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    miR-34a蛋白在子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞中的表達(dá)及其對(duì)癌細(xì)胞增殖凋亡機(jī)制的影響

    2021-11-05 00:43:16張碧艷楊苗金曉峰
    浙江臨床醫(yī)學(xué) 2021年9期
    關(guān)鍵詞:熒光素酶癌細(xì)胞內(nèi)膜

    張碧艷 楊苗 金曉峰

    子宮內(nèi)膜癌作為高發(fā)性、病因未明性婦科惡性腫瘤,多見(jiàn)于圍絕經(jīng)期、絕經(jīng)后婦女,伴陰道排液、腹部包塊、出血及疼痛等臨床表現(xiàn)。流行病學(xué)調(diào)查顯示,隨著社會(huì)快速發(fā)展,人們經(jīng)濟(jì)條件改善,生活方式改變,子宮內(nèi)膜癌患病率逐年增高,對(duì)女性生命健康存在嚴(yán)重危害[1]。目前,臨床針對(duì)子宮內(nèi)膜癌形成、進(jìn)展機(jī)制仍未闡明,但隨著分子生物學(xué)、基因組織學(xué)深入研究發(fā)現(xiàn),miRNA 存在抑癌基因、調(diào)控癌基因作用,于子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞組織內(nèi)表達(dá)異常,能對(duì)癌細(xì)胞增殖、凋亡進(jìn)行調(diào)控[2]。而miR-34a 作為miRNA 家族重要成員,與多種腫瘤的細(xì)胞增殖、遷移相關(guān),參與腫瘤細(xì)胞發(fā)育、增殖、分化及凋亡過(guò)程[3]。本研究對(duì)miR-34a 在子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞組織中的表達(dá)進(jìn)行分析,探討其對(duì)子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞增殖和凋亡的影響。

    1 資料與方法

    1.1 材料 選擇2018 年4 月至2020 年3 月本院手術(shù)切除獲得的子宮內(nèi)膜癌組織標(biāo)本30 例、癌旁子宮內(nèi)膜組織標(biāo)本30 例,均由病理科醫(yī)師通過(guò)嚴(yán)格的病理實(shí)驗(yàn)鑒定、確診。患者于術(shù)前均未行全身治療,手術(shù)切除組織樣本后立即置入液氮環(huán)境下凍存。本研究經(jīng)本院倫理委員會(huì)審批,患者知情并簽署同意書(shū)。

