孫曉璐,楊永學(xué),郭 斌,張 源,蘭 偉
(1.阜陽(yáng)職業(yè)技術(shù)學(xué)院 生化工程系 安徽阜陽(yáng) 236037 2.阜陽(yáng)師范大學(xué) 生物與食品工程學(xué)院 安徽阜陽(yáng) 236037)
葡萄作為目前世界上栽植面積最廣、產(chǎn)量最高的水果之一,其副產(chǎn)物葡萄酒也頗受大眾歡迎[1]。據(jù)統(tǒng)計(jì),中國(guó)2012 年的葡萄種植面積為57萬hm2,占全球葡萄種植總面積的7.6%[2,3]。多個(gè)研究表明,葡萄酒中風(fēng)味物質(zhì)主要由葡萄品種、工藝條件產(chǎn)、釀酒微生物幾大因素決定[4,5]。確定葡萄品種后,要釀造出風(fēng)味獨(dú)特的葡萄酒,釀酒的酵母菌種品種選擇在助力發(fā)酵中作用就很突出。釀酒酵母具有將果實(shí)中的糖代謝得到醇、醛、酯等功能性物質(zhì),賦予葡萄酒獨(dú)特的風(fēng)味物質(zhì)[6]。相比釀酒酵母,非釀酒酵母可產(chǎn)生多種酯類[7]、多種酶類(如果膠酶、糖苷酶等)和較多的甘油,進(jìn)而揮發(fā)出獨(dú)特的香氣[8,9]。
研究表明,葡萄產(chǎn)區(qū)所釀造出的葡萄酒常具有其地域特色和獨(dú)特風(fēng)格[10,11]。薛波等[12]通過對(duì)從新疆采集的7 株野生型釀酒酵母分析其酒精、低pH 值、SO2、高濃度葡萄糖耐受性研究發(fā)現(xiàn):該7株野生型新疆釀酒酵母基本都能耐受12%的酒精;當(dāng)pH=2.5 時(shí),菌株也可以正常生長(zhǎng);當(dāng)SO2的濃度=250 mg/L 時(shí),野生釀酒酵母也能夠繼續(xù)生長(zhǎng);所有菌株都能夠耐受低于50%葡萄糖的濃度;即這7 株具有優(yōu)良的耐受性和釀酒特性[13]。李藝凡等[14]從紅茶菌液中分離出了酵母H8,并且將其與全美梅氏酵母、葡萄有孢漢生酵母按等比例混合培養(yǎng)46 h 后獲得了混菌酵母。同時(shí)他們還發(fā)現(xiàn)該類酵母發(fā)酵后含有較多單菌種沒有的物質(zhì),使得其香氣具有獨(dú)特性[15-18]。鄭曉吉等人[19]從新疆第六師葡萄產(chǎn)區(qū)的土壤和葡萄皮中分離出127 株酵母菌,并通過分析其綜合性耐受性實(shí)驗(yàn)獲得F12,該菌株能在10~35 ℃、含糖>400 g/L、SO2含量>200 mg/L、乙醇體積分?jǐn)?shù)>15%、含酸量>18 g/L 的葡萄汁中發(fā)酵。
目前,大部分研究?jī)?nèi)容限于在天然或馴化后的釀酒酵母的發(fā)酵條件的優(yōu)化,而對(duì)非釀酒酵母的研究不多。本研究通過分離安徽阜陽(yáng)葡天下所產(chǎn)的葡萄皮中的菌株,并對(duì)所分離的菌株進(jìn)行形態(tài)觀察和分子生物學(xué)鑒定,以獲得更適合本地區(qū)氣候的菌株。通過形態(tài)觀察和分子生物學(xué)鑒定確定葡萄酒發(fā)酵體系中非釀酒酵母對(duì)香氣物質(zhì)富集與酒品整體風(fēng)味具有一定影響力,并由此在葡萄酒釀造中引入多菌種發(fā)酵新工藝,顯示出非釀酒酵母在葡萄酒釀造中的獨(dú)特作用,豐富了自然發(fā)酵體系中非釀酒酵母品種,進(jìn)一步挖掘非釀酒酵母的價(jià)值具有一定意義。
材料:葡萄采摘于安徽阜陽(yáng)葡天下。試劑:SanPrep 柱式DNA 膠回收試劑盒SK8191、DNA Ladder Mix maker SM0337、DreamTaq-TM DNA Polymerase EP0702:生工生物工程(上海)股份有限公司;pMD?18-T Vector 連接試劑盒D101A:日本Takara(寶生物)工程有限公司;氯化鈉、葡萄糖、EDTA、CTAB、SDS 等其他生化試劑均為市售分析純。
富集培養(yǎng)基:豆芽汁培養(yǎng)基。YPD 培養(yǎng)基:1%酵母浸粉,2%蛋白胨,2%葡萄糖。
1.3.1 菌種富集
將少量葡萄皮加入到100 mL 滅菌的豆芽汁培養(yǎng)基中,并置于25 ℃、100 rpm/min 搖瓶中培養(yǎng)48 h。吸取1 mL 生理鹽水進(jìn)行梯度稀釋分別為(10-2、10-3、10-4),再吸取稀釋液100 μL 涂布在WL培養(yǎng)基中,進(jìn)行平行實(shí)驗(yàn)3 次,置于30 ℃環(huán)境中培養(yǎng)48 h[20-,21]。
待豆芽汁培養(yǎng)液發(fā)酵后,吸取200 μL 培養(yǎng)液涂布于WL 培養(yǎng)基中(加青霉素至終濃度100 μg/mL),置于25 ℃環(huán)境中培養(yǎng)48~72 h[22]。
