感的2,3-丁二醇和1,2-丙二醇,幾種實驗方案的二醇物質含量要高于對照,方案1 最高,比對照提高了51.89%。由表7 可知,對照只檢測到丙三醇一種多元醇,幾個實驗方案均可檢測到丙三醇和赤蘚糖醇兩種多元醇,且方案1 的丙三醇含量高于對照,約提高了11.62%。
表6 實驗酒樣氣相色譜分析結果(mg/L)Table 6 GC analysis results of experimental baijiu samples(mg/L)
表7 實驗酒樣多元醇分析結果Table 7 Polyhydric alcohols analysis results of experimental baijiu samples
從酒樣風味物質分析來看,實驗組與對照組、以及各實驗組內之間風味成分的差異,一是與菌種本身特性有關,二是受發(fā)酵條件及微生物之間的相互作用影響。
2.2.3 實驗酒樣品評 如圖1、表8 所示,從酒樣品嘗結果來看,實驗酒樣均比對照酒樣增加了不同程度的綿甜感,改善了原酒的口感,提升了原酒品質。從香氣、口感、諧調性等多方面評價,方案1 酒樣的感官評價最好。從出酒率、理化指標、感官評價等方面綜合考慮,方案1(使用兩種扣囊復膜酵母麩曲)效果最好,具有推廣應用價值。
圖1 酒樣品評風味輪Fig.1 Baijiu sample tasting wheel
表8 酒樣感官品評結果Table 8 Results of sensory evaluation of baijiu samples
扣囊復膜酵母T 和扣囊復膜酵母L 的麩曲都具有一定的產酸能力、糖化能力、發(fā)酵能力,兩種酵母具有產丙三醇和阿拉伯糖醇的能力??勰覐湍そ湍笐糜谇逑阈望熐瓢l(fā)酵,能夠提高原料淀粉利用率,使麩曲酒的出酒率提高,增加風味物質的種類及含量,使得原酒的綿甜感有不同程度的增強,改善了原酒的口感,提升了原酒品質。
在今后的研究中,應加強對扣囊復膜酵母在白酒釀造生產中作用機理研究,優(yōu)選扣囊復膜酵母應用于釀造生產,為消費者提供飲后更舒適的美酒,滿足消費者對美好生活的向往。