    1.2 方法(1)細(xì)胞培養(yǎng)、轉(zhuǎn)染 ①細(xì)胞培養(yǎng):經(jīng)RPMI 1640 培養(yǎng)基(內(nèi)含10%胎牛血清)開(kāi)展人子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞Ishikawa 培養(yǎng),在37 ℃的二氧化碳(濃度5%)培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),每間隔2 d 對(duì)培養(yǎng)基進(jìn)行更換,若細(xì)胞匯合>80%開(kāi)展傳代培養(yǎng)。②細(xì)胞轉(zhuǎn)染:于轉(zhuǎn)染前1 d,將Ishikawa 細(xì)胞準(zhǔn)確接種在6 孔板內(nèi),選擇無(wú)抗生素的無(wú)菌培養(yǎng)基實(shí)施細(xì)胞培養(yǎng);在細(xì)胞密度顯示為70%~80%情況下,依據(jù)Lipofectamine 2000 試劑盒的說(shuō)明書(shū)實(shí)施細(xì)胞轉(zhuǎn)染操作,轉(zhuǎn)染6 h 后將6 孔板中培養(yǎng)基取出,并加入RPMI 1640 培養(yǎng)基,內(nèi)含10%胎牛血清。再于37℃的二氧化碳(濃度5%)培養(yǎng)箱內(nèi)正常培養(yǎng)。(2)熒光定量PCR 法檢測(cè)miR-34a 表達(dá) 對(duì)總RNA 進(jìn)行提取,經(jīng)熒光定量PCR 法檢測(cè)子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞組織、癌旁細(xì)胞組織內(nèi)miR-34a 表達(dá),嚴(yán)格按說(shuō)明書(shū)實(shí)施操作。(3)MTT 法檢測(cè)子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞增殖能力 經(jīng)MTT法(四唑鹽比色法)對(duì)細(xì)胞活力進(jìn)行檢測(cè),即選擇轉(zhuǎn)染后人子宮內(nèi)膜癌的Ishikawa 細(xì)胞,經(jīng)0.25%胰酶開(kāi)展消化離心處理,將5×103個(gè)細(xì)胞準(zhǔn)確接種在96 孔板內(nèi),設(shè)定每孔為200l,于37℃的二氧化碳(濃度5%)培養(yǎng)箱內(nèi)行3~4 h 培養(yǎng),后于每孔內(nèi)加入DMSO(150l),充分振蕩5~10 min,使晶體充分溶解,并在酶標(biāo)儀的490 nm 處對(duì)光密度進(jìn)行測(cè)定,繪制MTT 檢測(cè)曲線圖。(4)基因分析 經(jīng)生物信息學(xué)技術(shù)對(duì)miR-34a 和Notch1-3'UTR 間產(chǎn)生的堿基互補(bǔ)關(guān)系進(jìn)行在線預(yù)測(cè);并經(jīng)點(diǎn)突變對(duì)Notch1-3'UTR 的3'UTR MUT(突變型載體)實(shí)施構(gòu)建,再將miR-34a mimics、miR-34a 對(duì)照物miRNC、Notch1-3'UTR MUT(突變型載體)及MT(野生型載體)分別轉(zhuǎn)染進(jìn)Ishikawa 細(xì)胞。轉(zhuǎn)染48h 后對(duì)細(xì)胞進(jìn)行收集,并依據(jù)雙熒光素酶報(bào)告基因測(cè)定試劑盒說(shuō)明書(shū)實(shí)施操作,對(duì)細(xì)胞內(nèi)螢火蟲(chóng)的熒光素酶、海腎熒光素酶相關(guān)活性進(jìn)行檢測(cè)。(5)流式細(xì)胞儀測(cè)定子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞凋亡 即選擇轉(zhuǎn)染后人子宮內(nèi)膜癌的Ishikawa 細(xì)胞,取0.25%胰酶開(kāi)展消化離心處理,于37℃的二氧化碳(濃度5%)培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),行12h 細(xì)胞同步化處理后,將原培養(yǎng)液更換,并開(kāi)展相應(yīng)處理,在24h 后對(duì)細(xì)胞進(jìn)行收集,行離心洗滌處理后,依據(jù)試劑盒說(shuō)明書(shū)將流式緩沖液重懸細(xì)胞加入,并加入Annexin Ⅴ-TITC(5l)混勻,于4℃避光環(huán)境下孵育20~30 min,后加入PI 染液(5l),再孵育5 min,經(jīng)流式細(xì)胞儀測(cè)定細(xì)胞凋亡情況,激發(fā)波長(zhǎng)為488 nm,設(shè)定發(fā)射波長(zhǎng)為530 nm,補(bǔ)償調(diào)節(jié)熒光后設(shè)置十字門(mén)。將Q2+Q4 區(qū)域細(xì)胞比值代表細(xì)胞凋亡率。(6)Western-blot 法測(cè)定蛋白表達(dá) 對(duì)轉(zhuǎn)染后人子宮內(nèi)膜癌Ishikawa 細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng),處理后將蛋白裂解液加入并對(duì)細(xì)胞蛋白樣品進(jìn)行收集,定量后將等量蛋白樣品開(kāi)展SDS-PAGE 電泳分離及轉(zhuǎn)膜處理,經(jīng)5%脫脂奶粉行60 min 封閉,并加入稀釋一抗,于室溫下孵育60 min,再經(jīng)PBS 溶液洗滌,后加入適量化學(xué)發(fā)光液進(jìn)行顯色處理,對(duì)成像進(jìn)行拍照,并經(jīng)相應(yīng)軟件分析灰度值。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS 20.0 統(tǒng)計(jì)軟件。計(jì)量資料以()表示,用t檢驗(yàn);計(jì)數(shù)資料以n(%)表示,以χ2校驗(yàn),P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞組織內(nèi)miR-34a 表達(dá) 經(jīng)熒光定量PCR 分析發(fā)現(xiàn),子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞組織內(nèi)miR-34a 表達(dá)量明顯低于癌旁組織,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見(jiàn)圖1。