1.3.2 分離純化
將顏色不同的菌落接入YPD 平板,多次劃線分離培養(yǎng),進(jìn)行分離純化。
挑取生長(zhǎng)良好的單菌落(共計(jì)8 個(gè)菌落),轉(zhuǎn)入YPD 液體培養(yǎng)基中,12 層紗布封口,置于30 ℃環(huán)境并以180 rpm/min 振蕩培養(yǎng),并測(cè)定24 h、48 h、72 h 和96 h 的生長(zhǎng)速度,以O(shè)D600進(jìn)行計(jì)算[23]。
1.3.3 菌株形態(tài)觀察
通過制作臨時(shí)裝片,于40×的油鏡下觀察,記錄細(xì)胞形態(tài)特征、細(xì)胞大小、出芽情況。置于熒光倒置顯微鏡下進(jìn)行采集,得到相關(guān)酵母細(xì)胞形態(tài)圖像,進(jìn)行形態(tài)學(xué)觀察。
1.3.4 菌株DNA 提取和PCR 反應(yīng)
按照SK8255(細(xì)菌)、SK8259(真菌)、SK8257(酵母)試劑盒說明書進(jìn)行菌株DNA 提取。使用通用引物F(5’-TCC GTA GGT GAA CCT GCG G-3’)和R(5’-TCC TCC GCT TAT TGA TAT GC-3’)擴(kuò)增。
PCR 循環(huán)條件:先置于94 ℃環(huán)境中預(yù)變性4 min,接著置于94 ℃中45 s 使模板變性,55 ℃中45 s 使引物與模板退火,72 ℃中1 min 使引物在模板上延伸,改反應(yīng)程度循環(huán)30 次,然后置于72 ℃中修復(fù)延伸10 min,最后PCR 產(chǎn)物置于4 ℃中終止反應(yīng)并保存[24,25]。
PCR 產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳20 min,條件為150 V、100 mA。
1.3.5 基因片段的測(cè)序與分析
用DNA 膠回收試劑盒(Omega)進(jìn)行切膠回收得到電泳條帶,進(jìn)行純化和測(cè)序。
1.3.6 構(gòu)建菌株系統(tǒng)發(fā)育樹
將上述獲得的測(cè)序結(jié)果錄入GenBank 數(shù)據(jù)庫(kù)中,利用其提供的Blast 功能進(jìn)行本次實(shí)驗(yàn)測(cè)序結(jié)果的同源性比對(duì)分析。通過Mega 7.0 軟件[26]進(jìn)行構(gòu)建菌株P(guān)1 和菌株P(guān)2 系統(tǒng)發(fā)育樹。
利用平板涂布法從自然發(fā)酵的葡萄皮中選取樣品,進(jìn)而分離得到單菌落菌株。經(jīng)培養(yǎng)后平板內(nèi)逐漸開始出現(xiàn)長(zhǎng)勢(shì)不同的酵母菌。分別在測(cè)定其在24 h、48 h、72 h 和96 h 的生長(zhǎng)速度如表1 中所示:當(dāng)培養(yǎng)24 h 時(shí),P2 >P1>P3 >P5 >P4、P6 >P7、P8;當(dāng)培養(yǎng)48 h 時(shí),P2 >P1 >P3 >P5 >P6 >P4 >P8 >P7;當(dāng)培養(yǎng)72 h 時(shí),P2 >P1 >P3 >P4 >P5 >P6 >P7 >P8;當(dāng)培養(yǎng)96 h時(shí),P3 >P1、P5 >P2 >P4、P6 >P7 >P8。相比其他菌株,P1(3.2、6.5、6.8、4.1)、P2(3.4、6.6、7.0、3.9)和P3(2.3、6.3、6.6、4.5)這三個(gè)菌株的24 h、48 h、72 h 和96 h 的OD600較高有較好的生長(zhǎng)活性。
對(duì)該8 株菌株的理化性質(zhì)進(jìn)行分析,結(jié)果如表2。8 株菌株均可耐受葡萄糖和麥芽糖,但是對(duì)于乳糖和蔗糖的耐受結(jié)果不同:P2、P4 和P7 可耐受乳糖,但不可耐受蔗糖;P1、P3 和P8 可耐受蔗糖,但不可耐受乳糖;P5 對(duì)于乳糖和蔗糖均可耐受;P6 對(duì)于乳糖和蔗糖均不可耐受。由于后續(xù)實(shí)驗(yàn)中為了比較其中的差別,故而選取乳糖陽(yáng)性而蔗糖陰性和蔗糖陽(yáng)性而乳糖陰性,且生長(zhǎng)速度良好的兩株菌株,即P1 和P2。后續(xù)形態(tài)特征及分子生物學(xué)鑒定實(shí)驗(yàn)均以P1 和P2 作為研究對(duì)象。
2.2.1 菌株的形態(tài)特征
經(jīng)過篩選得到的P1 和P2 這兩株菌株在平板上的菌落形態(tài)和細(xì)胞形態(tài)如圖1 所示。A1 和A2圖所示菌落黃色略帶粉色,表面光滑扁平,邊緣整齊。通過置于熒光倒置顯微鏡下(10*40)進(jìn)行采集觀察,B1 和B2 圖所示細(xì)胞多呈卵圓形,且具有典型的真核細(xì)胞結(jié)構(gòu)。
圖1 菌株的菌落及細(xì)胞形態(tài)
2.2.2 基因的分子生物學(xué)鑒定
提取P1 和P2 菌株中的DNA,并使用引物來擴(kuò)增其ITS rDNA,對(duì)其PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),結(jié)果如圖2 所示。
圖2 PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物電泳結(jié)果
由圖2 可知,P1 和P2 兩株菌株電泳條帶不同,但都在ITS rDNA 的PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物條帶范圍內(nèi):P1 擴(kuò)增產(chǎn)物的片段大小約在1500 bp 左右,P2擴(kuò)增產(chǎn)物的片段大小約在600 bp 左右,且兩株菌株的擴(kuò)增條帶清晰明亮可見,無明顯非特異性擴(kuò)增。因此該P(yáng)CR 產(chǎn)物可滿足后續(xù)實(shí)驗(yàn)要求。
2.2.3 分離菌株的系統(tǒng)發(fā)育樹
借助NCBI 中的Blast 功能將本實(shí)驗(yàn)中的2株菌株的ITS rDNA 與GenBank 數(shù)據(jù)庫(kù),對(duì)菌株的同源性比對(duì)進(jìn)行分析。構(gòu)建P1 和P2 這兩個(gè)菌株的系統(tǒng)發(fā)育樹,系統(tǒng)發(fā)育樹的結(jié)果如圖3 所示。P1 和近玫色鎖擲孢酵母(Sporidiobolus pararoseus)JN544046.1 為一個(gè)分支,P2 和金黃蝶形擔(dān)孢酵母(Papiliotrema flavescens)MK026970.1 為一個(gè)分支。之后使用Bootstrap 檢驗(yàn)1000 次隨機(jī)重復(fù)實(shí)驗(yàn)以驗(yàn)證上述結(jié)果。綜合P1 和P2 菌株的菌落及細(xì)胞形態(tài)觀察、PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物電泳結(jié)果及系統(tǒng)發(fā)育樹結(jié)果,可發(fā)現(xiàn)P1 和P2 這兩株菌株按照親緣關(guān)系可分屬于2 個(gè)種:Sporidiobolus pararoseus JN544046.1:P1;Papiliotrema flavescens MK026970.1:P2。
圖3 系統(tǒng)發(fā)育樹(P1 和P2)
本研究利用平板涂布法從自然發(fā)酵的葡萄皮中分離得到8 株酵母菌株。其中兩個(gè)菌株(P1、P2)分別對(duì)蔗糖和乳糖具有良好的耐受性,且生長(zhǎng)速度良好。通過形態(tài)觀察和分子生物學(xué)鑒定確定了這兩株菌株可分屬于2 個(gè)種:近玫色鎖擲孢酵母(Sporidiobolus pararoseus);金黃蝶形擔(dān)孢酵母(Papiliotrema flavescens)。近年來,對(duì)葡萄酒發(fā)酵體系中非釀酒酵母的探究已充分證明其對(duì)香氣物質(zhì)富集與酒品整體風(fēng)味呈現(xiàn)的影響力[27],并由此在葡萄酒釀造中引入了多菌種發(fā)酵(非釀酒酵母與釀酒酵母混菌或順序發(fā)酵)新工藝,顯示出非釀酒酵母在葡萄酒(果酒)釀造中的獨(dú)特價(jià)值[28]。
在酒精代謝活動(dòng)開始前,葡萄汁中非釀酒酵母都能夠快速增殖并且在控制條件下的生長(zhǎng)代謝,有助于改善葡萄酒的結(jié)構(gòu)與風(fēng)味復(fù)雜性[29],這種發(fā)酵方式在一定程度上通過了不同種類發(fā)酵菌種間的協(xié)同作用,從而表現(xiàn)出不同的發(fā)酵效果,體現(xiàn)了非釀酒酵母在發(fā)酵葡萄酒中的潛在應(yīng)用價(jià)值,也為呈香物質(zhì)的優(yōu)化提供了有力借鑒[30]。目前,相關(guān)研究較多集中于使用釀酒酵母,發(fā)酵葡萄酒中的非釀酒酵母菌群的可控制混合發(fā)酵效果探討領(lǐng)域,本研究對(duì)豐富自然發(fā)酵體系中非釀酒酵母的認(rèn)識(shí),進(jìn)一步挖掘非釀酒酵母的價(jià)值具有一定意義。
阜陽(yáng)師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版)2021年2期