    圖1 癌旁組織和子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞組織內(nèi)miR-34a

    2.2 miR-34a 靶基因測(cè)定結(jié)果 經(jīng)生物信息學(xué)技術(shù)對(duì)miR-34a 和Notch1-3'UTR 間產(chǎn)生的堿基互補(bǔ)關(guān)系進(jìn)行在線預(yù)測(cè)結(jié)果,見(jiàn)圖2?;蚍治霭l(fā)現(xiàn),相較于miRNC 和WT 共 轉(zhuǎn) 染,miR-34a mimics 和Notch1-3'UTR WT 共轉(zhuǎn)染的熒光強(qiáng)度顯著降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);但miR-34a mimics 和Notch1-3'UTR MUT 共轉(zhuǎn)染熒光強(qiáng)度,與miR-NC 和MUT 共轉(zhuǎn)染熒光強(qiáng)度對(duì)比,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見(jiàn)圖3。

    圖2 靶基因的生物信息學(xué)技術(shù)在線預(yù)測(cè)結(jié)果

    圖3 雙熒光素酶報(bào)告基因測(cè)定miR-34a靶基因結(jié)果

    2.3 細(xì)胞活力 經(jīng)MTT 法分析,與miR-NC組比較,miR-34a mimics組細(xì)胞培養(yǎng)1 d、2 d、3 d 后活力明顯下降,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);與miR-34a mimics組比較,miR-34a mimics 聯(lián)合Notch1組的細(xì)胞活力明顯增加,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖4。

    圖4 miR-34a干擾子宮內(nèi)膜癌Ishikawa細(xì)胞活力結(jié)果

    2.4 子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞凋亡結(jié)果 經(jīng)流式細(xì)胞術(shù)分析發(fā)現(xiàn),相較于miR-NC組,miR-34a mimics組的細(xì)胞凋亡率明顯增加,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);相較于miR-34a mimics組,miR-34a mimics 聯(lián)合Notch1組的細(xì)胞凋亡率明顯下降,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖5。

    圖5 miR-34a 干擾子宮內(nèi)膜癌Ishikawa細(xì)胞凋亡結(jié)果

    2.5 Ishikawa細(xì)胞內(nèi)Notch1表達(dá) 經(jīng)Western-blot法分析發(fā)現(xiàn),與miR-NC組比較,miR-34a mimics組Ishikawa細(xì)胞內(nèi)Notch1 表達(dá)明顯下降,但PARP 降解產(chǎn)物表達(dá)明顯增加,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);與miR-34a mimics組比較,miR-34a mimics 聯(lián)合Notch1組Ishikawa細(xì)胞內(nèi)Notch1 表達(dá)明顯升高,但PARP 降解產(chǎn)物表達(dá)明顯下降,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);見(jiàn)圖6。

    圖6 miR-34a影響子宮內(nèi)膜癌Ishikawa細(xì)胞內(nèi)Notch1表達(dá)結(jié)果

    3 討論

    近年來(lái),隨著子宮內(nèi)膜癌致癌機(jī)制的深入探索,以及分子生物學(xué)研究的發(fā)展,針對(duì)子宮內(nèi)膜癌早期診斷、分型、治療、預(yù)后等的認(rèn)知不斷進(jìn)步。其中,各種細(xì)胞蛋白、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路異常及基因突變已被證實(shí)與子宮內(nèi)膜癌的形成、發(fā)展密切相關(guān)。與此同時(shí),子宮內(nèi)膜癌的形成和發(fā)展是由多種信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路及基因異常相互作用,從而形成的一個(gè)復(fù)雜連鎖的基因蛋白反應(yīng)過(guò)程。miR-34a 作為高度保守miRNA,于哺乳動(dòng)物體內(nèi)廣泛分布,存在組織特異性,于肺以外組織內(nèi)廣泛分布。研究顯示,miR-34a 存在抑癌作用,能抑制肝癌、乳腺癌等相關(guān)腫瘤,故認(rèn)為miR-34a 能明顯影響子宮內(nèi)膜癌[4-5]。

    本研究結(jié)果顯示,相較于癌旁組織,子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞組織內(nèi)miR-34a 表達(dá)下降。miR-34a 對(duì)子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞組織增殖明顯抑制,并加快細(xì)胞凋亡[6]。研究表明,miR-205 作為miRNA 家族中最為重要的成員之一,于卵巢癌細(xì)胞組織內(nèi)呈高表達(dá),和腫瘤細(xì)胞侵襲、轉(zhuǎn)移存在相關(guān)性[7-8]。故抑制癌細(xì)胞增殖,誘導(dǎo)癌細(xì)胞凋亡是臨床治療腫瘤的關(guān)鍵[9]。

    大量體外研究顯示,化療藥物可對(duì)癌細(xì)胞凋亡進(jìn)行誘導(dǎo),進(jìn)而發(fā)揮抗腫瘤作用。近年來(lái),隨著臨床深入研究癌細(xì)胞增殖、凋亡發(fā)現(xiàn),miR-34a 經(jīng)對(duì)凋亡通路有關(guān)基因進(jìn)行調(diào)控,能誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[10]。本研究顯示,miR-34a 過(guò)度表達(dá)對(duì)子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞組織凋亡存在促進(jìn)作用,提示miR-34a 過(guò)度表達(dá)可增加細(xì)胞凋亡標(biāo)志蛋白-PARP 降解產(chǎn)物表達(dá),明確miR-34a 可將細(xì)胞凋亡通路激活,加快子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞組織凋亡。研究指出,細(xì)胞凋亡信號(hào)通路較多,Notch1 信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路主要由CSLD-NA 結(jié)合蛋白、Notch 受體及Notch 配體構(gòu)成,參與細(xì)胞增殖、分化活動(dòng),能對(duì)細(xì)胞分化及增殖、凋亡進(jìn)行調(diào)節(jié),影響細(xì)胞生理及病理過(guò)程[11]。大量研究表明,Notch 信號(hào)存在促腫瘤作用,腫瘤細(xì)胞組織內(nèi)Notch 表達(dá)明顯高于正常組織,和腫瘤增殖、凋亡關(guān)聯(lián)密切[12]。本研究經(jīng)雙熒光素酶報(bào)告基因測(cè)定實(shí)驗(yàn)明確miR-34a可結(jié)合Notch1 3'UTR,對(duì)Notch 啟動(dòng)子活性進(jìn)行影響。同時(shí),免疫印跡實(shí)驗(yàn)表明,miR-34a 可對(duì)Notch1 蛋白表達(dá)進(jìn)行抑制,提示Notch1 為miR-34a 下游靶基因。而MTT、流式細(xì)胞凋亡測(cè)定實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),Notch1 表達(dá)過(guò)度可對(duì)miR-34a 介導(dǎo)細(xì)胞凋亡進(jìn)行抑制,促進(jìn)細(xì)胞增殖;提示miR-34a 調(diào)控子宮內(nèi)膜癌Ishikawa 細(xì)胞增殖、凋亡,主要經(jīng)干擾靶基因Notch1 蛋白表達(dá)[13]。分析miR-34a對(duì)子宮內(nèi)膜癌Ishikawa 細(xì)胞增殖、凋亡的調(diào)控作用,可能與Notch 通路存在相關(guān)性,能為臨床早期診治子宮內(nèi)膜癌提供理論依據(jù)、臨床試驗(yàn)基礎(chǔ)。但針對(duì)Notch1 蛋白對(duì)Ishikawa 細(xì)胞增殖、凋亡的影響機(jī)制仍需進(jìn)一步明確,有待深入研究Notch1 蛋白和細(xì)胞凋亡標(biāo)志蛋白PARP 降解產(chǎn)物間互相作用,為臨床防治子宮內(nèi)膜癌提供新選擇[14]。

    綜上所述,Notch1 為miR-34a 重要的下游靶基因,miR-34a 經(jīng)對(duì)Notch1 表達(dá)進(jìn)行靶向調(diào)控,能對(duì)人子宮內(nèi)膜癌Ishikawa 細(xì)胞的凋亡進(jìn)行誘導(dǎo),進(jìn)而阻斷Ishikawa細(xì)胞增殖。

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